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(吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,吉林長(zhǎng)春 130118)
串葉松香草(SilphiumperfolialumL.),菊科多年生宿根草本植物,又名法國(guó)香檳草,別名松香草菊花草,英文名為cup plant。串葉松香草喜溫暖濕潤(rùn)氣候,是多年生越冬性植物,株高1.5~2.5 m,6月下旬至8月中旬進(jìn)入花期,花為頭狀花序,邊緣由舌形花數(shù)十朵組成,花盤直徑2~2.5 cm,花期較長(zhǎng),含有豐富黃酮類化合物。黃酮屬酚性化合物,是一類植物次生代謝產(chǎn)物,具有抗氧化、防止血管增生、抗炎、抗病毒、降血糖、降血脂[1-3]等多種生物活性,至今已分離鑒定出4000多種[4],如番石榴葉黃酮可以作為植物油脂很好的天然抗氧化劑[5]。黃酮類化合物具有很好的藥理及保健作用[6-10],在化妝品領(lǐng)域也具有非常好的應(yīng)用前景[11]。充分開(kāi)發(fā)利用串葉松香草中總黃酮,不但能夠研發(fā)相關(guān)功能性食品,還可以開(kāi)發(fā)生物黃酮新資源,延伸串葉松香草產(chǎn)業(yè)鏈,大大提高其產(chǎn)業(yè)經(jīng)濟(jì)效益。
目前我國(guó)對(duì)串葉松香草的研究還處于起步階段,主要集中于引種適應(yīng)性及栽培技術(shù)研究,遺傳育種[12],葉蛋白的開(kāi)發(fā)和利用[13]、營(yíng)養(yǎng)成分鑒定[14],天然產(chǎn)物提取及其活性研究[15]及作為優(yōu)質(zhì)飼草飼喂家畜方法等方面。其中對(duì)利用響應(yīng)曲面法(response surface methodology,RSM)是否能有效地提高串葉松香草葉中的總黃酮提取率及其抗氧化能力的研究還沒(méi)有詳細(xì)的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)作為理論支持。
植物黃酮的提取方法包括醇提法、回流提取法、超聲提取、微波提取和超臨界流體萃取法等[16]。本文使用乙醇浸提法提取串葉松香草中的總黃酮,操作簡(jiǎn)便成本低廉,再利用響應(yīng)面法對(duì)串葉松香草中總黃酮提取工藝進(jìn)行優(yōu)化,以期獲得更高的提取率,為串葉松香草畜牧、食品、醫(yī)藥、旅游觀光等領(lǐng)域的應(yīng)用研究提供一定參考。
1.1材料與儀器
串葉松香草樣品吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)牧草種植園區(qū);蘆丁、硝酸鋁、亞硝酸鈉、抗壞血酸、過(guò)硫酸鉀等均為化學(xué)分析純。
LFP-1000A型高速多功能粉碎機(jī)上海楚定分析儀器有限公司;752型紫外光分光光度計(jì)上?,F(xiàn)科分光儀器有限公司;101-3AB型電熱鼓風(fēng)干燥箱天津泰斯特儀器有限公司;AB204-L型分析天平上海詠繹儀器儀表有限公司;DK-8D型電熱恒溫三孔水槽上海龍躍儀器設(shè)備有限公司。
1.2實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1串葉松香草樣品的制備采集開(kāi)花期串葉松香草,留茬10 cm,將余上部分用蒸餾水洗凈置于55 ℃烘箱烘干,完全干燥后粉碎成粉狀,用40目篩網(wǎng)過(guò)濾備用。
1.2.2串葉松香草總黃酮的提取
1.2.2.1串葉松香草總黃酮的提取稱取串葉松香草干粉0.5 g置于50 mL離心管中,加入一定濃度乙醇溶液,按照一定液料比混勻,放入水浴鍋中一定溫度的恒溫加熱一定時(shí)間提取串葉松香草總黃酮。
