俞向梅 楊意州 劉建波 李長征 龔德貴 王志福
摘要:目的 觀察溫針灸對神經(jīng)痛大鼠脊髓白細胞介素-6(IL-6)、細胞信號轉(zhuǎn)導抑制因子3(SOCS3)的影響,探討其治療神經(jīng)痛的作用機制。方法 實驗大鼠隨機分為正常組、模型組、溫針組、IL-6組,每組6只。模型組建立坐骨神經(jīng)慢性限制性損傷神經(jīng)痛模型,不干預;溫針組造模成功第5日后,選取“脾俞”“腎俞”溫針灸治療,共10次;IL-6組造模成功第5日起,脊髓鞘內(nèi)注射重組IL-6,共3次。電子觸覺測量機械痛行為學,ELISA和RT-PCR檢測脊髓IL-6、SOCS3 mRNA及小膠質(zhì)細胞活化標記物Iba-1的表達。結(jié)果 與模型組比較,溫針組機械痛閾值明顯升高(P<0.01),Iba-1含量明顯降低(P<0.01),脊髓背角IL-6 mRNA表達明顯降低(P<0.01),SOCS3 mRNA表達明顯升高(P<0.01)。結(jié)論 溫針灸能減輕神經(jīng)痛大鼠痛敏反應,其機制可能與抑制脊髓小膠質(zhì)細胞活化、下調(diào)IL-6表達和上調(diào)SOCS3表達有關。
關鍵詞:神經(jīng)病理性疼痛;溫針灸;脊髓;白細胞介素-6;細胞信號轉(zhuǎn)導抑制因子3;神經(jīng)炎癥;大鼠
DOI:10.3969/j.issn.1005-5304.2018.03.014
中圖分類號:R245 文獻標識碼:A 文章編號:1005-5304(2018)03-0064-04
Abstract: Objective To observe effects of warming acupuncture therapy on expressions of IL-6 and SOCS3 in spinal cord in rats with neuropathic pain; To discuss its mechanism for treating neuropathic pain. Methods Experimental rats were randomly divided into: normal group, model group, warming acupuncture and IL-6 group, with 6 rats in each group. Sciatic nerve chronic constriction injury neuralgia model was established in the model group, without intervention. After modeling for 5 days in the warming acupuncture group, “Pishu” and “Shenshu” acupoints were chosen for warming acupuncture therapy for 10 times. After modeling for 5 days in the IL-6 group, IL-6 group was successfully intrathecally injected 3 times with recombinant IL-6. After finishing all experiments, the mechanical pain behavior was measured with electronic Frye fibers. The mRNA levels of IL-6 and SOCS3 and protein concentration of spinal Iba-1were detected with ELISA and RT-PCR analysis. Results Compared with model group, mechanical withdrawal thresholdsin the warm acupuncture group significantly increased, and the content of Iba-1 decreased significantly (P<0.01); The mRNA level of IL-6 decreased significantly (P<0.01), and the mRNA level of SOCS3 significantly increased (P<0.01). Conclusion Warming acupuncture therapy can reduce the pain response in rats with neuropathic pain through inhibiting spinal cord microglial activation, down-regulating the gene expression of lL-6 and up-regulating the gene expression of SOCS3.
