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    苦瓜籽粗多糖的提取工藝及其體外抗氧化活性

    2018-10-09 12:53:08李慧華余江南徐希明
    關(guān)鍵詞:瓜籽清除率多糖

    李慧華, 余江南, 徐希明

    (江蘇大學(xué)藥學(xué)院, 江蘇 鎮(zhèn)江 212013)

    苦瓜是全株入藥的食物,有“藥用蔬菜”之稱,特別是其果實(shí)和種仁有很強(qiáng)的藥理活性[1]。《本草綱目》中記載了苦瓜籽的氣味及藥效,稱其“苦甘無(wú)毒,益氣壯陽(yáng)”。迄今為止,國(guó)內(nèi)外學(xué)者已經(jīng)從苦瓜籽中分離出多種蛋白質(zhì)、多肽、油脂等成分,并顯示出降血糖、抗腫瘤、抗病毒、降血脂及脂肪分解等藥理活性[2-4]。然而,研究苦瓜籽多糖成分的報(bào)道甚少,本文在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn),優(yōu)化苦瓜籽粗多糖(bitter melon seeds polysaccharide, BMSP)的提取工藝,并考察其體外抗氧化能力,為苦瓜籽的合理開(kāi)發(fā)利用提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    苦瓜籽購(gòu)自河南省洛陽(yáng)市中藥材市場(chǎng);無(wú)水乙醇、石油醚、丙酮、乙醚、苯酚、濃硫酸、牛血清白蛋白、考馬斯亮藍(lán)、三氯乙酸、三羥甲基甲胺、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)、鄰二氮菲、硫酸亞鐵、過(guò)氧化氫、三氯化鐵、鹽酸、鄰苯三酚、維生素C、鐵氰化鉀等化學(xué)試劑均為分析純。

    RE-2000A旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器(上海亞榮生化儀器廠);L-550大容量離心機(jī)(湖南湘儀實(shí)驗(yàn)室儀器開(kāi)發(fā)有限公司);DHG-9245A 鼓風(fēng)干燥箱(上海一恒科學(xué)儀器有限公司);紫外分光光度計(jì)(蘇州凈化設(shè)備有限公司);酶標(biāo)儀(上海普迪生物技術(shù)有限公司)。

    1.2 苦瓜籽預(yù)處理

    將干燥苦瓜籽粉碎后過(guò)80目篩,加入5倍體積的石油醚加熱回流3 h除去脂溶性物質(zhì),抽濾后棄去上清液,低溫干燥濾餅以揮發(fā)掉石油醚,再加5倍體積的 95%乙醇加熱回流 3 h,抽濾后棄去上清液,50 ℃干燥濾餅,得苦瓜籽粉末以備多糖提取用。

    1.3 改良苯酚-硫酸法[5]建立葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線

    分別精密吸取0.25、0.5、1.0、1.5、2.0、2.5 mL葡萄糖溶液(濃度為1.0 mg/mL)于 25 mL的容量瓶中,加水至刻度線,配成濃度分別為10、20、40、60、80、100 μg/mL 的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液,再分別吸取60 μL各濃度葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液[5],平行取樣3次,加入180 μL 5%苯酚-硫酸溶液(即配即用),渦旋1 min混勻,沸水浴加熱25 min,待反應(yīng)完全后,冷卻至室溫,吸取200 μL加入96孔板中,以蒸餾水為參比,測(cè)定490 nm處光密度(D)值。以葡萄糖濃度為橫坐標(biāo),D值為縱坐標(biāo),得標(biāo)準(zhǔn)曲線為Y=0.007 5X+0.077 6,R2=0.999 3,表明葡萄糖濃度在10~100 μg/mL范圍有良好的線性關(guān)系。

    1.4 BMSP的提取

    稱取預(yù)處理的苦瓜籽粉末30 g(平行稱量3 份)于燒杯中,在一定條件下煎煮后,得到苦瓜籽水提液,濃縮至一定體積,加入4 倍體積的乙醇溶液,靜置12 h,離心后收集沉淀,再依次用無(wú)水乙醇、丙酮和乙醚洗滌2次,最終完全溶解于水中,離心,上清液凍干得BMSP沉淀。

    吸取 60 μL 2.5 mg/mL BMSP沉淀溶液,按“1.3”項(xiàng)下方法進(jìn)行操作,測(cè)定490 nm處的D值,可根據(jù)D值適當(dāng)稀釋,再測(cè)定,并代入方程得出多糖濃度,最后代入下列公式計(jì)算BMSP得率。