1.2.2.2單因素實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)提取條件為:固定提取溫度35 ℃,液料比30∶1 mL/g,提取時(shí)間90 min,考察不同濃度的乙醇溶液(30%、40%、50%、60%、70%、80%)對(duì)串葉松香草總黃酮提取量的影響;固定提取溫度35 ℃,乙醇濃度60%,提取時(shí)間90 min,考察不同液料比(15∶1、20∶1、25∶1、30∶1、35∶1和40∶1 mL/g)對(duì)串葉松香草總黃酮提取量的影響;固定液料比30∶1 mL/g,提取溫度35 ℃,乙醇濃度60%,考察不同提取時(shí)間(90、120、150、180、210、240 min)對(duì)串葉松香草總黃酮提取量的影響;固定液料比30∶1 mL/g、乙醇濃度60%,提取時(shí)間90 min,考察不同提取溫度(25、30、35、40、45、50 ℃)對(duì)總黃酮提取量的影響;固定液料比30∶1 mL/g,提取溫度35 ℃,提取時(shí)間90 min,分別考察不同乙醇濃度(30%、40%、50%、60%、70%、80%)對(duì)串葉松香草總黃酮提取量的影響。
1.2.2.3響應(yīng)面設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果和Box-Behnken設(shè)計(jì)原理來(lái)選取液料比、提取時(shí)間、提取溫度、乙醇濃度4個(gè)因素為自變量,串葉松香草總黃酮提取量為響應(yīng)值進(jìn)行4因素3水平響應(yīng)面設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)。因素水平表見(jiàn)表1。
表1 響應(yīng)曲面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)因素水平表Table 1 Factors and levels in the response surface design
1.2.3總黃酮提取量測(cè)定參照尚紅梅[17]方法進(jìn)行,略作修改。標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制:精密稱取蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品0.025 g,用75%乙醇溶解并定容至50 mL,制備質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL的標(biāo)準(zhǔn)溶液。精確量取上述標(biāo)準(zhǔn)液0.0、0.4、0.8、1.2、1.6、2.0 mL于10 mL刻度試管中,加無(wú)水乙醇至5 mL,搖勻,加入質(zhì)量濃度為50 mg/mL的NaNO2溶液0.3 mL,搖勻放置6 min,再加入質(zhì)量濃度為100 mg/mL的Al(NO3)3溶液0.3 mL,搖勻放置6 min,最后加1 mol/L的NaOH溶液4 mL,用無(wú)水乙醇補(bǔ)至刻度,搖勻放置10 min后,以無(wú)水乙醇為空白,在510 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度,建立標(biāo)準(zhǔn)曲線,得線性回歸方程為:y=1.0776x-0.0086(R2=0.9949),式中,x為蘆丁溶液質(zhì)量濃度(mg/mL),y為A510 nm。
串葉松香草總黃酮提取量的測(cè)定:吸取提取液1 mL,按標(biāo)準(zhǔn)曲線步驟反應(yīng)后,測(cè)定吸光度,結(jié)果以串葉松香草中含有相當(dāng)于蘆丁的毫克數(shù)表示,單位為mg/g。
式中:y為標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出的質(zhì)量濃度(mg/mL);v為提取液的總體積mL;m為串葉松香草粉末質(zhì)量g。
1.2.4抗氧化活性實(shí)驗(yàn)
1.2.4.1DPPH自由基清除活性的測(cè)定1 mL DPPH溶液(0.10 mmol/L無(wú)水乙醇溶液,現(xiàn)用現(xiàn)配),加入3 mL系列濃度的總黃酮溶液,混勻。室溫下在暗處反應(yīng)30 min。用無(wú)水乙醇做空白對(duì)照,在517 nm下測(cè)定吸光度。抗壞血酸作陽(yáng)性對(duì)照[18]。
式中:A0:用蒸餾水代替總黃酮提取液樣品按照上述方法測(cè)定吸光度;A1:按照上述方法測(cè)定總黃酮提取液樣品吸光度;A2:用無(wú)水乙醇代替DPPH溶液按照上述方法測(cè)定吸光度。
