劉艷玲, 向鳳寧
(1.萊蕪職業(yè)技術(shù)學(xué)院信息工程系,山東 萊蕪 271100;2.山東大學(xué)生命科學(xué)院 植物細(xì)胞工程與種質(zhì)創(chuàng)新教育部重點實驗室,山東 濟(jì)南 250100)
【研究意義】中藥材的絕大多數(shù)有效成分都來源于次生代謝產(chǎn)物,隨著對植物次生代謝網(wǎng)絡(luò)認(rèn)識和研究的不斷深入,應(yīng)用細(xì)胞融合方式向目標(biāo)植物中導(dǎo)入可表達(dá)的基因序列或者完整的生物合成途徑已成為可能,并逐漸發(fā)展為具有廣闊應(yīng)用前景的熱點研究領(lǐng)域[1-4]。高寒藏藥材—麻花艽(GentianastromineaMaxim.)系龍膽科、龍膽屬植物,分布于青海、西藏、甘肅等海拔2500~4700 m 的高寒地區(qū),全草及根入藥,其主要有效成分為齊墩果酸、龍膽苦甙等,主治風(fēng)濕性關(guān)節(jié)痛、黃膽性肝炎、膽結(jié)石等病[5-7]。狹葉柴胡(BupleurumscorzonerifoliumWilld.)為傘形科、柴胡屬植物,主要用于治療感冒發(fā)熱、胸肋腹痛等癥,是著名的抗病毒感冒中藥材[8]?!厩叭搜芯窟M(jìn)展】利用細(xì)胞融合手段可以將代謝途徑中的關(guān)鍵酶基因進(jìn)行轉(zhuǎn)移,從而改變目標(biāo)產(chǎn)物的含量。Yun等在顛茄(Atropabelladonna)中引入編碼莨菪堿-6β-羥化酶的基因,結(jié)果使顛茄中含量很低的高價值托品生物堿東莨菪堿大量積累,并且?guī)缀跛械妮馆袎A都轉(zhuǎn)化成了東莨菪堿[9];Shelagh等通過番茄CHI(chalcone isomerase)基因的超量表達(dá)使其果皮的類黃酮含量增加了78倍,其加工產(chǎn)品番茄醬中的類黃酮含量增加了21倍[10]。Shim等在人參中過量表達(dá)SQS基因,測得轉(zhuǎn)基因植物中人參皂甙的含量為對照的2.5倍[11]?!颈狙芯壳腥朦c】本實驗室已經(jīng)通過細(xì)胞融合的方式獲得了麻花艽和狹葉柴胡的雜種細(xì)胞系[12],并已經(jīng)在親本中克隆了齊墩果酸合成的關(guān)鍵酶β-amyrin合成酶的基因序列[13],分析了該基因在雜種細(xì)胞系中的表達(dá)方式,確定雜種細(xì)胞系中基因的變異與齊墩果酸含量的關(guān)系?!緮M解決的關(guān)鍵問題】以期為深入研究中草藥次生代謝奠定良好的基礎(chǔ)。
麻花艽、狹葉柴胡、雜種細(xì)胞系ZA、ZB、ZC。
1.2.1 基因擴(kuò)增 ①引物。GsAS1正向引物P1:5′-GAATTCATGTGGAGGCTAAAAATCGG-3′;GsAS1反向引物P2:5′-CGTCTCCTACGGCACTTGCTTGCG-3′;GsAS2正向引物P3:5′-CTCGAGATGTGGAGGCTGAAGATCG-3′;GsAS2反向引物P4:5′-CTCGAGCGTCTCTCAAATCTTCAAGATGGCAA-3′。② 擴(kuò)增體系。采用20 μl PCR體系rTaq為大連Takara生產(chǎn)。反應(yīng)體系如下:10×PCR Buffer 2.0 μl(1×);MgCl2(25 mM)1.2 μl(1.5 mM);dNTP(10 mM)0.2 μl(200 μM);引物 各40 pmol;rTaq酶(5 U/μl)0.1 μl(0.5 U);模板 50~200 ng;加水至20 μl;③擴(kuò)增程序。按照以下循環(huán)進(jìn)行擴(kuò)增:94 ℃ 5 min;94 ℃ 1 min,57 ℃ 2.5 min,72 ℃ 1 min,35個循環(huán);72 ℃ 10 min;10 ℃保存。
1.2.2 β-amyrin合成酶基因的半定量RT-PCR 正向引物:5′-CCACCG(A)TTTTTG(A)CTCTGTA-3′;反向引物:5′-ACTTGGCTTTCGATA(T)CTTGG-3′;Tm:49 ℃。
