吳峰,王常青,石亞偉,*
(1.山西大學(xué)生物技術(shù)研究所,山西太原030006;2.山西大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,山西太原030006)
亞麻(linum usitatissimum linn)也稱胡麻,是我國五大油料作物之一,我國油用亞麻(胡麻)主要分布在華北、西北等地,主產(chǎn)區(qū)是內(nèi)蒙古、甘肅、寧夏、河北、山西、陜西和新疆,西南地區(qū)的云南等地也有種植[1-4]。亞麻餅粕屬于亞麻籽榨油后的下腳料,其粗蛋白的含量高達(dá)43%左右,亞麻籽粕含有豐富的α-亞麻酸、木質(zhì)素以及蛋白類等物質(zhì)[5],同時也含有豐富的維生素A、維生素B、維生素E等維生素,具有很高的營養(yǎng)價值,可作為油料作物配合開發(fā)新營養(yǎng)主食品種的原料,但是亞麻餅粕通常作為動物飼料或肥料使用,存在著巨大的浪費(fèi)。
植物蛋白質(zhì)經(jīng)蛋白酶部分水解后,可獲得具有生物活性的多肽諸如抗氧化作用、降血脂、抗腫瘤、抗高血壓、活化細(xì)胞免疫機(jī)能等多肽[6-9],是現(xiàn)代食品和醫(yī)藥領(lǐng)域最熱門的研究方向,也是提升植物蛋白利用價值的主要方向。目前對于大豆、花生等原料多肽的制備工藝和功能性進(jìn)行較多的研究,如周婷婷等[10]篩選制備抗氧化大豆多肽的水解酶及水解條件,從而得到高效的抗氧化大豆多肽制品;劉英麗等[11]研究確定了酶解花生粕制備抗氧化肽的最佳工藝參數(shù)。目前國內(nèi)對于亞麻的研究主要集中在亞麻油脂的開發(fā)利用,而對亞麻蛋白質(zhì)的研究關(guān)注較少,特別是對脫脂亞麻粉中蛋白肽的制備研究甚少。亞麻籽蛋白也是一種優(yōu)良的植物蛋白[12],(以亞麻餅粕為原料,通過對不同蛋白酶的酶解效率比較,建立3.350酸性蛋白酶解亞麻籽粕制備多肽的實驗室工藝,并對制備的亞麻多肽的還原能力和清除O2-·和DPPH·的能力,進(jìn)行測定,顯示其具有較好的體外抗氧化活性,為后續(xù)亞麻多肽飲料和功能性食品的開發(fā)提供了理論依據(jù)。
胃蛋白酶(30U/mg)、胰蛋白酶(165 U/mg):Solarbio公司;木瓜蛋白酶(10萬U/g)、菠蘿蛋白酶(80萬U/g)、537酸性蛋白酶(2.05萬U/g):廣西龐博生物工程有限公司;3.350黑曲酸性蛋白酶(35 000 U/g):天津市諾奧科技發(fā)展有限公司;其它試劑均為國產(chǎn)分析純;亞麻籽粕:山西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院提供;苦肽(MLIPPFFVI):華大基因合成;亞麻胰蛋白酶抑制劑(LUTI)為山西大學(xué)生物技術(shù)研究所制備。
QT2000自動液相色譜分離純化層析儀:上海琪特分析儀器有限公司;Lambda 35雙光束紫外可見光光度計:珀金埃爾默企業(yè)管理(上海)有限公司;D-37520高速冷凍離心機(jī):美國Thermo Fisher Scientific公司;FD8-4T冷凍干燥儀:GOLD-SIM公司。
亞麻多肽含量參照QB/T2879-2007《海洋魚低聚肽粉測定》[13]中的三氯乙酸沉淀法測定,其中總氮采用半微量凱氏定氮法,氨基酸態(tài)氮按照GB 5009.235-2016《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)食品中氨基酸態(tài)氮的測定》中的甲醛滴定法測定。
多肽得率/%=(離心上清液中總氮量-離心上清液中氨基酸態(tài)氮含量)/樣品中總氮量×100
取一定量烘干的亞麻餅粕粉按1∶30(g/mL)加入蒸餾水,用1 mol/L的氫氧化鈉調(diào)pH值到9.5~10.0,在60℃的水浴中保溫攪拌3 h,然后離心取上清液。沉淀物進(jìn)行二次提取、離心。兩次上清液合并后,用稀鹽酸調(diào)pH值到4.0~4.5沉淀蛋白,并水洗兩次;水洗蛋白用1 mol/L氫氧化鈉調(diào)pH值到7.0,然后冷凍干燥,得到成品亞麻蛋白粉。
準(zhǔn)確稱取亞麻蛋白粉,按1∶20(g/mL)加入蒸餾水,按每克蛋白6 000 U的酶劑量分別加入木瓜蛋白酶、胰蛋白酶、胃蛋白酶、菠蘿蛋白酶、537酸性蛋白酶和3.350酸性蛋白酶,在各種蛋白酶的適宜條件下水解2 h,沸水浴30 min滅酶活,離心分離(8 000 r/min,10 min),取上清液,測定多肽含量。以多肽得率為指標(biāo),篩選出最佳蛋白酶。
1.6.1 單因素試驗
