馮 華,劉運(yùn)超,陳玉梅,魏 薔,張改平,2
(1.河南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 河南省動(dòng)物免疫學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,農(nóng)業(yè)部動(dòng)物免疫學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河南 鄭州 450002;2.河南農(nóng)業(yè)大學(xué) 牧醫(yī)工程學(xué)院,河南 鄭州 450002;3.鄭州大學(xué) 生命科學(xué)院,河南 鄭州 450001)
豬圓環(huán)病毒(Porcinecircovirustype,PCV)屬于圓環(huán)病毒科(Circoviridae)、圓環(huán)病屬(Circovirusgenus)[1]。1974年由德國(guó)人Tischer在豬腎細(xì)胞(Porcine kidney cell)中發(fā)現(xiàn),1982年被命名為豬圓環(huán)病毒,是迄今為止動(dòng)物病毒中最小的DNA病毒[2-3]。PCV病毒呈20面體對(duì)稱,無囊膜,直徑為17~22 nm。病毒基因組是一條共價(jià)單股環(huán)狀DNA病毒,全長(zhǎng)1 766~1 768 bp[4],包含2個(gè)重要的開放閱讀框:ORF1全長(zhǎng)904 bp,主要編碼與病毒復(fù)制有關(guān)的蛋白R(shí)ep和Rep′蛋白;ORF2全長(zhǎng)702 bp或705 bp是區(qū)分不同PCV2亞型的主要區(qū)域,編碼結(jié)構(gòu)蛋白cap,該蛋白是主要的免疫原蛋白。根據(jù)病毒的基因組成和抗原性的不同,病毒主要分為豬圓環(huán)病毒1型(PCV1)和2型(PCV2)。PCV2型主要侵染動(dòng)物的免疫系統(tǒng),降低動(dòng)物免疫應(yīng)答能力,造成免疫功能障礙,機(jī)體抵抗力下降,是能夠引起豬類多種臨床疾病的主要病原體,如斷奶仔豬多系統(tǒng)衰竭綜合征(Post-weaning multisystemic wasting syndrome,PMWS)、豬呼吸道疾病綜合征(Porcine respiratory disease complex,PRDC)、豬皮炎腎病綜合征(Porcine dermatitis and nephropathy syndrome,PDNS)和新生仔豬先天性震顫(Congenital tremors,CT)等[5-6]。近年來,PCV2在國(guó)內(nèi)和國(guó)外迅速傳播,并且流行范圍不斷擴(kuò)大,給養(yǎng)豬業(yè)帶來了巨大的經(jīng)濟(jì)損失[7]。
目前,PCV2的診斷和預(yù)防也成為近年來PCV研究的熱點(diǎn)。臨床上用來檢測(cè)PCV2的主要診斷方法有酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)、間接免疫熒光試驗(yàn)(IFA)、單層過氧化物酶試驗(yàn)(IPMA)和常規(guī)PCR等。其中,ELISA、IFA和IPMA主要用于PCV2血清的檢測(cè)[8-10],但是檢測(cè)過程復(fù)雜,消耗時(shí)間過長(zhǎng);雖然常規(guī)PCR檢測(cè)PCV2的方法已經(jīng)廣泛應(yīng)用于臨床樣品的檢測(cè)[11],但是該方法不能實(shí)現(xiàn)對(duì)病毒量的精確分析,且靈敏度相對(duì)較低,易出現(xiàn)假陽(yáng)性,無法檢測(cè)豬場(chǎng)的隱性感染。相比上述方法,熒光定量PCR檢測(cè)方法具有特異性強(qiáng)、靈敏度高、可重復(fù)性好等優(yōu)點(diǎn),能夠檢測(cè)到較低拷貝數(shù)的PCV2病毒,針對(duì)豬場(chǎng)的隱性感染能有效檢測(cè),適合用于PCV2臨床樣品的檢測(cè)。許多學(xué)者建立了成熟的基于熒光定量PCR的PCV2臨床檢測(cè)方法。李鵬等[12]根據(jù)PCV2ORF1設(shè)計(jì)1對(duì)特異性引物建立了SYBR Green Real-time PCR檢測(cè)PCV2的方法,該檢測(cè)方法的靈敏度比常規(guī)PCR檢測(cè)方法高10倍,最低檢出量為10~100個(gè)拷貝/mL,與PRRSV、PRV、CSFV、PPV沒有交叉反應(yīng),特異性比較高。于靜等[13]建立的熒光定量PCR檢測(cè)方法靈敏度比較高,可以達(dá)到10個(gè)拷貝/mL,在檢測(cè)的34份陽(yáng)性臨床樣品中,檢測(cè)符合率為100%,明顯高于普通PCR方法的50%。郭慧娟等[14]建立的Taq Man熒光定量PCR檢測(cè)PCV2的方法最低可以檢測(cè)4.53×102個(gè)拷貝/mL,比普通PCR檢測(cè)方法高100倍,并且與其他病毒沒有交叉反應(yīng),重復(fù)性好,特異性高。