Keywords: neuropathic pain; warming acupuncture therapy; spinal cord; IL-6; SOCS3; nerve inflammation; rats
神經(jīng)病理性疼痛(簡稱“神經(jīng)痛”),是由軀體感覺神經(jīng)系統(tǒng)的損傷或相關疾病而造成的疼痛。按國際上神經(jīng)痛發(fā)病率約8%推算,中國約有0.9億神經(jīng)痛患者。有研究顯示,溫針灸脾俞、腎俞有健脾益腎、活血化瘀的功效,對各種神經(jīng)痛具有明顯的鎮(zhèn)痛作用[1-3]。本課題組前期研究表明,神經(jīng)痛發(fā)生時,脊髓中樞出現(xiàn)明顯的神經(jīng)炎癥現(xiàn)象,且與脊髓白細胞介素(IL)-6、細胞信號轉(zhuǎn)導抑制因子3(SOCS3)表達存在密切聯(lián)系[4-5]。本實驗觀察溫針灸對神經(jīng)痛大鼠機械痛敏反應及IL-6、SOCS3表達的影響,探討其治療神經(jīng)痛的作用機制。
1 材料與方法
1.1 動物
SPF級雄性SD大鼠24只,5~6周齡,體質(zhì)量200~220 g,上海斯萊克實驗動物責任有限公司,動物許可證號SCXK(滬)2012-0002。飼養(yǎng)于福建中醫(yī)藥大學SPF級實驗動物中心,分籠適應性喂養(yǎng)1周,將大鼠稱重并編號。所有實驗均遵照國際動物保護和使用指南的規(guī)定實施。
1.2 主要試劑與儀器
4-0鉻制羊腸線,上海浦東金環(huán)醫(yī)療用品股份有限公司;華佗牌一次性針灸針(0.28 mm×15 mm)、清艾條,蘇州醫(yī)療用品廠有限公司;Recombinant Rat IL-6(貨號400-06),美國PeproTech(派普泰克)公司;IL-6、SOCS3、GAPDH引物,生工生物工程(上海)股份有限公司合成。IQ5多重實時熒光定量PCR儀器,美國Bio-Rad公司;38450-電子觸覺測量儀(電子Von Frey),意大利Ugo Basile公司。
1.3 分組及造模
采用隨機數(shù)字表法將大鼠分為正常組、模型組、溫針組和IL-6組,每組6只。模型組建立坐骨神經(jīng)慢性限制性損傷(CCI)神經(jīng)痛模型,不干預;溫針組造模成功第5日起,選取“脾俞”“腎俞”溫針灸治療,每日1次,共10次;IL-6組造模成功第5日起,脊髓鞘內(nèi)注射重組IL-6,共3次。參考文獻[4-5]方法制作CCI神經(jīng)痛模型。大鼠腹腔注射10%水合氯醛(4 mL/kg)麻醉,右側(cè)后肢皮膚切開,肌肉鈍性分離,暴露坐骨神經(jīng),在坐骨神經(jīng)中段用4-0鉻制羊腸線松扎四道,致CCI神經(jīng)痛大鼠模型,術(shù)后用青霉素粉末預防感染。模型建立后,術(shù)后第5、14日觀察實驗大鼠機械痛行為學變化。
1.4 溫針灸干預
針灸穴位參照大鼠穴位圖譜[6],取雙側(cè)“脾俞”(大鼠第12胸椎旁開7 mm)、雙側(cè)“腎俞”(大鼠第2腰椎旁開7 mm)溫針灸治療。安靜環(huán)境、室溫(20±2)℃,將大鼠軀干固定于木架上,頭部與四肢可自由活動,靜置20 min,將一次性針灸針刺入穴位,針刺后在針尾上搓捏少許艾絨點燃施灸,只待燃盡,除去灰燼,留針30 min后取針。正常組自由飲食活動,不進行任何干預。
1.5 鞘內(nèi)注射白細胞介素-6
大鼠取俯臥位,實驗者食指定位于大鼠脊柱L5-6間隙,右手持微量注射器從間隙垂直緩慢進針,以大鼠尾巴出現(xiàn)顫動或突然的側(cè)向甩動作為穿刺成功的標志,注入相應藥物。在第5、10、14日,鞘內(nèi)注射20 ng/μL重組IL-6溶液,10 μL/次。
1.6 觀察指標
1.6.1 機械痛行為測試
