謝惠春 羅巧玉 陳 志 喬 楓
(青藏高原藥用動植物資源青海省重點實驗室,青海師范大學,西寧,810008)
在缺氧以及組織缺血的生理條件下,低氧誘導因子-1(Hypoxia-inducible factor,HIF-1)對機體恢復穩(wěn)態(tài)有著重要的意義。HIF-1α在細胞代謝調(diào)控中傾向于調(diào)控糖酵解途徑中相關酶的基因轉錄與表達,如乳酸脫氫酶,己糖激酶等[1-2],而 HIF-2α卻在細胞脂肪酸代謝途徑中發(fā)揮重要的作用[3],HIF-1α亞基的積累對保護組織對抗低氧的幾個靶向基因起調(diào)控的作用[4]。同時,在氧氣供應不足及血流供應不足的情況下,血管內(nèi)皮生長因子(VEGF)被認為是一種由細胞產(chǎn)生的信號蛋白,在恢復組織供氧,以及改善血管功能和血管生成中起到重要的作用[5]。
高原鼠兔(Ochotona curzoniae),一種生活在青藏高原高寒草甸海拔約3000 m的小型植食性哺乳動物。能夠完全適應高寒缺氧的環(huán)境[6]。由于高原鼠兔具有低氧耐受性,使其成為一種用于研究急性或慢性缺氧下機體生理和生態(tài)適應性的獨特模式動物[7-8],同時被廣泛地用于研究機體適應低氧環(huán)境潛在的細胞和分子機制[9]。
骨骼肌纖維按其代謝過程的不同可分為氧化型和糖酵解型,例如,氧化型肌纖維主要使用氧化磷酸化生成ATP[10]。另外,氧化型肌纖維中含有大量的肌紅蛋白,作為氧結合蛋白可以存儲氧氣并加速其遞送至肌肉細胞內(nèi)的線粒體中。與此相反,糖酵解型肌纖維具有較低水平的肌紅蛋白,其獲得能量的主要方式依賴于糖酵解[11]。然而,低氧環(huán)境中,兩種肌纖維中HIF-1α和VEGF的表達還鮮有研究。
因此,我們的研究內(nèi)容是在低氧暴露下,比較高原鼠兔和SD大鼠(Rattus norregicus)2種肌纖維中HIF-1α和VEGF的表達量及其對低氧應激的響應機制。此外,我們在后肢肌肉中注射HIF-1α的抑制劑2-甲氧基雌二醇(2-MeOE2),然后檢測骨骼肌中VEGF的水平,從而確定骨骼肌中HIF-1α對VEGF的影響。我們假設高原鼠兔與SD大鼠在低氧暴露條件下骨骼肌中HIF-1α和VEGF的表達量減少。同時我們推測在骨骼肌中HIF-1α可以調(diào)節(jié)VEGF的表達量。
2014年5月,在青海省海北自治州祁連縣野牛溝鄉(xiāng)達玉村(E99°16',N38°42',海拔 3960 m)捕獲 51只健康成年雄性高原鼠兔(150~200 g),帶回西寧(海拔2300 m)置于動物飼養(yǎng)箱內(nèi),飼以矮生嵩草(Carex alatauensis)、高山嵩草(Carex parvula)、早熟禾(Poa spp.)、二裂委陵菜(Potentilla bifurca)等生境青草和胡蘿卜(Daucus carota),適應3周后用于實驗,78只SD大鼠購于青海省地方病研究所。
Innovative Instruments氧傳感器(美國),70 cm×70 cm×50 cm通風艙體(自制),BIO-RAD X-mark酶標儀(美國),MB100-4P微孔板孵育器(美國),2-甲氧基雌二醇(Selleck Chem.Co.),HIF-1α ELISA 試劑盒(Abcam Co.),VEGF ELISA 試劑盒(R&D System),2%BSA溶液(50 mmol/L碳酸鹽緩沖液pH 9.5配制)。
1.3.1 低氧模擬
由氧傳感器控制,艙體通風通入21%(O2/N2%)作為海平面對照混合氣體,10.8%(海拔5000 m)氧氣通風作為低氧脅迫環(huán)境模擬[11]。對照組以鋸末作籠墊,棉花作巢材,室溫(21±1)℃,光周期14L∶10D條件下正常飼養(yǎng),后肢肌肉腓腸肌注射2-MeOE2模擬低氧暴露。
1.3.2 骨骼肌中HIF-1α和VEGF表達水平的檢測
實驗動物高原鼠兔(n=45)、SD大鼠(n=60)10.8%氧氣通風低氧脅迫6 h后斷頭處死,對照組高原鼠兔(n=6)、SD大鼠(n=6)室內(nèi)通風飼養(yǎng),同一時段斷頭處死,取后肢腓腸肌。需要注意的是,腓腸肌深紅色部分為氧化型肌纖維,淺白色部分主要是由糖酵解肌纖維構成。雙位點免疫酶測定法(ELISA)檢測骨骼肌中HIF-1α和VEGF的表達水平。用親和純化的多克隆兔抗HIF-1α抗體/小鼠抗VEGF抗體微量滴定聚苯乙烯96孔板。平行孔用純化的兔/小鼠IgG非特異性信號評估。室溫下溫浴過夜,50 mmol/L Tris-HCl清洗板體后,2%BSA(pH 9.5)溶液孵育2 h。徹底清洗后,將稀釋的樣品和HIF-1α/VEGF的標準溶液分布在各板孔,室溫過夜。洗滌后每孔加入半乳糖苷酶用以抗HIF-1α和VEGF。底物溶液37℃孵育2 h后酶標儀測定讀數(shù)。
所有數(shù)據(jù)使用雙向重復測量,方差分析,用SE表示。實驗數(shù)據(jù)采用SPSS 17.0軟件進行統(tǒng)計分析,P<0.05被認為是有統(tǒng)計學意義。