本試驗(yàn)根據(jù)熒光定量PCR原理,設(shè)計(jì)針對(duì)PCV2ORF2序列設(shè)計(jì)特異性引物,通過對(duì)多種條件的優(yōu)化,擬建立一種快速、靈敏、特異的基于SYBRGreen熒光定量PCR(SYBRGreen Real-time qPCR)的PCV2診斷方法,旨在為PCV2臨床診斷及研究提供科學(xué)的診斷方法。
病毒株、細(xì)胞株和載體:PCV2-zz毒株由河南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院動(dòng)物免疫學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室臨床分離得到,豬瘟病毒(CSFV)、豬細(xì)小病毒(PPV)、豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)、豬偽狂犬病毒(PRV)為本實(shí)驗(yàn)室保存。豬圓環(huán)病毒疑似病料為2015年河南省多個(gè)地區(qū)送檢的發(fā)病豬的脾臟和淋巴結(jié)。PK-15細(xì)胞、PMD19-T載體和JM109大腸桿菌由本實(shí)驗(yàn)室保存。
主要試劑:SYBRGreen I PreMix聚合酶、DL2000 Marker、ExTaq酶等為大連寶生物工程公司產(chǎn)品;膠回收試劑盒、質(zhì)粒提取試劑盒、病毒基因組提取試劑盒等購(gòu)自O(shè)MEGA公司。DMEM培養(yǎng)液、胎牛血清購(gòu)自HyClone公司。
根據(jù)GenBank中已發(fā)表的PCV2ORF2基因序列設(shè)計(jì)2對(duì)特異性引物(表1)。其中P1含有NheⅠ的酶切位點(diǎn),P2含有PmeⅠ的酶切位點(diǎn)用于構(gòu)建作為陽(yáng)性標(biāo)準(zhǔn)品的載體pMD19T-ORF2和常規(guī)PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增長(zhǎng)度為702 bp;P3、P4為用于熒光定量PCR檢測(cè)的特異引物,擴(kuò)增長(zhǎng)度為122 bp。2對(duì)引物均由上海生工生物工程服務(wù)有限公司合成。
將臨床分離到的PCV2-zz接種到PK-15細(xì)胞上傳代,傳至第10代后,反復(fù)凍融3次,12 000 r/min離心10 min,收集病毒,使用OMEGA公司的病毒基因組提取試劑盒提取PCV2的DNA,-20 ℃凍存?zhèn)溆谩?/p>
以提取的PCV2的DNA為模板,利用特異性引物P1和P2對(duì)PCV2ORF2的基因進(jìn)行擴(kuò)增,PCR反應(yīng)體系為25 μL:ExTaq12.5 μL,上下游引物各1 μL,DNA模板1 μL,加滅菌水補(bǔ)齊25 μL。PCR反應(yīng)條件:95 ℃ 預(yù)變性5 min;95 ℃ 變性45 s,56 ℃退火45 s,72 ℃延伸1 min,32個(gè)循環(huán);最后72 ℃延伸10 min。反應(yīng)結(jié)束后經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳鑒定后,利用膠回收試劑盒回收純化,并與pMD-19T載體連接,經(jīng)過酶切、測(cè)序鑒定,構(gòu)建的重組質(zhì)粒pMD19T-ORF2,作為構(gòu)建熒光定量PCR的陽(yáng)性標(biāo)準(zhǔn)模板。
表1 用于pMD19T-ORF2構(gòu)建、常規(guī)PCR和SYBRGreen Real-time qPCR的引物Tab.1 Primers used for pMD19T-ORF 2 construction,standard PCR and SYBRGreen Real-time qPCR
注:下劃線表示酶切位點(diǎn)。
Note:Underlined indicate restriction site.