測試環(huán)境為10 cm×20 cm×20 cm有機玻璃籠,將大鼠放入籠內(nèi)靜置10 min,采用電子Von Frey法進行檢測,即利用不同強度的纖毛刺激大鼠足掌中心部位,引起大鼠縮爪反應。最小能引起縮爪反應的纖毛壓力即為大鼠的縮爪反應閾值(g),以此反應大致的機械痛敏情況。
1.6.2 脊髓小膠質(zhì)細胞標記物Iba-1、白細胞介素-6、細胞信號轉(zhuǎn)導抑制因子3檢測
第14日全部實驗結(jié)束后,迅速新鮮取材脊髓(L4-5節(jié)段)背角置于液氮中,-80 ℃冰箱保存待測。
ELISA檢測脊髓小膠質(zhì)細胞標記物Iba-1表達。①取脊髓背角組織勻漿離心,提取上清液;②96孔酶標板上加樣,每孔加入標準品或待測樣品100 μL,將反應板混勻后置37 ℃ 40 min;③用洗滌液將反應板洗滌4~6次,濾紙上印干;④每孔加入蒸餾水和第一抗體工作液各50 μL(空白除外)。將反應板混勻后置37 ℃ 20 min;⑤按步驟③再次洗板;⑥每孔加酶標抗體工作液100 μL。將反應板置37 ℃ 10 min,如前步驟再次洗板;⑦每孔加入底物工作液100 μL,置37 ℃暗處反應15 min;⑧每孔加入100 μL終止液混勻,30 min內(nèi)于酶標儀450 nm處測吸光度,畫出標準曲線,根據(jù)樣品OD值計算出相應Iba-1含量。
RT-PCR檢測脊髓SOCS3、IL-6 mRNA表達。組織總RNA提取:冰浴取出新鮮脊髓背角組織,每50~100 mg組織加1 mL Trizol試劑,冰浴超聲勻漿15~20 s;每1 mL Trizol試劑加0.2 mL氯仿,快速震蕩15 s,冰浴5 min,4 ℃、12 000×g離心15 min;加與水等體積預冷的異丙醇,緩慢混勻,冰浴15 min,4 ℃、12 000×g離心10 min,棄上清,吸干異丙醇;加75%乙醇,重懸沉淀,4 ℃、7500×g離心8 min,棄上清,消毒濾紙上吸干乙醇;重復以上步驟,傾去乙醇,空氣干燥;干燥后將沉淀溶于DEPC水,置70 ℃貯存,沉淀加乙醇于20 ℃可長期貯存;取4 μL總RNA溶液稀釋至1 mL,紫外分光光度計檢測OD260和OD280值,測定其濃度和純度。反轉(zhuǎn)錄合成cDNA第一鏈:PCR管中依次加入Total RNA、Oligo(dT)15 primer、DEPC H2O(Rnase-free),70 ℃變性5 min,冰浴5 min;隨后加入5×M-MLV Reaction buffer、10 mmol/L dNTPs、RNase inhibitor、M-MLV Reverse Transcriptase、DEPC H2O,37 ℃水浴60 min,95 ℃水浴5 min, 冰浴5 min。PCR擴增:PCR管依次加入2×Taq PCR Master Mix、Sense primer、Antisense primer、反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物、dd H2O,混勻,瞬時離心。94 ℃ 5 min,94 ℃ 45 s,57 ℃ 1 min,72 ℃ 1 min,72 ℃ 10 min;實時熒光定量PCR儀進行樣本分析。
1.7 統(tǒng)計學方法
采用SPSS20.0統(tǒng)計軟件進行分析。實驗數(shù)據(jù)以—x±s表示,符合正態(tài)分布用方差分析,不符合正態(tài)分布用秩和檢驗中獨立樣本比較。檢驗水準α=0.05。
2 結(jié)果
2.1 溫針灸對模型大鼠機械痛行為的影響
與正常組比較,模型組大鼠造模后第5、14日,機械痛閾值明顯降低(P<0.01);造模后第14日與模型組比較,溫針組大鼠機械痛閾值明顯升高(P<0.01),IL-6組大鼠機械痛閾值明顯降低(P<0.01)。結(jié)果見圖1。
