曹俊濤,任秀燕,王玉玲,劉彥明
(信陽師范學(xué)院 化學(xué)化工學(xué)院,河南 信陽 464000)
癌胚抗原(CEA)是一種可以引起患者免疫反應(yīng)的抗原,通常由腫瘤細(xì)胞產(chǎn)生. CEA作為一種可以在多種腫瘤中表達(dá)的廣譜性腫瘤標(biāo)志物,與多個(gè)腫瘤標(biāo)志物進(jìn)行聯(lián)合檢測可用于臨床多種腫瘤的早期診斷.因此,提出一種新的易操作、靈敏、快速檢測CEA的方法對早期的腫瘤臨床診斷具有十分重要的意義.迄今為止,測定CEA含量的方法主要有方波伏安法[1]、熒光免疫分析法[2]、毛細(xì)管電泳法[3]、酶聯(lián)免疫吸附測定法[4]、放射免疫檢測法[5]等.但是這些方法還存在著一些不足之處,例如耗時(shí)、儀器昂貴、需要配備專業(yè)人員等.
電化學(xué)發(fā)光(ECL)具有響應(yīng)迅速、靈敏度高、背景信號低、選擇性好且易操作等優(yōu)點(diǎn),已成為近年來人們研究的熱點(diǎn)之一[6-8].魯米諾(luminol)作為一個(gè)高發(fā)光效率試劑,被應(yīng)用于多種分析物檢測[9-11].但是,在不降低發(fā)光效率的情況下將luminol分子固定在電極界面上是比較困難的,這成為了luminol試劑在ECL傳感領(lǐng)域應(yīng)用的一個(gè)障礙.據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道,金納米顆粒(Au NPs)具有優(yōu)良的生物相容性,且通過Au-N化學(xué)鍵之間的弱相互作用以及Au NPs與luminol所帶正負(fù)電荷的靜電作用,Au NPs可以與luminol結(jié)合在一起形成穩(wěn)定結(jié)構(gòu).此外,Au NPs具備良好的導(dǎo)電性、較大的比表面積以及對luminol氧化的良好的電活性,故其對luminol-H2O2發(fā)光體系表現(xiàn)出顯著的催化性能[11].因此,使用魯米諾功能化的金納米顆粒(L-Au NPs)作為基底材料構(gòu)建ECL傳感器能夠得到令人滿意的結(jié)果.
基于此,我們采用一鍋法成功制備了L-Au NPs復(fù)合材料,以L-Au NPs-H2O2為ECL發(fā)光體系,結(jié)合適配體的特異性識別作用構(gòu)建了一個(gè)ECL適配體傳感器.利用CEA在電極界面對ECL信號的抑制作用,提出了一個(gè)以L-Au NPs為基底材料測定CEA的電化學(xué)發(fā)光新方法.
RST5200F電化學(xué)工作站(鄭州世瑞思儀器科技有限公司);BPCL-1-IC微弱發(fā)光測量儀(中國科學(xué)院生物物理研究所);UVmini-1240型紫外可見分光光度計(jì)(Shimadzu,日本);JEM-2100F型200 kV場發(fā)射透射電子顯微鏡(TEM,日本電子株式會(huì)社JEOL,日本).ECL信號測量均在三電極系統(tǒng)中進(jìn)行,以鉑盤電極作為輔助電極,以Ag/AgCl為參比電極,將經(jīng)過修飾的玻碳電極(GCE)作為工作電極.
NaBH4,天津市巴斯夫化工有限公司;HAuCl4·4H2O、殼聚糖(CS),國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;戊二醛(GLD),天津市科密歐化學(xué)試劑開發(fā)中心;CEA,鄭州免疫生物技術(shù)有限公司; CEA的適配體(aptamer)5′-NH2-(CH2)6-TTT TAT ACC AGC TTA TTC AAT T-3′,生工生物工程(上海)股份有限公司合成;人免疫球蛋白G(hIgG)、人血清白蛋白(HSA)、牛血清蛋白(BSA),上海索萊寶生物科技有限公司(Seebio Biotechnology);0.1 mol/L魯米諾(luminol,SIGMA-ALDRICH)儲(chǔ)備液,用0.1 mol/L的NaOH配制;H2O2溶液,天津市永大化學(xué)試劑有限公司;0.1 mol/L磷酸鹽緩沖溶液(pH=7.4,PBS),由0.1 mol/L KH2PO4-Na2HPO4,0.1 mol/L KCl構(gòu)成.實(shí)驗(yàn)過程中所用水均為18.25 MΩ·cm純水(臺灣艾柯-成都康寧實(shí)驗(yàn)專用純水設(shè)備廠).