為了獲得熒光定量PCR的最佳反應(yīng)條件,本試驗(yàn)以pMD19T-ORF2作為模板對(duì)熒光定量PCR的各反應(yīng)條件進(jìn)行了優(yōu)化,包括對(duì)引物(P3/P4)的工作濃度、退火溫度等條件的優(yōu)化。分別以終濃度為0.1,0.2,0.3,0.4,0.5 μmol/L的引物進(jìn)行熒光定量PCR檢測(cè),根據(jù)Ct值和擴(kuò)增曲線確定引物的最佳工作濃度;并分別以55,58,60,62,64 ℃作為退火溫度對(duì)熒光定量PCR進(jìn)行相應(yīng)的優(yōu)化,根據(jù)Ct值獲得最佳的退火溫度。
利用紫外分光光度計(jì)測(cè)定pMD19T-ORF2濃度,計(jì)算重組質(zhì)粒的拷貝數(shù),調(diào)整質(zhì)粒濃度并將其從3×108個(gè)拷貝/mL 10倍系列稀釋到3×102個(gè)拷貝/mL作為陽(yáng)性標(biāo)準(zhǔn)品,每個(gè)濃度做3個(gè)重復(fù),以起始標(biāo)準(zhǔn)品拷貝數(shù)的對(duì)數(shù)值(lg)為橫坐標(biāo),以Ct值為縱坐標(biāo)做回歸曲線,建立PCV2檢測(cè)的標(biāo)準(zhǔn)曲線,并對(duì)該反應(yīng)的溶解曲線進(jìn)行分析。
以稀釋后的pMD19T-ORF2(3×108~3×102個(gè)拷貝/mL)為模板,分別用P1/P2、P3/P4引物進(jìn)行普通PCR和熒光定量PCR,并對(duì)2種方法的檢測(cè)限進(jìn)行分析。
利用病毒基因組提取試劑盒分別提取PPV和PRV的DNA,提取PRRSV和CSFV的RNA并反轉(zhuǎn)錄成cDNA;分別以其為模板,采用SYBR Green Real-time qPCR方法進(jìn)行檢測(cè),并以pMD19T-ORF2(3×108~3×104個(gè)拷貝/mL)為模板作為陽(yáng)性對(duì)照,設(shè)立空白對(duì)照組,以檢測(cè)該方法的特異性。
以不同拷貝數(shù)的陽(yáng)性標(biāo)準(zhǔn)品作為模板,進(jìn)行組內(nèi)和組間重復(fù)性試驗(yàn)。選取3×107,3×106,3×105個(gè)拷貝/mL 這3個(gè)濃度的標(biāo)準(zhǔn)品為模板進(jìn)行該熒光定量PCR,每個(gè)濃度做3個(gè)重復(fù),平行做3次。根據(jù)結(jié)果依次對(duì)Ct值的平均值±標(biāo)準(zhǔn)差和變異系數(shù)進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。
本次用來檢測(cè)的臨床樣品為34份,利用病毒基因組提取試劑盒提取相關(guān)DNA,用建立的PCV2 SYBR Green熒光定量PCR進(jìn)行檢測(cè),并對(duì)檢測(cè)結(jié)果進(jìn)行分析。
2.1.1 PCR擴(kuò)增產(chǎn)物鑒定 以PCV2-zz DNA為模板,用P1和P2引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,瓊脂糖凝膠結(jié)果顯示,目的片段大小約為702 bp,與預(yù)測(cè)的結(jié)果相一致(圖1)。
M.DL2000;1.PCV2-CAP 擴(kuò)增產(chǎn)物。M.DL2000;1.PCR product of PCV2-CAP.
2.1.2 重組質(zhì)粒酶切產(chǎn)物鑒定 將從感受態(tài)細(xì)胞JM109中獲得的pMD19T-ORF2重組質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切鑒定,酶切產(chǎn)物通過瓊脂糖凝膠電泳鑒定顯示在702 bp處有目的條帶出現(xiàn),表明目的片段成功插入pMD-19T載體中(圖2)。另外,測(cè)序結(jié)果與預(yù)期的片段相一致。
M.DL10000;1.雙酶切產(chǎn)物。M.DL10000;1.Double digests.