1.2.4.2ABTS+自由基清除能力測(cè)定ABTS溶液的配制:將5 mL 7 mmol/L ABTS溶液和1 mL 5 mmol/L過(guò)硫酸鉀混合,在室溫,避光條件下反應(yīng)12 h,得到ABTS儲(chǔ)備液。使用時(shí)用蒸餾水稀釋成工作液,使其在室溫下,734 nm波長(zhǎng)處的吸光度為0.70±0.02。3 mL ABTS工作液與0.75 mL同濃度的串葉松香草溶液,室溫反應(yīng)15 min。用蒸餾水作空白對(duì)照,在734 nm下測(cè)定吸光度??箟难嶙麝?yáng)性對(duì)照[19-20]。
式中:A0:用蒸餾水代替總黃酮提取液樣品按照上述方法測(cè)定吸光度;A1:按照上述方法測(cè)定總黃酮提取液樣品吸光度;A2:用蒸餾水代替ABTS工作液按照上述方法測(cè)定吸光度。
1.2.4.3還原力采用普魯士蘭法測(cè)定還原力[21-22]。1.5 mL系列濃度的多糖溶液加入1.5 mL磷酸鹽緩沖液(0.2 mol/L,pH6.6)和1.5 mL鐵氯化鉀溶液(10 g/L),混合物在50 ℃條件下水浴20 min。冷卻后加入1.5 mL三氯乙酸溶液(100 g/L),混合物于3000 r/min離心10 min,取該混合物的上清液1.5 mL,加入1.5 mL的去離子水和0.3 mL氯化鐵(1 g/L)溶液,反應(yīng)10 min后,在700 nm波長(zhǎng)處測(cè)吸光度,以蒸餾水為空白對(duì)照??箟难釣殛?yáng)性對(duì)照。
1.3統(tǒng)計(jì)分析
實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(Mean±SD)表示。采用Microsoft Office Excel 2010、SPSS 19.0、Design-Expert V8.0.6數(shù)據(jù)分析工具進(jìn)行處理,并用Duncan多重比較法檢驗(yàn)各處理之間的差異顯著性,p<0.05表示差異顯著。
2.1單因素實(shí)驗(yàn)
2.1.1液料比對(duì)串葉松香草總黃酮提取量的影響液料比對(duì)串葉松香草總黃酮提取量有顯著影響(見(jiàn)圖1)。隨著液料比例的增加,總黃酮提取量先緩慢增大后呈減小趨勢(shì),在液料比小于30∶1 mL/g時(shí),增加溶劑用量可增大溶劑對(duì)總黃酮化合物的絕對(duì)溶解能力,當(dāng)液料比為30·1 mL/g時(shí),總黃酮提取量最多為36.30 mg/g,顯著高于其它液料比的提取量(p<0.05)。當(dāng)液料比大于30·1 mL/g時(shí),隨著液料比增加提取的總黃酮提取量下降,可能是由于溶劑溶解的碳水化合物、葉綠素等物增多,這些物質(zhì)有的可與類黃酮結(jié)合生成沉淀或吸附黃酮化合物,而減少串葉松香草總黃酮浸出率[23]。因此,將液料比確定在25∶1~35∶1 (mL/g)之間進(jìn)行后續(xù)響應(yīng)面優(yōu)化實(shí)驗(yàn)。
2.3 由此畫產(chǎn)生出了對(duì)景寫生這一藝術(shù)理念的解讀式悟讀,我覺(jué)得可以這樣來(lái)理解了,畫山水畫可以在寫生基礎(chǔ)上,憑自己主觀的意圖、構(gòu)圖需要,使得景物變化成為適合自我需要的元素加以合理利用,這就是“景觀合成法”。這種藝術(shù)手法可以說(shuō)是貫穿于石濤此后的漫長(zhǎng)的藝術(shù)生涯之中,在其三十年之后所作的《黃山圖卷》中也十分熟練的應(yīng)用這一手法,尤如凌空采珠將黃山諸峰置入自己的畫面中任意擺布,但不失掉黃山實(shí)景的印象。景觀合成法是手段,傳山川之神乃為目的。繪畫藝術(shù)不僅可以反映大自然美的一面,也更能表現(xiàn)出它的純粹之美,在自然中尋找繪畫語(yǔ)言,在繪畫中尋找自然之美。用藝術(shù)的語(yǔ)言來(lái)更好地詮釋這自然的靈魂之美。
圖1 液料比對(duì)提取串葉松香草總黃酮提取量的影響Fig.1 Effect of material-liquid ratio on the extraction yield of total flavonoids from cup plant注:不同小寫字母表示差異顯著(p<0.05);圖2~圖4同。
