王 丹,盧迎宏,翟關群,王夢超,員小利,井海云
(鄭州大學附屬鄭州中心醫(yī)院:1. 心血管內(nèi)科五病區(qū);2. 心血管內(nèi)科一病區(qū),河南鄭州 450052)
血管內(nèi)皮細胞是一種單層多角形或扁平細胞,分布在血管腔內(nèi)表面,多種血管活性物質(zhì)長期與血管內(nèi)皮細胞接觸,可影響其功能[1]。既往研究顯示,多種疾病與血管內(nèi)皮細胞損傷和功能紊亂具有十分緊密的關系,如高血壓、冠心病、動脈粥樣硬化、糖尿病、腦梗死等,其中動脈粥樣硬化作為一種慢性炎癥反應過程,血管內(nèi)皮細胞是首先受損傷的細胞之一[2-3]。脂多糖(LPS)是一種強烈的炎癥啟動因子,可導致全身炎癥反應的發(fā)生,直接或間接激活并損傷內(nèi)皮細胞,導致內(nèi)皮細胞凋亡、通透性增加、細胞骨架重排等,最終改變血管內(nèi)皮細胞形態(tài)和功能,引發(fā)內(nèi)皮細胞功能障礙,發(fā)生動脈粥樣硬化[4]。研究顯示,Rho A/Rho激酶(ROCK)信號通路參與了LPS誘導的動脈粥樣硬化過程[5]。作為唯一一種在臨床上應用的Rho激酶抑制劑,鹽酸法舒地爾(HF)具有抗動脈粥樣硬化的作用,但其是否具有改善血管內(nèi)皮功能障礙的作用,相關報道還十分有限。鑒于此,本研究通過構建LPS誘導的血管內(nèi)皮功能障礙大鼠模型,分析HF對血管內(nèi)皮功能障礙的影響及可能的機制。
1.1實驗動物及分組清潔級雄性SD大鼠80只,體質(zhì)量180~220 g,購于上海實驗動物中心。采用隨機數(shù)字表法將SD大鼠分為:正常對照組、模型組和實驗A組、實驗B組,每組20只。
1.2主要試劑HF注射液(山西普德藥業(yè)股份有限公司);LPS(美國Sigma公司);全蛋白提取試劑盒(碧云天生物技術研究所);Western一抗稀釋液(碧云天生物技術研究所);Western 二抗稀釋液(碧云天生物技術研究所);Cx43一抗、Cav-1一抗、eNOS一抗、RhoA一抗和ROCK1一抗(美國Epitomics公司);β-actin一抗(Santa Cruz公司);辣根過氧化物酶標記的二抗(江蘇碧云天公司);BCA蛋白定量試劑盒(北京鼎國昌盛生物技術有限責任公司);RT-PCR試劑盒(大連寶生物公司);其他試劑均為分析純國產(chǎn)試劑。
1.3主要儀器超凈工作臺(AIRTECH,蘇州凈化設備有限公司);精密電子天平(Mettler Toled公司);紫外分光光度計(Nano Drop公司);酶標儀(Thermo公司);RT-PCR儀(Biometra 公司);雙垂直蛋白電泳儀(北京市六一儀器廠)。
1.4動物模型的構建及干預參考文獻[6]方法,實驗A組、實驗B組和模型組尾靜脈注射LPS(1 mg/kg)建立大鼠內(nèi)皮功能障礙模型。0.5 h后,實驗A組和實驗B組分別腹腔注射10 mg/kg和30 mg/kg HF,模型組和對照組分別注射等量9 g/L生理鹽水。連續(xù)4周,每天按上述方法注射1次。
1.5取材麻醉(100 g/L水合氯醛)后處死各組大鼠,大鼠取仰臥位固定于超凈工作臺內(nèi),剪下大鼠的胸主動脈,去除血管表面的結締組織和脂肪組織,用雙蒸水充分洗凈血管內(nèi)血液,一部分儲存于-80 ℃冰箱中,一部分多聚甲醛固定過夜,石蠟包埋。
1.6TUNEL法檢測細胞凋亡取石蠟包埋主動脈組織,冰凍切片采用TUNEL進行細胞凋亡檢測,嚴格按TUNEL檢測試劑盒說明書操作。顯微鏡下紅色熒光為TUNEL陽性細胞,隨機選取6個不重復高倍視野(×200),計算陽性細胞凋亡指數(shù)(AI)。計算公式為:AI=(凋亡細胞數(shù)/總細胞數(shù))×100%。
1.7RT-PCR檢測Cx43、Cav-1、eNOS、RhoA和ROCK1的mRNA表達取-80 ℃主動脈組織,Trizol法分別提取各組總RNA??俁NA采用純化柱純化。逆轉(zhuǎn)錄得cDNA,引物設計:β-actin上游引物,5′-AGGCATCCTGACCCTGAAGTA-3′,下游引物,5′-GAGGCATACAGGGACAACACAG-3′;Cx43上游引物,5′-GCTCCACTCTCGCCTATGTC-3′,下游引物,5′-TAGTTCGCCCAGTTTTGCTC-3′;Cav-1上游引物,5′-CGCCATTCTCTTTCCTGC-3′,下游引物,5′-AGACGGTGTGGACGTAGA-3′;eNOS上游引物,5′-CTGCGGGTACGAAGGTATCG-3′,下游引物,5′-AGCATCCAATCCATCCAGCA-3′;RhoA上游引物,5′-GATGGAGCTTGTGGTAAGA-3′,下游引物,5′-AAACTATCAGGGCTGTCG-3′;ROCK1上游引物,5′-GGTGATGGCTATTATGGACG-3′,下游引物,5′-GTGTCTCGGAGCGTTTCC-3′。逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,應用RT-PCR檢測Cx43、Cav-1、eNOS、RhoA和ROCK1 mRNA轉(zhuǎn)錄水平。以β-actin作為內(nèi)參照,同一標本的β-actin產(chǎn)物表達水平校正各自目的基因的表達水平,相對表達水平=目的基因表達水平/β-actin表達水平。
1.8Westernblot檢測Cx43、Cav-1、eNOS、RhoA和ROCK1蛋白表達取-80 ℃主動脈組織,用預冷的組織裂解液提取總蛋白,Bradford法測定樣品的蛋白含量,120 g/L的凝膠分離蛋白質(zhì),利用轉(zhuǎn)膜儀(濕轉(zhuǎn))在100 V 1.5 h的條件下將凝膠上的蛋白轉(zhuǎn)移到PVDF膜上,脫脂奶粉封閉2 h,洗膜后與稀釋的Cx43、Cav-1、eNOS、RhoA和ROCK1單克隆抗體(1∶1 000)過夜結合,洗膜后加入稀釋的二抗,室溫孵育60 min,BeyoECL Plus顯色,凝膠成像和化學發(fā)光分析系統(tǒng)收集顯色條帶,運用 Quantity One 軟件進行蛋白條帶數(shù)據(jù)分析。
2.1各組大鼠的細胞凋亡情況模型組、實驗A組和實驗B組內(nèi)皮細胞凋亡指數(shù)顯著高于對照組(P<0.05);實驗A組和實驗B組內(nèi)皮細胞凋亡指數(shù)顯著低于模型組(P<0.05);實驗B組內(nèi)皮細胞凋亡指數(shù)顯著低于實驗A組(P<0.05,圖1)。
2.2各組大鼠Cx43、Cav-1、eNOS、RhoA、ROCK1mRNA的表達水平模型組Cx43、Cav-1、RhoA和ROCK1 mRNA表達水平顯著高于對照組(P<0.05),eNOS mRNA表達水平顯著低于對照組(P<0.05);實驗A組和實驗B組Cx43、Cav-1、RhoA、ROCK1和eNOS mRNA表達水平顯著低于對照組(P<0.05);實驗A組和實驗B組Cx43、Cav-1、RhoA和ROCK1 mRNA表達水平顯著低于模型組(P<0.05),eNOS mRNA表達水平顯著高于模型組(P<0.05);實驗B組Cx43、Cav-1、RhoA和ROCK1 mRNA表達水平顯著低于實驗A組(P<0.05),eNOS mRNA表達水平顯著高于實驗A組(P<0.05,圖2)。
圖1各組大鼠內(nèi)皮細胞凋亡指數(shù)
Fig.1 Apoptosis index of endothelial cells in each group
與對照組比較,*P<0.05;與模型組比較,△P<0.05;與實驗A組比較,#P<0.05。
圖2各組大鼠Cx43、Cav-1、RhoA、ROCK1和eNOSmRNA表達水平
Fig.2 mRNA expressions of Cx43, Cav-1, RhoA, ROCK1 and eNOS in each group
與對照組比較,*P<0.05;與模型組比較,△P<0.05;與實驗A組比較,#P<0.05。
2.3各組大鼠Cx43、Cav-1、RhoA、ROCK1和eNOS蛋白的表達水平模型組Cx43、Cav-1、RhoA和ROCK1蛋白表達水平顯著高于對照組(P<0.05),模型組、實驗A組和實驗B組eNOS蛋白表達水平顯著低于對照組(P<0.05);實驗A組和實驗B組Cx43、Cav-1、RhoA和ROCK1蛋白表達水平顯著低于模型組(P<0.05),eNOS蛋白表達水平顯著高于模型組(P<0.05);實驗B組Cx43、Cav-1、RhoA和ROCK1蛋白表達水平顯著低于實驗A組(P<0.05),eNOS 蛋白表達水平顯著高于實驗A組(P<0.05,圖3、圖4)。
血管內(nèi)皮損傷和功能障礙在心血管疾病的發(fā)生發(fā)展過程中具有重要作用,因此,改善血管內(nèi)皮功能障礙對于降低心血管疾病發(fā)病率和死亡率具有重要意義[7]。LPS是革蘭氏陰性桿菌外膜上的一種糖蛋白,是一種炎癥啟動因子,可導致全身炎癥反應[8]。研究表明,血管內(nèi)皮細胞是LPS重要的效應細胞,LPS作用后可直接導致血管內(nèi)皮細胞膜通透性增加,進而形成血管內(nèi)皮損傷和功能障礙[9]。因此,LPS是建立血管內(nèi)皮損傷和功能障礙動物模型的常用藥物。