本試驗(yàn)對(duì)熒光定量PCR反應(yīng)的引物濃度和退火溫度進(jìn)行了優(yōu)化,結(jié)果表明,在引物的最佳終濃度為0.2 μmol/L,最適退火溫度為55 ℃。因此,25 μL反應(yīng)體系包括SYBRGreen I PreMix聚合酶12.5 μL,上下游引物(10 μmol/mL)各0.5 μL,模板1 μL,超純水10.5 μL;最適反應(yīng)條件為:94 ℃,10 s;94 ℃變性5 s、60 ℃退火10 s、72 ℃延伸10 s,40個(gè)循環(huán)。
以10倍系列稀釋的pMD19T-ORF2(3×108,3×107,3×106,3×105,3×104,3×103,3×102個(gè)拷貝/mL)作為模板進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增反應(yīng),通過對(duì)Ct值結(jié)果的分析,建立PCV2擴(kuò)增標(biāo)準(zhǔn)曲線,線性回歸方程為y=-3.092 2x+31.304,其斜率為3.092 2,相關(guān)系數(shù)是0.998 5,結(jié)果顯示,其線性結(jié)果好(圖3)。從熒光定量PCR溶解曲線的分布圖3可以看出,溶解曲線的特征峰比較單一,并且擴(kuò)增產(chǎn)物的溶解溫度在77~79 ℃,說明熒光定量PCR的擴(kuò)增沒有形成引物二聚體,也沒有出現(xiàn)非特異性產(chǎn)物。
同樣以濃度為3×108~3×102個(gè)拷貝/mL 的pMD19T-ORF2為模板,P1和P2為引物進(jìn)行常規(guī)PCR,并對(duì)常規(guī)PCR檢測(cè)限進(jìn)行鑒定,結(jié)果表明(圖4),常規(guī)PCR的最小檢出量為3×104個(gè)拷貝/mL;而針對(duì)同樣的模板,熒光定量PCR的最小檢出量為3×102個(gè)拷貝/mL,比常規(guī)PCR高100倍,說明該熒光定量PCR對(duì)PCV2的檢測(cè)更敏感。
用所建立的SYBRGreen Real-time qPCR方法對(duì)CSFV、PPV、PRRSV、PRV這些病毒進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果顯示,只有pMD19T-ORF2陽(yáng)性對(duì)照出現(xiàn)特異性擴(kuò)增,而針對(duì)CSFV、PRRSV、PRV等病毒無擴(kuò)增;此外,針對(duì)PPV病毒在Ct值為38.16時(shí)出現(xiàn)微量擴(kuò)增,由于CT>31判定為陰性(表2)。檢測(cè)結(jié)果證明,所建立的SYBRGreen Real-time qPCR方法特異性較高。
A.標(biāo)準(zhǔn)曲線;B.擴(kuò)增曲線;C.溶解曲線。A.Standard curve;B.Amplification curve;C.Melting curve.
M.DL2000 Marker;1~7.標(biāo)準(zhǔn)品稀釋度為3×108~3×102拷貝/mL;8.陰性對(duì)照。M.DL2000 Marker;1-7.Different template concentrations from 3×108 copies/mL to 3×102 copies/mL;8.Negative control.
為了驗(yàn)證SYBRGreen熒光定量PCR檢測(cè)PCV2方法的穩(wěn)定性,分別選取3×107,3×106,3×105個(gè)拷貝/mL做組內(nèi)和組間重復(fù)性試驗(yàn),結(jié)果表明,組內(nèi)重復(fù)檢測(cè)的Ct值誤差小于0.2,變異系數(shù)在0.29%~0.32%;組間重復(fù)檢測(cè)的Ct值誤差小于0.2,變異系數(shù)在0.32%~0.36%(表3),表明該方法具有很好的重復(fù)性。
表2 SYBRGreen Real-time qPCR特異性檢測(cè)結(jié)果Tab.2 Result of specificity of the SYBRGreen Real-time qPCR
表3 SYBRGreen Real-time qPCR批內(nèi)和批間重復(fù)性試驗(yàn)結(jié)果Tab.3 The reproducibility of inter- assay and intra-assay for the SYBRGreen Real-time qPCR