1.2.3 測序 博尚生物公司。
1.2.4 序列比對 應(yīng)用DNAMAN軟件進(jìn)行。
1.2.5 HPLC 儀器為日本島津公司生產(chǎn)的LC-10AD型高效液相色譜儀,齊墩果酸標(biāo)準(zhǔn)品從中國藥品生物制品檢定所購買。分別取4.0,8.0,12.0,16.0,20.0 μl 齊墩果酸標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)樣,以峰面積值為橫坐標(biāo),進(jìn)樣量為縱坐標(biāo)作圖,得回歸方程為:y=0.00287888x-16.1335,r=0.9994724,表明儀器精密度良好。
2.1.1 雜種細(xì)胞系中β-amyrin合成酶基因的克隆 在先前的研究中,已經(jīng)通過RACE方法在麻花艽中獲得了 2 個同源的β-amyrin合成酶基因,將其稱作GsAS1 和GsAS2;在狹葉柴胡中獲得了 1 個 β-amyrin合成酶基因,稱作BsAS。本研究以P1、P2和P3、P4 兩對引物分別在雜種細(xì)胞系ZA、ZB、ZC中進(jìn)行擴(kuò)增,分別獲得了GsAS1 的同源序列GsAS1za、GsAS1zb、GsAS1zc和GsAS2的同源序列GsAS2za、GsAS2zb、GsAS2zc(圖1a,b),通過序列分析表明,這 6 個基因均編碼β-amyrin合成酶基因。在狹葉柴胡BsAS的多個區(qū)段中設(shè)計引物,對雜種細(xì)胞系進(jìn)行擴(kuò)增,均未獲得相應(yīng)的片段,由此可以看出,雜種ZA、ZB、ZC僅表達(dá)了來源于供體麻花艽的GsAS1和GsAS2。
2.1.2 雜種細(xì)胞系中GsAS1和GsAS2的同源性比較 將雜種細(xì)胞系ZA、ZB、ZC中的6個基因序列GsAS1a、GsAS2a、GsAS1b、GsAS2b、GsAS1c、GsAS2zc進(jìn)行分析,其核苷酸同源性為90.24 %,氨基酸序列同源性為90.38 %。其中,GsAS1與GsAS1a、GsAS1b、GsAS1c序列完全相同;GsAS2與GsAS2b序列完全相同,與GsAS2a、GsAS2c不相同,其核苷酸序列同源性分別為99.8 %和99.87 %,氨基酸序列同源性分別為99.87 %和99.80 %。
圖1 體細(xì)胞雜種cDNA中GsAS1(A)和GsAS2(B)基因的擴(kuò)增Fig.1 Amplification of GsAS1(A)和GsAS2(B) from cDNA in hybrids
IMS: isomultiflorenol合成酶; BAS: β-amyrin 合成酶 (單功能型); MTS:多功能三萜合成酶; LUS:羽扇豆醇合成酶; OSC: 氧化角鯊烯合成酶; CAS: 環(huán)阿屯醇合成酶; MAS: 混合的β-amyrin 合成酶圖2 親本和雜種中β-amyrin合成酶基因的系統(tǒng)樹分析Fig.2 Phylogenetic analysis of β-amyrin synthase in parents and hybrids
為了分析體細(xì)胞雜種中β-amyrin合成酶基因與親本及其它物種中同族基因的親緣關(guān)系,從GenBank中選取了擬南芥、大豆、人參、甘草、白樺、紫菀、北柴胡等植物的β-amyrin合成酶基因、環(huán)阿屯醇合成酶基因、羽扇豆醇合成酶基因等氧化角鯊烯家族基因進(jìn)行系統(tǒng)樹分析。結(jié)果表明:GsAS1及其3個雜種細(xì)胞系最接近擬南芥的LUP2(屬于羽扇豆醇合成酶),在GsAS1所處的分支上,除剛才提到的LUP2外,其余均為βAS(β-amyrin合成酶)(圖2),說明GsAS1及其雜種應(yīng)聚類在β-amyrin合成酶中。GsAS2及其3個雜種細(xì)胞系均與人參的OSCPNY2(屬于β-amyrin合成酶)關(guān)系最近,而體細(xì)胞雜種的另一個親本狹葉柴胡的BSAS存在于系統(tǒng)樹的另一β-amyrin合成酶分支上,與綠玉樹最接近,與麻花艽親緣關(guān)系較遠(yuǎn)。