2.1.2提取溫度對(duì)串葉松香草總黃酮提取量的影響根據(jù)圖2可知,溫度對(duì)串葉松香草總黃酮的提取效果影響較大,提取總黃酮提取量隨提取溫度的升高而升高,在提取溫度40 ℃時(shí)獲得總黃酮提取量最高,與其他各溫度差異顯著(p<0.05),提取的總黃酮提取量達(dá)到最高點(diǎn)為38.64 mg/g。隨后當(dāng)溫度繼續(xù)升高時(shí),總黃酮提取量呈下降趨勢(shì),這可能是由于溫度過(guò)高,串葉松香草中總黃酮的熱不穩(wěn)定性成分或揮發(fā)性成分被破壞,或揮發(fā)損失,使得提取量有所下降[24]。將提取溫度的范圍確定在35~45 ℃,進(jìn)行后續(xù)響應(yīng)面優(yōu)化實(shí)驗(yàn)。
圖2 提取溫度對(duì)提取串葉松香草總黃酮提取量的影響 Fig.2 Effect of extraction temperature on the extraction yield of total flavonoids from cup plant
2.1.3提取時(shí)間對(duì)串葉松香草總黃酮提取量的影響根據(jù)圖3可知,隨著時(shí)間的增加串葉松香草總黃酮含量持續(xù)上升,在浸提時(shí)間150、180 min時(shí)提取的總黃酮含量明顯高于其他時(shí)間段,120 min時(shí)串葉松香草總黃酮提取量與其不呈現(xiàn)明顯差異(p>0.05),說(shuō)明150 min和180 min時(shí)串葉松香草中的總黃酮在此時(shí)段能最多溶于乙醇溶劑中。繼續(xù)增加時(shí)間總黃酮的溶出不在增加反而呈迅速降低的趨勢(shì),固選擇篩選120~180 min的提取時(shí)間范圍進(jìn)行后續(xù)響應(yīng)面優(yōu)化實(shí)驗(yàn)。
圖3 提取時(shí)間對(duì)提取串葉松香草總黃酮提取量的影響Fig.3 Effect of extraction time on the extraction yield of total flavonoids from cup plant
圖4 乙醇濃度對(duì)提取串葉松香草總黃酮提取量的影響Fig.4 Effect of ethanol concentration the extraction yield of total flavonoids from cup plant
2.1.4乙醇濃度對(duì)串葉松香草總黃酮提取量的影響由圖4可知,串葉松香草總黃酮提取量從乙醇濃度30%到50%時(shí)顯著上升,隨后隨著浸提液乙醇濃度的升高對(duì)總黃酮提取量呈下降趨勢(shì),原因可能與總黃酮極性大小有關(guān)[25]。當(dāng)乙醇濃度50%時(shí)提取的總黃酮提取量最高,為33.64 mg/g,因此乙醇濃度的最佳條件是50%,我們將乙醇濃度40%~60%納入響應(yīng)面優(yōu)化實(shí)驗(yàn)范圍。
表2 響應(yīng)面分析方案及實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 2 Response surface design matrix with experimental andpredicted values of flavonoid content of cup plant
表3 響應(yīng)面模型方差分析統(tǒng)計(jì)表Table 3 ANOVA for response surface quadratic model
注:**:差異極顯著,p<0.01;*:差異顯著,p<0.05。
2.2響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)結(jié)果與優(yōu)化分析
2.2.1響應(yīng)模型的建立根據(jù)表2的結(jié)果,運(yùn)用Design-Expert V8.0.6軟件對(duì)表2中的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行多元擬合回歸,模型系數(shù)顯著性結(jié)果和方差分析結(jié)果見(jiàn)表2。
總黃酮提取量對(duì)液料比(A)、提取時(shí)間(B)、提取溫度(C)、乙醇濃度(D)的回歸模型方程為:總黃酮提取量(mg/g)=38.54+0.68A-0.39B-0.19C-0.38D-1.64AB-1AC+0.91AD+3.41BC+1.71BD-0.66CD-2.78A2-2.85B2-2.51C2-0.71D2