以亞麻多肽得率為評價指標(biāo),用篩選出的酶解多肽得率最高的蛋白酶做進(jìn)一步的單因素試驗。按料液比 1 ∶20(g/mL),考察該酶在不同酶解溫度(30、40、50、60、70)、酶解 pH 值(2.0、2.5、3.0、3.5、4.0)、加酶量(3 000、4 000、5 000、6 000、7 000 U/g)和酶解時間(1、2、3、4、5 h)4個單因素條件下對多肽得率的影響。
1.6.2 正交試驗
以單因素試驗的試驗結(jié)果為基礎(chǔ),在酶解溫度、酶解pH值、加酶量和酶解時間,四因素三水平下做正交試驗,確定多肽得率最佳的酶解條件。正交試驗方案L9(34),見表1。
表1 正交試驗因素水平表Table 1 Orthogonal test factor level table
還原能力的測定方法參照文獻(xiàn)[14];DPPH·清除率的測定方法參照文獻(xiàn) [15-17];超氧陰離子自由基(O2-·)的清除率的測定方法參照文獻(xiàn)[18-19]。
利用Superdex 75 prep grade凝膠色譜法測定制備的亞麻多肽的相對分子量。以已知分子量的兩種多肽,亞麻胰蛋白酶抑制劑(分子量7 612.71 Da)和化學(xué)合成的亞麻苦肽(分子量1 149.46 Da)作為參照,分別將上述標(biāo)準(zhǔn)樣及制備的亞麻水解多肽,在相同條件下,上樣Superdex 75 prep grade凝膠色譜柱,波長220 nm檢測,繪制各自洗脫體積和A220nm吸收值關(guān)系曲線,通過與兩個已知蛋白的洗脫圖譜比對,粗略測定亞麻水解多肽分子量分布范圍。
試驗數(shù)據(jù)采用Minitab15軟件進(jìn)行方差分析。
選取6種蛋白酶,在各種酶的最適條件下酶解2 h見表2。
表2 6種蛋白酶酶解亞麻蛋白溶液制備多肽效果的對比Table 2 Comparison of the effect of six proteases on enzymatic hydrolysis of defatted flaxseed meal
由表2可知,3.350酸性蛋白酶酶解亞麻蛋白得率(28.52%)最高,537酸性蛋白酶酶解亞麻蛋白得率(22.97%)次之,因此選用3.350酸性蛋白酶制備亞麻多肽。
2.2.1 酶解溫度對亞麻多肽得率的影響
在酶解時間2 h,加酶量6 000 U/g,pH2.5的條件,酶解溫度對亞麻多肽得率的影響見圖1。
圖1 溫度對亞麻多肽得率的影響Fig.1 Effect of temperature on the yield of flax polypeptide
由圖1可知,當(dāng)溫度小于60℃時,多肽得率隨著溫度的升高而增大,溫度為60℃時達(dá)到最大值,溫度大于60℃時,多肽得率有所下降??赡苁且驗槊附鉁囟容^高時,蛋白酶容易變性,從而使酶活性減弱。所以選擇60℃為下一步正交試驗的酶解溫度。
2.2.2 pH值對亞麻多肽得率的影響
pH值對亞麻多肽得率的影響見圖2。
圖2 pH值對亞麻多肽得率的影響Fig.2 Effect of pH on the yield of flax polypeptides
由圖2可知,pH值對水解效果的影響顯著,3.350酸性蛋白酶酶解亞麻分離蛋白在加酶量6 000 U/g,酶解溫度60℃,酶解時間2 h時,當(dāng)pH值達(dá)到3.0時,多肽得率最大,當(dāng)pH值大于3.0時,多肽得率略有下降。3.350酸性蛋白酶在pH值較低時酶活較高,所以選取pH3.0為下一步正交試驗的酶解pH。
2.2.3 加酶量對亞麻多肽得率的影響
在酶解溫度60℃,pH值3.0,酶解時間2 h的條件下,加酶量與多肽得率的關(guān)系見圖3。
圖3 加酶量對亞麻多肽得率的影響Fig.3 Effect of enzyme addition on yield of flax polypeptides
從圖3中可以看出,當(dāng)加酶量為6 000 U/g時,亞麻多肽得率最大,即使增加酶的量也就不會對水解速度有明顯的影響,多肽得率反而有所下降。因此,選擇蛋白酶添加量為6 000 U/g,作為下一步正交試驗的加酶量。
2.2.4 酶解時間對亞麻多肽得率的影響
當(dāng)酶解溫度60℃,pH值3.0,加酶量6 000 U/g時,酶解時間與多肽得率的關(guān)系表現(xiàn)為:當(dāng)酶解時間小于2 h時,隨著時間的延長,多肽得率快速上升,2 h時達(dá)到最大值,之后再延長酶解時間,多肽得率逐漸下降見圖4,這可能是因為隨著水解的進(jìn)行,蛋白質(zhì)底物逐漸減少,且酶解產(chǎn)物不斷積累對蛋白酶本身造成抑制,或者多肽又被進(jìn)一步酶解成為氨基酸。還可能是因為隨著時間延長,多肽之間通過非共價鍵(如疏水基作用、氫鍵和配位鍵)相互聚集,產(chǎn)生了聚合反應(yīng),導(dǎo)致多肽減少。因此,選擇酶解時間為2 h,作為下一步正交實驗的蛋白酶解時間。