2.2 溫針灸對模型大鼠脊髓小膠質(zhì)細胞標記物Iba-1的影響
術(shù)后第14日,與正常組比較,模型組大鼠脊髓Iba-1含量顯著升高(P<0.01);與模型組比較,溫針組大鼠脊髓Iba-1含量顯著降低(P<0.01),IL-6組大鼠脊髓Iba-1含量顯著升高(P<0.01)。結(jié)果見圖2。
2.3 溫針灸對模型大鼠脊髓白細胞介素-6、細胞信號轉(zhuǎn)導抑制因子3 mRNA表達的影響
術(shù)后第14日,與正常組比較,模型組大鼠脊髓IL-6、SOCS3 mRNA表達顯著升高(P<0.01);與模型組比較,溫針組大鼠脊髓IL-6 mRNA表達顯著降低,SOCS3 mRNA表達顯著升高(P<0.01),IL-6組大鼠脊髓IL-6 mRNA表達顯著升高(P<0.01),SOCS3 mRNA表達顯著降低(P<0.01)。結(jié)果見圖3。
3 討論
神經(jīng)痛可歸屬中醫(yī)學“痹證”范疇。灸法是一種溫熱刺激,有溫經(jīng)散寒、扶陽固脫、活血化瘀的功效,正如《靈樞·官能》“針所不為,灸之所宜”。腎俞為腎的背俞穴,具有疏經(jīng)益氣、補腎益精作用;脾俞為脾之背俞穴,具有健脾益氣通絡作用。大鼠脾俞、腎俞解剖深層鄰近腎上腺免疫器官,針灸腎上腺鄰近背俞穴(脾俞、腎俞),刺激相應節(jié)段交感神經(jīng)纖維,可影響神經(jīng)遞質(zhì)或激素釋放,調(diào)節(jié)機體免疫功能。
在神經(jīng)痛的發(fā)生及發(fā)展中,外周神經(jīng)損傷刺激達一定閾值時,脊髓膠質(zhì)細胞激活可釋放炎性因子(IL-6、IL-1β等),參與維持脊髓中樞敏化狀態(tài),并出現(xiàn)“神經(jīng)炎癥”現(xiàn)象[7-8]。SOCS3作為SOCS家族蛋白中的重要一員,在周圍神經(jīng)損傷及神經(jīng)炎癥中發(fā)揮重要的作用;坐骨神經(jīng)損傷SOCS3表達不斷升高,抑制周圍神經(jīng)巨噬細胞的聚集;IL-6作為多功能細胞因子,參與炎癥及神經(jīng)痛的發(fā)生發(fā)展過程[9-10]。SOCS3作為IL-6信號通路的首要抑制劑,可通過結(jié)合IL-6受體亞基gp130或JAKs蛋白,從而抑制炎癥反應[11-12]。有研究顯示,神經(jīng)痛發(fā)生時,CCI大鼠脊髓小膠質(zhì)細胞顯著激活,脊髓IL-6表達顯著上調(diào),應用小膠質(zhì)細胞抑制劑米諾環(huán)素可顯著抑制IL-6表達,減輕機械痛覺過敏[13]。此外,小膠質(zhì)細胞高表達SOCS3蛋白可抑制JAK/STAT3信號通路,降低IL-6表達,減輕神經(jīng)炎癥反應[14]。
前期研究表明,在CCI大鼠中,SOCS3存在于小膠質(zhì)細胞中,電針可抑制脊髓膠質(zhì)細胞活化,并進一步上調(diào)膠質(zhì)細胞中SOCS3表達水平,并反饋性抑制IL-6細胞因子釋放,發(fā)揮抗炎鎮(zhèn)痛作用[5]。本實驗結(jié)果也顯示,神經(jīng)痛發(fā)生時,脊髓小膠質(zhì)細胞顯著激活,脊髓IL-6表達顯著上調(diào),鞘內(nèi)注射IL-6可降低SOCS3 mRNA表達,進一步加劇痛敏反應;溫針灸效果類似電針,可顯著抑制脊髓小膠質(zhì)細胞的活化,上調(diào)脊髓SOCS3 mRNA表達,降低脊髓IL-6釋放,從而減輕機械痛敏反應。
綜上所述,溫針灸“脾俞”“腎俞”能減輕CCI大鼠機械痛敏化反應,可能與降低脊髓神經(jīng)炎癥、促進脊髓SOCS3表達有關,但其具體作用機制有待于今后深入研究。
參考文獻:
[1] 陳美仁,王萍,成鋼,等.溫針灸對坐骨神經(jīng)痛患者痛閾值的影響[J].中國針灸,2005,25(12):831-833.