結果顯示,高原鼠兔(n=6)與SD大鼠(n=6)氧化和糖酵解型肌纖維中HIF-1α和VEGF的基礎表達水平無顯著性差異。在SD大鼠的氧化和糖酵解型肌纖維中HIF-1α表達量分別為(1.76±0.20)ng/mL和(2.51±0.22)ng/mL,而在高原鼠兔的氧化和糖酵解型肌纖維中HIF-1α表達量分別為(1.68±0.16)ng/mL(P>0.05)和(1.97±0.31)ng/mL(P>0.05)。此外,SD大鼠在氧化和糖酵解型肌纖維中VEGF表達量分別為(25.65±2.33)pg/mL和(27.62±3.12)pg/mL,而高原鼠兔分別為(23.45±2.81)pg/mL(P>0.05)和(24.89±3.20)pg/mL(P>0.05)。
圖1 高原鼠兔和SD大鼠不同條件下氧化和糖酵解型肌纖維中HIF-1α和VEGF表達Fig.1 The expreesion of HIF-1α and VEGF in oxidative and glycolytic muscles of SD rats and pikas in different conditions
如圖1所示,低氧脅迫下,無論是高原鼠兔(n=15)還是SD大鼠(n=20)氧化和糖酵解型肌纖維中HIF-1α和VEGF表達水平都顯著高于常氧對照組。與常氧組比較,高原鼠兔HIF-1α和 VEGF表達的增幅量要顯著低于SD大鼠的增幅量(P<0.05)。此外,在后肢腓腸肌注射HIF-1α抑制劑2-MeOE2后,低氧暴露條件下,SD大鼠和高原鼠兔骨骼肌中VEGF的表達量與不注射2-MeOE2組相比顯著降低(P<0.05)。需要注意的是,我們還測定了在注射2-MeOE2后HIF-1α的表達水平,以證實其在這個實驗中的有效性。SD大鼠(n=12)氧化型肌纖維中HIF-1α的表達量在響應低氧條件下為(3.26±0.36)ng/mL(P<0.05),在糖酵解型肌纖維中為(4.52±0.56)ng/mL(P<0.05),而注射2-MeOE2后SD大鼠(n=12)氧化型肌纖維中HIF-1α的表達量為(1.85±0.22)ng/mL,在糖酵解型肌纖維中為(2.62±0.32)ng/ml。
在低氧脅迫條件下,SD大鼠(n=20)和高原鼠兔(n=15)骨骼肌氧化型肌纖維中HIF-1α和VEGF的增高(r=0.76,P<0.01)和糖酵解型肌纖維中HIF-1α和VEGF的增高(r=0.72,P<0.01)存在線性關系(圖2)。
圖2 低氧應激下高原鼠兔和SD大鼠氧化和糖酵解型肌纖維中HIF-1α和VEGF的線性關系Fig.2 The linear relationship between the levels of HIF-1α and VEGF in oxidative and glycolytic muscles of SD rats and pikas in response to hypoxic stress
HIF-1α被認為是細胞進行代謝途徑中一個關鍵的氧傳感器[1-2]。在這項研究中,我們檢測了后肢腓腸肌氧化和糖酵解型肌纖維中HIF-1α蛋白表達。如以往報道[12],盡管在常氧條件下,高原鼠兔和SD大鼠氧化和糖酵解型肌纖維中HIF-1α的表達組間沒有顯著性差異,但是我們發(fā)現(xiàn)HIF-1α在糖酵解型肌纖維中的表達要顯著高于氧化型肌纖維。此外,在低氧暴露條件下,HIF-1α的應激反應也表現(xiàn)為糖酵解型肌纖維高于氧化型肌纖維。重要的是,我們的研究表明,無論是高原鼠兔還是SD大鼠,氧化型肌纖維和糖酵解型肌纖維在響應低氧應激時均表現(xiàn)出HIF-1α的蛋白表達水平的升高。
根據(jù)能量代謝的途徑不同,可將骨骼肌纖維可分為氧化型和糖酵解型[10]。在常氧條件下,骨骼肌纖維的類型由肌紅蛋白含量決定,同時與HIF-1α的表達量具有相關性。氧化型肌纖維中含有較多的肌紅蛋白,但HIF-1α含量較低[13]。同樣的,糖酵解肌纖維中肌紅蛋白水平低,但卻含有高的HIF-1α。以往研究表明[14],一個給氧調(diào)節(jié)系統(tǒng)主要是以肌紅蛋白為基礎的氧化肌纖維和以HIF-1α復合體為基礎的糖酵解肌纖維。然而,在我們的研究中發(fā)現(xiàn),在高原鼠兔無論是在氧化型肌纖維還是在糖酵解型肌纖維中HIF-1α的表達量相比SD大鼠都表現(xiàn)出弱的反應性,這可能提示,在長期低氧脅迫環(huán)境下,肌紅蛋白與HIF-1α之間存在的平衡關系可能被改變。
此外,我們的結果表明,在低氧脅迫條件下,高原鼠兔和SD大鼠氧化型和糖酵解型肌纖維中血管內(nèi)皮生長因子VEGF的表達水平都有提升。HIF-1α反應和VEGF反應之間存在密切的相關性。低氧誘導產(chǎn)生的VEGF水平的升高,在當HIF-1α被抑制劑抑制以后,后肢肌肉中VEGF水平降低。這表明,在低氧脅迫條件下,HIF-1α對調(diào)節(jié)骨骼肌VEGF的表達有重要的意義,其中一個重要的調(diào)節(jié)作用就是調(diào)節(jié)血管功能和提高血流量。
應當注意的是,低氧脅迫下,我們運用線性分析后得出骨骼肌中HIF-1α和VEGF表達水平具有密切的相關性。后期研究將針對VEGF抑制劑對HIF-1α表達水平的影響,從而最終確定兩者之間的聯(lián)系。
總之,該研究結果表明,(1)在低氧脅迫條件下,對比SD大鼠,高原鼠兔骨骼肌中HIF-1α和VEGF的功能反應表現(xiàn)出不敏感型;(2)在低氧環(huán)境中,HIF-1α對骨骼肌中VEGF起調(diào)節(jié)作用。我們對高原鼠兔在低氧脅迫條件下的生理生態(tài)適應及其低氧適應機制進行研究,意在揭示人體低氧組織適應/預適應的實質及機體抗/耐缺氧的生物學策略,同時為高原醫(yī)學提供基礎理論數(shù)據(jù)。