圖4 酶解時間對亞麻多肽得率的影響Fig.4 Effect of enzymolysis time on yield of flax polypeptide
綜合單因素試驗結(jié)果,以亞麻多肽得率為指標(biāo),進(jìn)行正交試驗,結(jié)果見表3。
表3 正交試驗設(shè)計與結(jié)果Table 3 Orthogonal experimental design and results
由表3可知,制備亞麻多肽的最佳工藝組合為A2B1C3D3,即溫度 60 ℃、pH2.7、加酶量 6 500 U/g、酶解時間2.5 h,在此條件下進(jìn)行驗證試驗,制備亞麻多肽得率的提取率為38.80%。又由極差分析可知,各因素對多肽得率的影響大小順序為A>C>B>D,即酶解溫度對亞麻多肽得率的影響最大,加酶量和pH值次之,酶解時間的影響最小。方差分析結(jié)果(表4)表明酶解溫度和加酶量對制備亞麻多肽得率的影響顯著,其他2個因素的影響均不顯著。
表4 方差分析結(jié)果Table 4 Analysis of variance
2.4.1 亞麻多肽相對還原力的測定
亞麻多肽的還原能力見圖5。
圖5 亞麻多肽的還原能力Fig.5 Reduction activity of flax polypeptides
由圖5可知,在0.15 mg/mL~1.2 mg/mL有效質(zhì)量濃度范圍內(nèi),亞麻多肽的還原能力隨著質(zhì)量濃度的升高而增大,且增幅明顯。此后,隨著質(zhì)量濃度增大,亞麻多肽的還原能力變化不明顯,趨于穩(wěn)定,逐步達(dá)到其最大還原能力。
2.4.2 亞麻多肽對DPPH自由基的清除作用
亞麻多肽對DPPH自由基的清除能力見圖6。
圖6 亞麻多肽對DPPH自由基的清除能力Fig.6 DPPH free radical scavenging ability of flax and polypeptide
由圖6可知,亞麻多肽DPPH自由基清除率與濃度呈正比,可能是酶解過程產(chǎn)生了能有效清除DPPH·的小分子肽類,當(dāng)酶解液質(zhì)量濃度為1.5 mg/mL時,DPPH·清除率達(dá)到了最大值89.99%。
2.4.3 亞麻多肽對O2-·自由基的清除作用
亞麻多肽對O2-·自由基的清除能力見圖7。
圖7 亞麻多肽對O2-·自由基的清除能力Fig.7 The scavenging ability of flax and polypeptide on O2-·free radicals
由圖7可知,制備的亞麻多肽清除O2-·能力隨質(zhì)量濃度增加,有明顯的增大趨勢,當(dāng)多肽質(zhì)量濃度為0.6 mg/mL時,清除率可達(dá)85.57%;此后,隨著質(zhì)量濃度增大,亞麻多肽對O2-·清除效果變化不明顯,趨于穩(wěn)定,逐步達(dá)到其最大的清除O2-·效果。
亞麻水解多肽分子量分布范圍見圖8。
圖8 亞麻水解多肽分子量分布范圍Fig.8 Molecular weight distribution of flax hydrolyzed peptides
通過Superdex 75 prep grade凝膠色譜法,對亞麻水解多肽分子量的分析,揭示亞麻水解多肽在凝膠層析的上洗脫的體積,介于亞麻胰蛋白酶抑制(7 612.71 Da)和亞麻苦肽(MLIPPFFVI,1 149.46 Da)的洗脫體積間,說明利用酸性蛋白酶3.350制備的亞麻水解多肽的分子量分布范圍主要集中在1 000 Da~7 600 Da間。
3.350 酸性蛋白酶制備亞麻多肽單因素和正交試驗,表明制備亞麻多肽的最佳工藝條件為:酶解溫度60 ℃、pH2.7、加酶量 6 500 U/g、酶解時間 2.5 h,此條件下亞麻多肽的得率為38.80%。對亞麻多肽得率的影響因素排序為酶解溫度>加酶量>pH值>酶解時間,其中酶解溫度和加酶量對亞麻多肽得率影響顯著。亞麻多肽對DPPH自由基和超氧陰離子自由基有明顯的清除作用,說明亞麻多肽具有良好的抗氧化活性,并隨著多肽質(zhì)量濃度的升高,其抗氧化活性不斷增強(qiáng),表現(xiàn)出良好的量效關(guān)系,這為亞麻多肽功能性食品開發(fā)提供理論依據(jù)。制備的亞麻多肽的分子量主要分布在1 000 Da~7 600 Da間的范圍,但是亞麻多肽的組成及構(gòu)效關(guān)系有待進(jìn)一步研究。