    多糖提取率=(提取的多糖質(zhì)量/苦瓜籽質(zhì)量)×100。

    1.5 單因素實(shí)驗(yàn)

    以脫脂后的苦瓜籽粉末為原料,采用熱水煎煮法提取BMSP。影響B(tài)MSP提取的主要因素有提取溫度、時(shí)間、料液比和次數(shù)。本實(shí)驗(yàn)提取溫度選取 60、70、80、90、100 ℃共5個(gè)水平,提取時(shí)間選取 1、1.5、2、2.5、3 h 這5個(gè)水平,苦瓜籽與水的料液比選取 1 ∶10、1 ∶20、1 ∶30、1 ∶40、1 ∶50 這5個(gè)水平,選取提取次數(shù) 1、2、3、4 次4個(gè)水平,分別進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn)。

    1.6 正交設(shè)計(jì)

    在單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果的基礎(chǔ)上,選擇提取溫度(A)、提取時(shí)間(B)、料液比(C)和提取次數(shù)(D)這4個(gè)因素,每個(gè)因素下各3個(gè)水平,采用L9(34)正交實(shí)驗(yàn)表設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn),以多糖提取率為考察指標(biāo),確定最優(yōu)提取工藝,并進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)。

    1.7 BMSP沉淀中的蛋白質(zhì)去除

    因BMSP中含有的苦瓜籽蛋白具有較強(qiáng)抗氧化能力,會(huì)影響B(tài)MSP的抗氧化活性研究。因此我們參照文獻(xiàn)[6]中的方法,采用三氯乙酸脫蛋白法去除BMSP沉淀中的蛋白質(zhì)。稱取適量的BMSP沉淀完全溶解于200 mL蒸餾水中,邊攪拌邊緩慢加入三氯乙酸溶液,使三氯乙酸的最終濃度為3%,其間不斷攪拌3 h,使蛋白質(zhì)完全沉淀,再靜置2 h后,下層有蛋白質(zhì)層析出。離心后棄去蛋白沉淀,將上清液收集濃縮,透析后凍干得BMSP。

    1.8 考馬斯亮藍(lán)法測(cè)定BMSP中蛋白質(zhì)含量[7]

    精密吸取牛血清蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)液(濃度為100 μg/mL)0.1,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0 mL于10 mL試管中,加入4 mL 0.01%考馬斯亮藍(lán)溶液G-250,加水補(bǔ)足至10 mL,混勻,室溫靜置25 min,檢測(cè)595 nm處的D值。以蛋白質(zhì)的濃度為橫坐標(biāo),D值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。配制濃度為1.5 mg/mL BMSP多糖溶液,按“1.3”項(xiàng)下操作方法,檢測(cè)595 nm處D值。BMSP中蛋白質(zhì)的含量=Wi/W×100%(Wi為根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出的蛋白質(zhì)質(zhì)量,W為BMSP質(zhì)量)。

    1.9 BMSP抗氧化活性測(cè)定

    1.9.1 清除 DPPH自由基能力的測(cè)定[8-9]稱取適量DPPH溶解于無(wú)水乙醇中配制成0.2 mmol/L的DPPH乙醇溶液,分別吸取0.1,0.2,0.5,1,2,3 mg/mL BMSP溶液2 mL,加入2 mL 0.2 mmol/L的DPPH乙醇溶液,混合搖勻,常溫避光放置30 min,3 500 r/min離心10 min。取多糖上清液檢測(cè)517 nm處D值。采用無(wú)水乙醇溶液作為空白對(duì)照,維生素C為陽(yáng)性對(duì)照,計(jì)算BMSP的清除率(%),每個(gè)濃度平行做3次實(shí)驗(yàn)。DPPH清除率=[1-(D多糖組-D對(duì)照組)/D空白組]×100。

    1.9.2 Fenton反應(yīng)法檢測(cè)羥自由基(·OH)清除率[10]在10 mL試管中依次加入1 mL 0.75 mmol/L鄰二氮菲無(wú)水乙醇溶液,2 mL pH=7.4的 PBS和1 mL 0.75 mmol/L FeSO4溶液,邊加邊搖勻,再分別加入0.1,0.2,0.5,1,2,3 mg/mL 2 mL BMSP多糖溶液和1 mL 0.3%H2O2,用蒸餾水補(bǔ)足至10 mL,于 37 ℃水浴反應(yīng) 1 h,于510 nm處測(cè)定D值。空白對(duì)照為緩沖溶液-蒸餾水(V∶V=1 ∶2)溶液,陽(yáng)性對(duì)照為維生素C。·OH清除率=[(D多糖組-D對(duì)照組)/D空白組-D多糖組]×100。