圖3Westernblott結果圖
Fig.3 Western blot results
1:模型組;2:實驗B組;3:對照組;4:實驗A組。
圖4各組大鼠Cx43、Cav-1、eNOS、RhoA和ROCK1蛋白表達水平
Fig.4 The protein expression levels of Cx43, Cav-1, eNOS, RhoA and ROCK1 in each group
與對照組比較,*P<0.05;與模型組比較,△P<0.05;與實驗A組比較,#P<0.05。
本研究采用LPS誘導建立血管內(nèi)皮損傷和功能障礙大鼠模型,采用HF進行干預。數(shù)據(jù)顯示,模型組、實驗A組和實驗B組內(nèi)皮細胞凋亡指數(shù)顯著高于對照組(P<0.05);實驗A組和實驗B組內(nèi)皮細胞凋亡指數(shù)顯著低于模型組(P<0.05);實驗B組內(nèi)皮細胞凋亡指數(shù)顯著低于實驗A組(P<0.05),表明LPS成功誘導建立了血管內(nèi)皮損傷和功能障礙大鼠模型,HF干預后有助于減少內(nèi)皮細胞凋亡,且呈劑量依賴性。
RhoA/Rho激酶信號轉(zhuǎn)導通路被證實在動脈粥樣硬化過程中起重要作用,RhoA/Rho激酶信號轉(zhuǎn)導通過引發(fā)血管內(nèi)皮功能障礙和氧化應激發(fā)生,促進細胞凋亡[10]。ROCK是小G蛋白RhoA的主要效應因子,其表達水平上調(diào)可促進氧化應激、炎癥反應和細胞纖維化,其表達水平降低可介導肌動蛋白重組、血管平滑肌細胞收縮和細胞粘附等多種生理功能[11]。ROCK參與內(nèi)皮細胞功能障礙的調(diào)節(jié)過程,在動脈粥樣硬化和細胞、器官損傷中起重要作用[12]。HF是一種Rho激酶抑制劑和細胞內(nèi)鈣離子拮抗劑,可顯著抑制RhoA/Rho激酶信號轉(zhuǎn)導通路,降低ROCK1表達水平,減輕其對血管內(nèi)皮功能的損傷程度,降低血管內(nèi)皮細胞凋亡程度[13]。實驗表明,HF作用于LPS誘導的血管內(nèi)皮功能障礙大鼠模型,Cx43、Cav-1、RhoA和ROCK1 mRNA和蛋白水平顯著下降。Cx43是縫隙連接蛋白家族中的重要成員,主要由血管內(nèi)皮細胞和平滑肌細胞表達,其在動脈粥樣硬化發(fā)展過程中表達明顯上調(diào)[14]。Cav-1是一種小窩蛋白,廣泛表達于血管內(nèi)皮細胞中,在動脈粥樣硬化早期可能參與低密度脂蛋白的轉(zhuǎn)運和炎癥反應過程[15]。因此,HF可能通過RhoA/Rho激酶信號轉(zhuǎn)導通路,抑制RhoA和ROCK1的表達,從而抑制Cx43、Cav-1的表達,發(fā)揮抗凋亡效應。
一氧化氮也參與了血管衰老過程,其主要由一氧化氮合成酶合成,其中eNOS是一氧化氮合成酶三種類型中的一種。本組數(shù)據(jù)顯示,模型組、實驗A組和實驗B組eNOS 蛋白表達水平顯著低于對照組(P<0.05);實驗A組和實驗B組eNOS蛋白表達水平顯著高于模型組(P<0.05);實驗B組eNOS蛋白表達水平顯著高于實驗A組(P<0.05),表明HF可提高eNOS表達水平,發(fā)揮對血管內(nèi)皮的保護作用。研究證實,Cav-1與eNOS蛋白存在一定的相互作用,Cav-1對eNOS有負性調(diào)節(jié)作用,其表達水平上升,可降低eNOS表達水平,導致血管內(nèi)皮功能障礙[16]。因此,HF對血管內(nèi)皮功能障礙的改善作用途徑之間可能存在一定的交叉作用。
綜上所述,HF可能通過RhoA/Rho激酶信號轉(zhuǎn)導通路,抑制RhoA和ROCK1的表達,從而抑制Cx43、Cav-1的表達;可能通過提高eNOS表達水平,發(fā)揮改善血管內(nèi)皮功能障礙的功能。
參考文獻:
[1] TORIMOTO K, OKADA Y, MORI H, et al. Relationship between fluctuations in glucose levels measured by continuous glucose monitoring and vascular endothelial dysfunction in type 2 diabetes mellitus[J]. Cardiovasc Diabetol, 2013, 12(1):1.