對親本及其雜種細(xì)胞系的β-amyrin合成酶基因序列進(jìn)行分析,如圖3所示,雜種ZA和ZC的GsAS2 與麻花艽的GsAS2序列存在1~2個堿基的突變(同源性分別為99.3 %和98.6 %),麻花艽GsAS2 第4位氨基酸(CTG)在雜種ZA和ZC中突變?yōu)镃TA,但CTG和CTA均編碼亮氨酸;384位氨基酸CCA在雜種ZC中突變成CCG,但二者均編碼脯氨酸。這說明在雜種細(xì)胞系中,GsAS2a和GsAS2c雖發(fā)生了不同程度的堿基突變,卻編碼同一種氨基酸,即發(fā)生了無義突變,因此,不影響雜種ZA和ZC中GsAS2的功能。
2.4.1 雜種細(xì)胞系及親本β-amyrin合成酶基因表達(dá)分析 利用β-amyrin合成酶基因?qū)﹄s種ZA、ZB、ZC及親本進(jìn)行RT-PCR分析,如圖4所示,雜種ZB和ZC均高于雙親,ZA低于雙親,且ZA低于ZB和ZC。
圖3 GsAS2基因在麻花艽及雜種中的核苷酸序列比較Fig.3 Comparison of nucleotides of GsAS2 in G. straminea and hybrids
圖4 親本及雜種β-amyrin合成酶基因的RT-PCR分析Fig.4 Expression of β-amyrin synthase gene in parents and hybrids by semi-quantitative RT-PCR
圖5 體細(xì)胞雜種及親本齊墩果酸的HPLC分析Fig.5 HPLC analysis of the oleanolic acid in parents and hybrids
2.4.2 雜種細(xì)胞系及親本齊墩果酸含量分析 齊墩果酸含量的HPLC分析表明,體細(xì)胞雜種ZA的齊墩果酸含量均低于雙親,ZB和ZC均高于雙親,其中,ZB的齊墩果酸含量最高,是麻花艽的 2.4 倍,其次是ZC,為麻花艽的1.8 倍(圖5)。綜合圖4~5可以看出,齊墩果酸含量和β-amyrin 合成酶基因的表達(dá)水平呈正相關(guān),并且說明ZA和ZC中的堿基突變并沒有影響其下游產(chǎn)物齊墩果酸的含量,也就是說:β-amyrin合成酶中個別基因的突變對該基其功能未造成影響。
前人研究發(fā)現(xiàn),體細(xì)胞雜交技術(shù)可以實現(xiàn)外源染色體/DNA片段及基因向受體基因組的轉(zhuǎn)移[14-16]。本研究通過分析β-amyrin合成酶基因在麻花艽與狹葉柴胡的3個雜種細(xì)胞系中的存在方式,發(fā)現(xiàn)雜種與麻花艽基因的序列相似性很高,僅在ZA中發(fā)生了1個堿基突變,在ZB中未發(fā)生突變,在ZC中發(fā)生了2個堿基突變。進(jìn)一步分析發(fā)現(xiàn),這些基因的變異與3個體細(xì)胞雜種的齊墩果酸含量沒有對應(yīng)關(guān)系,表明,β-amyrin合成酶基因發(fā)生1~2個堿基的無義突變對該基因的功能沒有影響。
另外,在本實驗中,體細(xì)胞雜種中的β-amrin合成酶基因均來源于麻花艽,而未得到來源于柴胡的該基因。其原因可能與柴胡的β-amrin合成酶基因在其愈傷組織培養(yǎng)及體細(xì)胞雜交過程中發(fā)生了丟失,其丟失位點由麻花艽β-amyrin合成酶基因所替代有關(guān),這還需要進(jìn)行深入探討。
參考文獻(xiàn):
[1]Bertea C M, Freije J R, van der Woude H, et al. Identification of intermediates and enzymes involved in the early steps of artemisinin biosynthesis inArtemisiaannua[J]. Planta Med, 2005, 71: 40-47.