[2] 張巍.“腎俞”、“大腸俞”三才刺法對大鼠坐骨神經(jīng)損傷修復的實驗研究[D].沈陽:遼寧中醫(yī)藥大學,2009.
[3] 蘇紀武,毛翔,孫遠征,等.溫針灸對糖尿病大鼠坐骨神經(jīng)AGEsmRNA、RAGEmRNA表達的影響[J].針灸臨床雜志,2010,26(2):51-54.
[4] WANG Z F, LI Q, LIU S B, et al. Aspirin-triggered LipoxinA4 attenuates mechanical allodynia in association with inhibiting spinal JAK2/STAT3 signaling in neuropathic pain in rats[J]. Neuroscience,2014,273:65-78.
[5] 王志福,俞向梅,龔德貴,等.電針“陽陵泉”、“環(huán)跳”對神經(jīng)病理性疼痛大鼠脊髓SOCS3的影響[J].中國疼痛醫(yī)學雜志,2015,21(5):335-340.
[6] 華興邦,周浩良.大鼠穴位圖譜的研制[J].實驗動物與動物實驗, 1991(1):1-5.
[7] VALLEJO R, TILLEY D M, VOGEL L, et a1. The role of glia and the immune system in the development and maintenance of neuropathic pain[J]. Pain Pract,2010,10:167-184.
[8] 葉永賢,林洪,沙漠,等.神經(jīng)病理性疼痛相關分子機制的研究進展[J].中國疼痛醫(yī)學雜志,2014,20(3):177-180.
[9] GIROLAMI E I, BOUHY D, HABER M, et al. Differential expression and potential role of SOCS1 and SOCS3 in Wallerian degeneration in injured peripheral nerve[J]. Exp Neurol,2010,223:173-182.
[10] DUBOV? P, BR?ZDA V, KLUS?KOV? I, et al. Bilateral elevation of interleukin-6 protein and mRNA in both lumbar and cervical dorsal root ganglia following unilateral chronic compression injury of the sciatic nerve[J]. J Neuroinflammation,2013,10:55.
[11] BABON J J, VARGHESE L N, NICOLA N A. Inhibition of IL-6 family cytokines by SOCS3[J]. Semin Immunol,2014,26:13-19.
[12] CAROW B, ROTTENBERG M E. SOCS3, a major regulator of infection and inflammation[J]. Front Immunol,2014,19:58.
[13] LATR?MOLI?RE A, MAUBORGNE A, MASSON J, et al. Differential implication of proinflammatory cytokine interleukin-6 in the development of cephalic versus extracephalic neuropathic pain in rats.[J]. Journal of Neuroscience:the Official Journal of the Society for Neuroscience,2008,28(34):8489-8501.
[14] DOMINGUEZ E, MAUBORGNE A, MALLET J, et al. SOCS3-mediated blockade of JAK/STAT3 signaling pathway reveals its major contribution to spinal cord neuroinflammation and mechanical allodynia after peripheral nerve injury[J]. J Neurosci,2010,30:5754-5766.
(收稿日期:2017-09-22)
(修回日期:2017-10-25;編輯:華強)