[2] XIE K, WANG W, CHEN H, et al. Hydrogen-rich medium attenuated lipopolysaccharide-induced monocyte-endothelial cell adhesion and vascular endothelial permeability via Rho-associated coiled-coil protein kinase[J]. Shock, 2015, 44(1):58-64.
[3] JOSHI AD, DIMITROPOULOU C, THANGJAM G, et al. Heat shock protein 90 inhibitors prevent LPS-induced endothelial barrier dysfunction by disrupting RhoA signaling[J]. Am J Resp Cell Mol, 2014, 50(1):170-179.
[4] 李南南,張軍平,仲愛芹,等. RhoA/ROCK 信號通路在動脈粥樣硬化發(fā)生中的作用[J]. 基礎醫(yī)學與臨床, 2014, 34(10):1422-1425.
[5] 李偉,周樂. 脂多糖誘導血管內(nèi)皮細胞骨架重構中RhoA/ROCK通路的作用及中藥干預[J]. 世界中西醫(yī)結合雜志, 2014, 9(12):1359-1363.
[6] 馬文東,袁媛,楊奕,等. TGF-β1介導的RhoA/ROCK通路在大鼠肺肌成纖維細胞分化中的調(diào)節(jié)作用[J]. 中國病理生理雜志, 2013, 29(10):1758-1763.
[8] LI C, ZHANG WJ, FREI B. Quercetin inhibits LPS-induced adhesion molecule expression and oxidant production in human aortic endothelial cells by p38-mediated Nrf2 activation and antioxidant enzyme induction[J]. Redox Bio, 2016, 16(9):104-113.
[9] BARABUTIS N, DIMITROPOULOU C, BIRMPAS C, et al. P53 protects against LPS-induced lung endothelial barrier dysfunction[J]. Am J Physiol-Lung C, 2015, 308(8):L776-L787.
[10] LI Y, LIU H, XU QS, et al. Chitosan oligosaccharides block LPS-induced O-GlcNAcylation of NF-κB and endothelial inflammatory response[J]. Carbohyd Polym, 2014, 99(6): 568-578.
[11] 張成果. 鹽酸法舒地爾對維持性血液透析患者血管內(nèi)皮功能的保護作用[J]. 實用醫(yī)學雜志, 2014, 30(21):3499-3502.
[12] 韓佳寅,易艷,梁愛華,等. Rho/ROCK信號通路研究進展[J]. 藥學學報, 2016, 51(6):853-859.
[13] 閆瑩,楊朝,汪濤. 活性氧與RhoA/ROCK信號通路對血管平滑肌細胞鈣濃度及鈣敏感性的影響[J]. 國際呼吸雜志, 2015, 35(12):954-957.
[14] 張浩,劉小賢,劉慶華,等. RhoA-Rock信號通路在轉(zhuǎn)化生長因子β1誘導大鼠腹膜間皮細胞轉(zhuǎn)分化中的作用[J]. 中華腎臟病雜志, 2009, 25(2):128-133.
[15] GEVAERT T, VANSTREELS E, DAELEMANS D, et al. Identification of different phenotypes of interstitial cells in the upper and deep lamina propria of the human bladder dome[J]. J Urology, 2014, 192(5):1555-1563.
[16] 王勇,靳利艷,王留義. 不同劑量培哚普利對原發(fā)性高血壓病患者血管內(nèi)皮功能及血壓變異性的影響研究[J]. 中國全科醫(yī)學, 2016, 19(26):3160-3164.