    1.9.4 普魯士藍(lán)法檢測(cè)總還原能力[12]在10 mL離心管中分別加入0.2 mol/L pH 6.6磷酸緩沖液2.5 mL和BMSP溶液1 mL(濃度分別為0.1,0.2,0.5,1,2,3 mg/mL),加入2.5 mL 1%鐵氰化鉀,混合均勻后于50 ℃反應(yīng)20 min。取出后加入2.5 mL 10%三氯乙酸終止反應(yīng),3 500 r/min離心10 min。取出上清液2.5 mL,加入2.5 mL蒸餾水和0.5 mL 0.1%的三氯化鐵溶液,混勻后靜置10 min,在700 nm處檢測(cè)D值,以蒸餾水代替0.1%三氯化鐵溶液作為空白對(duì)照。還原能力=D多糖組-D空白組。

    2 結(jié)果

    2.1 提取溫度

    從圖1可以看出,提取溫度在60~100 ℃范圍內(nèi),多糖提取率呈現(xiàn)先上升再下降的趨勢(shì),在90 ℃時(shí)多糖提取率最高,達(dá)5.18%,可能是由于當(dāng)溫度較低時(shí),多糖的溶解與滲透能力較低。在相同提取時(shí)間內(nèi),溫度較低時(shí)BMSP不能有效溶出,而溫度較高時(shí)多糖分子結(jié)構(gòu)可能會(huì)發(fā)生一定的破壞,從而導(dǎo)致多糖提取率降低??紤]100 ℃時(shí)水分揮發(fā)快,不能完全浸潤(rùn)提取,且多糖結(jié)構(gòu)可能已被破壞,對(duì)后面的結(jié)構(gòu)解析有一定影響。最終確定最佳提取溫度為90 ℃。為了進(jìn)一步考察提取溫度對(duì)BMSP提取率的影響,選取70、80、90 ℃這3個(gè)水平進(jìn)行正交優(yōu)化分析。

    圖1 不同提取溫度對(duì)苦瓜籽粗多糖提取率的影響

    2.2 提取時(shí)間

    從圖2可以看出,當(dāng)提取時(shí)間從1 h增加到2 h時(shí),BMSP提取率快速上升,到2 h時(shí)達(dá)到最大值,為4.61%,當(dāng)超過(guò)2 h,多糖提取率反而降低。這可能是時(shí)間越長(zhǎng),多糖溶出的量越大,當(dāng)細(xì)胞內(nèi)外滲透壓逐漸趨于平衡,多糖溶出量緩慢,但浸提時(shí)間過(guò)長(zhǎng)可能會(huì)致多糖鏈斷裂,結(jié)構(gòu)發(fā)生變化,從而導(dǎo)致多糖的溶出量減少,或因?yàn)槠渌煞直惶崛〕鰜?lái)影響了提取率。故選取1.5 h、2 h、2.5 h 3個(gè)水平進(jìn)行正交優(yōu)化分析。

    圖2 不同提取時(shí)間對(duì)苦瓜籽粗多糖提取率的影響

    2.3 料液比

    從圖3可以看出,當(dāng)料液比從1 ∶10增大到1 ∶30時(shí),BMSP提取率呈上升趨勢(shì);當(dāng)料液比為1 ∶50時(shí),達(dá)到最大值4.95%;繼續(xù)增大料液比,BMSP提取率基本保持平穩(wěn),上升幅度不明顯。考慮到各因素間相互作用的影響,選取 1 ∶30、1 ∶40、1 ∶50共3個(gè)水平進(jìn)行正交優(yōu)化分析。

    圖3 不同料液比對(duì)苦瓜籽粗多糖提取率的影響

    2.4 提取次數(shù)

    從圖4可以看出,隨著提取次數(shù)增加,BMSP的提取率先呈直線上升再趨于平緩,提取4次與3次的多糖提取率基本保持不變。這可能是在前3次的提取中,幾乎90%的多糖被提取出來(lái),再增加提取次數(shù),對(duì)多糖的提取率影響不大。除此之外,考慮到提取過(guò)程中消耗的成本和時(shí)間,故選取2、3、4次共3個(gè)水平進(jìn)行正交優(yōu)化分析。

    圖4 不同提取次數(shù)對(duì)苦瓜籽粗多糖提取率的影響

    2.5 正交實(shí)驗(yàn)

    在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,選定4因素3水平設(shè)計(jì)正交實(shí)驗(yàn)。因素水平見(jiàn)表1。