[2]Donaldson P A, Bevis E E, Pandeya R S, et al. Random chloroplast segregation and frequent mtDNA rearrangements in fertile somatic hybrids betweenNicotianatabacumL. andN.glutinosaL.[J].Theor. Appl. Genet, 1994, 87: 900-908.
[3]Choi D W, Jung J, Ha Y I. Analsis of transcripts in methylmonate-treated ginseng hairy roots to identity genes involved in the biosynthesis ginsenosides and other secondary metabolites[J]. Plant Cell Rep, 2005, 23(8): 557-566.
[4]Haralampidis K, Trojanowska M, Osbourn A E. Biosynthesis of triterpenoid saponins in plants[J].Adv. Biochem. Eng. Biotechnol, 2002, 75: 31-49.
[5]張西玲,晉 玲,劉麗莎. 近10年秦艽、麻花艽研究概況[J]. 中國中醫(yī)藥信息,2000,10(增): 62-63.
[6]劉艷紅. 秦艽中的環(huán)烯醚苷類成分[J]. 云南植物研究,1995,15(1):85-91.
[7]近藤嘉和. 秦艽的成分研究[J]. 生藥學(xué)雜志,1996,46(3):342-343.
[8]劉永春,叢培臣. 柴胡的化學(xué)成分及藥理作用研究概況[J]. 黑龍江醫(yī)藥,2006,19(3):216-218.
[9]Yun D J, Hashimoto T, Yamada Y. Metabolic engineering of medicinal plants: transgenicAtropabelladonnawith an improved alkaloid composition[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 1992, 89(24): 11799-11803.
[10]Muir S R, Collins G J, Robinson S, et al. Overexpression of petunia chalcone isomerase in tomato results in fruit containing increased levels of flavonols[J]. Nature Hiotechnology, 2001, 19(5): 470-474.
[11]Shim J S, Lee O R, Kim Y J, et al. Overexpression ofPgSQS1 increases ginsenoside production and negatively affects ginseng growth rate inPanaxginseng[J]. Journal of Ginseng Research, 2010, 34(2): 98-103.
[12]蔡云飛. 植物遠(yuǎn)緣體細(xì)胞雜種的核/質(zhì)基因組及其代謝轉(zhuǎn)錄組研究[D]. 山東大學(xué):博士論文,2006.
[13]Liu Y L, Cai Y F, Zhao Z J, et al. Cloning and functional analysis of a β-amyrin synthase associated with oleanolic acid biosynthesis inGentianastramineaMaxim[J]. Biol. Pharm. Bull, 2009, 32(5): 818-824.
[14]Xiang F N, Xia G M, Zhou A F, et al. Asymmetric somatic hybridization between wheat (Triticumaestivum) andBromusinermis[J]. Acta Botanica Sinica, 1999, 41(5): 458-462.
[15]Xia G M, Xiang F N, Zhou A F, et al. Asymmetric somatic hybridization between wheat (TriticumaestivumL.) andAgropyronelongatum(Host)Nevishi[J]. Theor Appli Genet, 2003, 107: 299-305.
[16]向鳳寧. 小麥遠(yuǎn)緣體細(xì)胞雜交及體細(xì)胞雜種的遺傳研究[D]. 山東大學(xué):博士論文,2003.