[1] Ceradini D J,Kulkarni A R,Callaghan M J,et al.Progenitor cell trafficking is regulated by hypoxic gradients through HIF-1 induction of SDF-1 [J].Nature Medicine,2004,10(8):858-864.
[2] Manalo D J,Rowan A,Lavoie T,et al.Transcriptional regulation of vascular endothelial cell responses to hypoxia by HIF-1 [J].Blood,2005,105(2):659-669.
[3] Ratcliffe P J.HIF-1 and HIF-2:working alone or together in hypoxia[J].The Journal of Clinical Investigation,2007,117(4):862 -865.
[4] Wubs M,Saito K,Kohler S,et al.Gauging a quantum heat bath with dissipative Landau-Zener transitions[J].Physical Review Letters,2006,97(20):200404.
[5] Kim Y W,Byzova T V.Oxidative stress in angiogenesis and vascular disease[J].Blood,2014,123(5):625-631.
[6] 杜繼曾,李慶芬.模擬高原低氧對高原鼠兔和大鼠器官與血液若干指標的影響[J].獸類學報,1982,2(1):35-42.
[7] Grace C R,Perrin M H,DiGruccio M R,et al.NMR structure and peptide hormone binding site of the first extracellular domain of a type B1 G protein-coupled receptor[J].Proceedings of the National A-cademy of Sciences of the United States of America,2004,101(35):12836-12841.
[8] Zbytek B,Slominski A T.Corticotropin-releasing hormone induces keratinocyte differentiation in the adult human epidermis[J].Journal of Cellular Physiology,2005,203(1):118-126.
[9] 謝惠春,羅巧玉,陳志,等.高原鼠兔繁殖季節(jié)血液指標、血氣及性激素變化[J].野生動物學報,2017,38(2):205-214.
[10] Lieber R L.Skeletal muscle structure,function,and plasticity[M].Maryland,USA:Lippincott Williams & Wilkins,2009:116-200.
[11] Chen Xuequn,Wang Shijun,Du Jizeng,et al.Diversities in hepatic HIF-1,IGF-I/IGFBP-1,LDH/ICD,and their mRNA expressions induced by CoCl2in Qinghai-Tibetan plateau mammals and sea level mice[J].American Journal of Physiology-Regulatory Integrative and Comparative Physiology,2007,292(1):R516 -R526.
[12] Pisani D F,Dechesne C A.Skeletal muscle HIF-1alpha expression is dependent on muscle fiber type[J].The Journal of General Physiology,2005,126(2):173-178.
[13] Lin Jiandie,Wu Hai,Tarr P T,et al.Transcriptional co-activator PGC-1α drives the formation of slow-twitch muscle fibres[J].Nature,2002,418(6899):797-801.
[14] Grange R W,Meeson A,Chin E,et al.Functional and molecular adaptations in skeletal muscle of myoglobin-mutant mice[J].A-merican Journal of Physiology-Cell Physiology,2001,281(5):C1487-C1494.