    表1 4因素3水平表

    從正交實(shí)驗(yàn)的極差(R)結(jié)果(表2)可知,各因素的影響順序?yàn)镃

    表2 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果

    表2的極差(R)和表3的偏差平方和的結(jié)果相一致,各因素的影響順序C

    表3 正交實(shí)驗(yàn)方差分析

    2.6 驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)

    為了進(jìn)一步驗(yàn)證最優(yōu)工藝的正確性和合理性,以理論上最優(yōu)工藝提取苦瓜籽多糖,平行實(shí)驗(yàn)3次,進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)。結(jié)果,苦瓜籽多糖的平均提取率為5.65%,RSD=2.13%(n=3)。考慮到成本和后續(xù)濃縮等問(wèn)題,結(jié)合極差和方差結(jié)果分析料液比對(duì)多糖的提取率的影響相對(duì)較小,故選取最小比例的料液比,此時(shí)提取率達(dá)5.61%。最終確定最佳工藝條件為提取溫度90 ℃,提取時(shí)間2.5 h,料液比1 ∶30,提取次數(shù)3次。

    2.7 蛋白質(zhì)含量

    以牛血清白蛋白濃度為橫坐標(biāo),D(595 nm)值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖5所示,蛋白濃度與D值有較好的線性相關(guān)性,方程式為Y=0.030 9X+0.008 4,R2=0.999 9。最終求出BMSP中蛋白質(zhì)含量為1.09%。

    圖5 蛋白質(zhì)濃度標(biāo)準(zhǔn)曲線

    2.8 抗氧化活性

    2.8.1 DPPH自由基清除率 從圖6可以看出,BMSP對(duì)DPPH自由基具有較強(qiáng)的清除能力,其中在3 mg/mL時(shí),BMSP和維生素C的清除率相近,分別為81%和90%。

    圖6 苦瓜籽粗多糖與維生素C對(duì)DPPH自由基的清除率

    2.8.2 ·OH清除率 Fenton反應(yīng)結(jié)果顯示,BMSP對(duì)鄰二氮菲-金屬鐵離子-H2O2體系產(chǎn)生的·OH具有清除作用,且隨著濃度的增加,清除能力逐漸增強(qiáng),呈現(xiàn)良好劑量依賴性,最高能達(dá)到50%,相同濃度下的清除能力略低于維生素C。見(jiàn)圖7。

    圖7 苦瓜籽粗多糖與維生素C對(duì)羥自由基的清除率

    圖8 苦瓜籽粗多糖與維生素C對(duì)的清除作用

    2.8.4 總還原能力 普魯士藍(lán)實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,BMSP具有較強(qiáng)的還原能力,且還原能力隨著多糖的濃度的增加而不斷增大;濃度從1 mg/mL增大到3 mg/mL,BMSP的還原能力緩慢增加,最高D值達(dá)0.65,但是與維生素C相比,還是相差很大。見(jiàn)圖9。

    圖9 苦瓜籽粗多糖與維生素C的總還原能力比較

    3 討論

    本研究從藥食同源植物苦瓜的種仁苦瓜籽中提取多糖,在單因素實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)上進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì),最終確定了多糖提取的最佳工藝,BMSP的提取率高達(dá)5.61%,為后續(xù)分離純化苦瓜籽多糖提供了基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。因多糖在分離純化過(guò)程中損失量大,后期采用超聲或者微波等新型技術(shù)輔助提取以提高BMSP提取率。

    本實(shí)驗(yàn)采用4種體外抗氧化實(shí)驗(yàn)方法,以自由基清除率為指標(biāo),分別評(píng)價(jià)BMSP和維生素C體外抗氧化活性。實(shí)驗(yàn)表明,BMSP具有較強(qiáng)的抗氧化活性,隨著濃度的增大,當(dāng)濃度增加到1 mg/mL后抗氧化活性的增強(qiáng)緩慢。用不同方法檢測(cè)BMSP抗氧化活性的結(jié)果具有一定差異,但BMSP對(duì)DPPH自由基和·OH清除能力,與強(qiáng)抗氧化劑維生素C相近,在天然抗氧化劑的研究開(kāi)發(fā)方面具有潛在的應(yīng)用價(jià)值。多糖的抗氧化活性與其結(jié)構(gòu)中的半縮醛羥基數(shù)目、糖鏈結(jié)構(gòu)及相對(duì)分子質(zhì)量等有關(guān)[15]。對(duì)BMSP的進(jìn)一步分離純化和構(gòu)效關(guān)系的探討將有助于促進(jìn)苦瓜籽藥材的開(kāi)發(fā)和利用。

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