利用SYBRGreen Real-time qPCR和普通PCR對(duì)38份臨床樣品進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果顯示(表4),用SYBRGreen Real-time qPCR檢測(cè)PCV2的方法共檢測(cè)到陽(yáng)性樣品31份,檢出率為81.5%(31/38);用普通PCR檢測(cè)PCV2的方法共檢測(cè)到26份陽(yáng)性樣品,檢出率為68.4%(26/38)。該熒光定量PCR的檢出率相比普通PCR高出13.1%,說明熒光定量PCR敏感性高于普通PCR,更適合臨床樣品的檢測(cè)。
表4 SYBRGreen Real-time qPCR與普通PCR臨床樣品檢測(cè)結(jié)果的比較Tab.4Comparison between SYBRGreen Real-time qPCR and conventional PCR for clinical sampled etection
PCV是引起豬圓環(huán)病毒相關(guān)疾病(Porcine circovirus associated disease,PCVAD)的主要病原,該病毒增殖快、毒力強(qiáng)、更容易破壞機(jī)體免疫系統(tǒng),引起免疫能力下降,繼而造成其他病毒或細(xì)菌混合感染,給疾病的診斷和治療帶來了極大的困難[15-17]。因此,對(duì)PCV2感染早期臨床快速診斷就顯得尤為重要。在PCV2的主要檢測(cè)方法中,血清學(xué)檢測(cè)通常采用病毒中和試驗(yàn)和ELISA方法,但這些檢測(cè)手段比較復(fù)雜,技術(shù)要求高,耗時(shí)長(zhǎng);尤其是病毒中和試驗(yàn),該檢測(cè)方法對(duì)病毒分離鑒定及抗體要求比較高。另外,在ELISA檢測(cè)過程中,操作不規(guī)范極易造成假陽(yáng)性結(jié)果[18],不同的血清稀釋度對(duì)ELISA檢測(cè)結(jié)果的判斷標(biāo)準(zhǔn)也會(huì)有影響。由于PCV2是DNA病毒,常規(guī)PCR在DNA水平檢測(cè)PCV2是有效手段[19],但與熒光定量PCR相比,容易出現(xiàn)假陽(yáng)性,耗時(shí)也比較長(zhǎng),檢測(cè)敏感度較低,對(duì)于含毒量比較低的豬群則不易檢出,因此,對(duì)于亞臨床感染豬群,常規(guī)PCR會(huì)造成漏檢。目前,熒光定量PCR是國(guó)內(nèi)檢測(cè)PCV2的最有效的手段,它能以數(shù)值的形式更直觀地判斷豬群感染PCV2的情況,并且具有靈敏性高、特異性強(qiáng)、耗時(shí)短的優(yōu)點(diǎn)[20-21]。
本研究通過參考已經(jīng)報(bào)道PCV1和PCV2全基因序列差異性的文章[22-23],分析2種亞型在ORF2片段區(qū)的差異,從而選取了PCV2ORF2的相對(duì)保守區(qū),在保守區(qū)內(nèi)設(shè)計(jì)一對(duì)特異性引物,建立了一種SYBRGreen Real-time qPCR檢測(cè)PCV2的診斷方法。該方法與CSFV、PPV、PRRSV和PRV這些病毒的核酸均無交叉反應(yīng),說明該方法的特異性強(qiáng)。通過對(duì)溶解曲線的分析得出在擴(kuò)增過程中未產(chǎn)生引物二聚體和非特異性擴(kuò)增,并且擴(kuò)增產(chǎn)物的溶解溫度在79~81℃波動(dòng),屬于正常波動(dòng)范圍。根據(jù)不同的稀釋倍數(shù)的標(biāo)準(zhǔn)樣品擴(kuò)增得到的Ct值建立標(biāo)準(zhǔn)曲線y=-3.092 2x+ 31.304,其斜率為3.0922,相關(guān)系數(shù)是0.998 5,結(jié)果顯示其線性較好。組內(nèi)重復(fù)檢測(cè)和組間重復(fù)檢測(cè)的變異系數(shù)都低于0.32%,說明熒光定量PCR具有很好的重復(fù)性。熒光定量PCR對(duì)標(biāo)準(zhǔn)品的最小檢出量為3×102個(gè)拷貝/mL,比常規(guī)PCR方法高出100倍,與其他研究學(xué)者所建立的熒光定量PCR檢測(cè)PCV2方法的敏感性相差較小[24-26]。在38份臨床檢測(cè)樣品中,熒光定量PCR陽(yáng)性樣品檢出率為81.5%,明顯高于普通PCR的68.4%。結(jié)果表明,該試驗(yàn)所建立的豬圓環(huán)病毒2型SYBRGreen Real-time PCR檢測(cè)方法特異性強(qiáng)、靈敏度高、重復(fù)性好、耗時(shí)短,適合臨床樣品的檢測(cè),該方法的建立為PCV2流行病學(xué)的調(diào)查和臨床疫病的檢測(cè)提供了技術(shù)支持,同時(shí)為疫苗免疫效果的評(píng)價(jià)提供了參考依據(jù)。