將4 mL含有30 mmol/L H2O2的PBS溶液(pH=7.4)加入到檢測池中,接著分別把輔助電極、參比電極、工作電極浸入檢測底液中構(gòu)成三電極體系.使用RST5200F電化學(xué)工作站、BPCL-1-IC微弱發(fā)光測量儀對修飾好的工作電極進(jìn)行ECL信號的測量.測得的ECL信號強(qiáng)度與CEA濃度的對數(shù)成負(fù)相關(guān).用相同的方法測得其他標(biāo)準(zhǔn)溶液的信號強(qiáng)度,即可得出CEA濃度的標(biāo)準(zhǔn)曲線.然后使用該方法對實(shí)際樣品進(jìn)行檢測,通過標(biāo)準(zhǔn)曲線即可得到樣品中的CEA濃度.
L-Au NPs使用文獻(xiàn)[12]中的方法的合成.合成之前,將所有需要用到的玻璃器皿用王水浸泡處理12 h以上,取出并清洗后再用超純水浸泡2 h.將冰凍的4 mL 0.01 mol/L luminol溶液和0.6 mL 0.1 mol/L NaBH4溶液在磁力攪拌狀態(tài)下加入20 mL含有2.5×10-4mol/L的HAuCl4水溶液中,在冰浴中持續(xù)攪拌10 min,此時(shí),溶液會(huì)立即變?yōu)樯钭霞t色.此后,將該反應(yīng)置于室溫下持續(xù)攪拌6 h,制得L-Au NPs.
首先將玻碳電極依次用0.3 μm和0.05 μm的Al2O3粉末進(jìn)行拋光處理,然后在乙醇和水中超聲清洗,氮?dú)獯蹈?將8 μL合成的L-Au NPs滴加到已拋光和清潔干凈的裸玻碳電極上,在60 ℃的烘箱中烘干.接著,將8 μL 0.05 g/L的CS滴加在電極界面上,得到L-Au NPs/CS復(fù)合膜,使得L-Au NPs在電極界面不易脫落.在CS/L-Au/GCE電極上滴加8 μL 5%的GLD,常溫下放置30 min,使之充分結(jié)合.滴加8 μL的1.0×10-7mol/L識別分子NH2-aptamer,在4 ℃的冰箱中放置12 h,通過適配體5′端的氨基與戊二醛的醛基之間發(fā)生的醛胺縮合反應(yīng),達(dá)到固定識別分子的目的.在此基礎(chǔ)上,用0.1%的BSA對電極界面非特異性結(jié)合位點(diǎn)進(jìn)行封閉,即得到ECL適配體傳感器.最后,在電極上滴加8 μL一系列不同濃度的CEA,37 ℃下孵育1 h,用水輕輕沖洗晾干后,就可以用于對CEA的ECL信號強(qiáng)度檢測.電極修飾過程見圖1.
在ECL信號測量過程中,以30 mmol/L H2O2的PBS溶液(pH=7.4)作為檢測底液,掃描電壓為0.2 V~0.8 V,掃速為50 mV/s,光電倍增管高壓為-800 V.
圖1 ECL適配體傳感器構(gòu)建示意圖Fig. 1 Schematic illustration for the construction of ECL aptasensor
圖1展示了傳感器的構(gòu)建過程及該檢測體系的原理,可能的反應(yīng)機(jī)理如下:
在電激發(fā)下,luminol被氧化為luminol自由基,隨后自由基與H2O2發(fā)生氧化還原反應(yīng)生成3-氨基鄰苯二甲酸離子激發(fā)態(tài)(3-aminophthalate ion*),接著激發(fā)態(tài)釋放能量,生成3-氨基鄰苯二甲酸離子(3-aminophthalate ion)并發(fā)出波長為425 nm的光.
當(dāng)不同濃度的CEA存在時(shí),不同數(shù)量的CEA分子與識別分子特異性相結(jié)合,產(chǎn)生不同的空間位阻,對電子的轉(zhuǎn)移產(chǎn)生了不同程度的阻礙.濃度越大,目標(biāo)分子與識別分子結(jié)合的就越多,導(dǎo)致阻礙越大,ECL信號被淬滅的越多,ECL信號強(qiáng)度也就越低.
利用TEM對L-Au NPs的形貌、分散程度進(jìn)行表征.如圖2A所示L-Au NPs呈球狀,平均粒徑在6 nm左右,呈現(xiàn)出較好的形貌.luminol和L-AuNPs的紫外吸收光譜如圖2B所示.由圖可知,L-Au NPs在波長300 nm和355 nm處展現(xiàn)出luminol的特征吸收峰,在波長525 nm處展現(xiàn)出Au NPs的特征吸收峰,表明L-Au NPs的成功制備.
圖2 (A)L-Au NPs的TEM圖;(B)luminol(a)和L-Au NPs(b)的UV-vis吸收光譜圖Fig. 2 (A) TEM image of L-Au NPs; (B) UV-visspectrum of luminol (a), L-Au NPs (b)
利用電化學(xué)(交流阻抗譜)和ECL方法對傳感器的層層組裝過程進(jìn)行了表征.交流阻抗在含有0.1 mol/L KCl 的5.0 mmol/L K3[Fe(CN)6]/K4[Fe(CN)6](1∶1)的檢測液中進(jìn)行.如圖3A所示,隨著L-AuNPs/CS、GLD、aptamer、BSA、CEA的依次修飾,電極界面的阻抗逐漸增大.這是由于生物分子的空間位阻、差的導(dǎo)電性能對電子轉(zhuǎn)移、氧化還原探針在電極界面的擴(kuò)散的阻礙作用,導(dǎo)致電極界面電阻增加,電極交流阻抗信號逐步升高.電極界面交流阻抗變化說明該ECL適配體傳感器構(gòu)建成功.同時(shí),傳感器層層修飾過程中ECL變化趨勢(見圖3B)也進(jìn)一步印證了電化學(xué)阻抗所得結(jié)果,說明了該傳感器的成功構(gòu)建.
圖3 在電極不同修飾階段的EIS(A)和ECL(B)表征Fig. 3 The curves of EIS (A) and ECL (B)characterization of electrodes at different modify stages :the bare GCE (a) , CS/L-Au/GCE (b) , aptamer/GLD/CS/L-Au/GCE (c) , BSA/aptamer/GLD/CS/L-Au/GCE (d) ,CEA/BSA/aptamer/GLD/CS/L-Au/GCE (e)
在優(yōu)化實(shí)驗(yàn)條件下,以CEA為目標(biāo)分子,對一系列濃度的CEA標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行了檢測,見圖4.
圖4 不同濃度的CEA的ECL強(qiáng)度(A)和濃度校準(zhǔn)曲線(B)Fig. 4 ECL calibration curve (A) and Intensityconcentration curve (B) at various concentrationsof CEA : (a - i) 0.0005, 0.001, 0.005, 0.01, 0.05, 0.1, 0.5, 1.0 and 5.0 μg/L
由圖4可知,ECL信號強(qiáng)度(I)與CEA濃度的對數(shù)(lgCCEA)呈良好的線性關(guān)系,線性范圍為5.0×10-10~5.0×10-6g/L,線性方程為I=-9635.53-1273.88 lgCCEA(CCEA為CEA濃度,kg/L),相關(guān)系數(shù)R2=0.998.計(jì)算得出傳感器對CEA的檢出限為1.8×10-10g/L.
以hIgG、HSA為干擾蛋白,考察了傳感器的特異性.結(jié)果表明,用傳感器分別與hIgG、HSA孵育后,傳感器ECL響應(yīng)與空白溶液ECL響應(yīng)無明顯差別.將傳感器與hIgG、HSA與CEA的混合液孵育,其ECL響應(yīng)與單獨(dú)孵育0.1 μg/L CEA所得ECL響應(yīng)一致,充分說明該傳感器有良好的選擇性.利用批內(nèi)檢測和批間檢測考察了傳感器的重現(xiàn)性.同一批次5個(gè)傳感器對1.0×10-7g/L CEA 的響應(yīng)相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為3.4%,不同批次5個(gè)傳感器對1.0×10-7g/L CEA的響應(yīng)RSD為7.8%.
將傳感器用于人血清樣品(取自信陽市中心醫(yī)院)中CEA含量的測定,并用羅氏ECL檢測法作為參考進(jìn)行比較(如表1).結(jié)果表明,相對誤差為- 2.5%~2.9%,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為2.7%~4.9%. 將3個(gè)不同濃度水平的CEA標(biāo)準(zhǔn)品(1.0×10-9g/mL,5.0×10-8g/L,1.0×10-6g/L)分別加入兩個(gè)血清樣品中,回收率在85.3%~113.6%之間.
表1 人體血清中CEA含量的測定結(jié)果Tab. 1 Detection results of CEA in human serum sample
基于L-Au NPs-H2O2體系強(qiáng)的ECL發(fā)光性能,以L-Au NPs為ECL發(fā)光劑構(gòu)建無標(biāo)記性ECL適配體傳感器,利用CEA對ECL的抑制作用,建立了一種靈敏、快速、簡便測量CEA的ECL新方法,并應(yīng)用于人體血清的測定.研究結(jié)果表明,該方法在臨床診斷中具有良好的應(yīng)用前景.