圖5 兩因素交互作用對(duì)串葉松香草總黃酮提取量影響的響應(yīng)面圖Fig.5 Response surface of two factors interaction effects on the extraction of total flavonoids from cup plant
從表3可看出,一次項(xiàng)A,交互項(xiàng)AB、AC、AD、BC、BD,二次項(xiàng)A2、B2、C2、D2表現(xiàn)為極顯著;一次項(xiàng)B、C、D,交互項(xiàng)CD為顯著。比較各因素的F值,可得出各因素的實(shí)驗(yàn)結(jié)果的影響大小順序A>B>D>C,即提液料比>提取時(shí)間>乙醇濃度>提取溫度。
2.2.2響應(yīng)面分析通過(guò)觀察響應(yīng)面的變化情況和等高線的稀疏程度可直觀地反映液料比(A)、提取時(shí)間(B)、提取溫度(C)、乙醇濃度(D)之間的交互作用對(duì)串葉松香草總黃酮提取量的影響,當(dāng)?shù)雀呔€呈圓形時(shí)表示兩因素交互作用不顯著,而呈橢圓形或馬鞍形時(shí)則表示兩因素交互作用顯著[25-26]。
A、B、C、D構(gòu)成三維空間曲面圖的響應(yīng)面形象的表達(dá)出兩個(gè)因素間的交互作用,突出的最高圓心點(diǎn)說(shuō)明在所選條件范圍內(nèi)存在極值。結(jié)果如圖5(a ~ f)所示,其中圖(a)、圖(b)、圖(c)、圖(d)和圖(e)曲面較陡峭,表明液料比(A)和提取時(shí)間(B)、液料比(A)和提取溫度(C)、液料比(A)和乙醇濃度(D)、提取時(shí)間(B)和提取溫度(C)、提取時(shí)間(B)和乙醇濃度(D)之間的相互作用極顯著,與表3分析結(jié)果一致。圖(f)曲面較平緩,表明提取溫度(C)和乙醇濃度(D)之間的相互作用較顯著,與表3分析結(jié)果一致。根據(jù)圖4(b)看出,當(dāng)提取時(shí)間(B)和乙醇濃度(D)兩因素為零水平時(shí),液料比(A)和提取溫度(C)對(duì)串葉松香草總黃酮提取量有較大影響。串葉松香草總黃酮提取量隨液料比(A)和提取溫度(C)的增加呈先上升再下降的趨勢(shì),且液料比(A)上升幅度明顯大于提取溫度(C),說(shuō)明液料比(A)對(duì)串葉松香草總黃酮提取量的影響較大,即液料比(A)和提取溫度(C)呈顯著相關(guān)性,與方差分析結(jié)果相符。根據(jù)圖4(e)可看出,當(dāng)液料比(A)和提取溫度(C)兩因素為零水平時(shí),串葉松香草總黃酮提取量隨著提取時(shí)間(B)和乙醇濃度(D)的陡峭上升再較平緩下降,且提取時(shí)間(B)上升的傾斜度顯著大于乙醇濃度(D)的上升傾斜度,因此提取時(shí)間(B)對(duì)串葉松香草總黃酮提取量比乙醇濃度(D)的影響程度更大,即符合我們的分析結(jié)果。
2.2.3最佳條件的確定和回歸模型的驗(yàn)證通過(guò)軟件分析得到提取串葉松香草總黃酮最佳工藝條件為液料比31.19∶1 (mL/g)、提取時(shí)間129.29 min、提取溫度37.88 ℃、乙醇濃度41.5%,在此條件下得到的理論提取物中總黃酮提取量為38.947 mg/g。實(shí)際實(shí)驗(yàn)操作中稍作調(diào)整確定的最佳工藝條件為液料比31∶1 mL/g、提取時(shí)間129 min、提取溫度38 ℃乙醇濃度42%。在此條件下進(jìn)行3次驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)后,得到串葉松香草提取物總黃酮提取量平均值為(38.93±0.012) mg/g,與理論值相差0.04%,而且重復(fù)性也很好,說(shuō)明了此響應(yīng)面法得到的回歸模型可靠。
2.3抗氧化分析
2.3.1DPPH自由基清除作用由圖6所示,隨著串葉松香草總黃酮質(zhì)量濃度和抗壞血酸的質(zhì)量濃度增加,對(duì)DPPH自由基的清除率均呈上升趨勢(shì),但串葉松香草中的總黃酮對(duì)DPPH自由基清除能力低于抗壞血酸,繼續(xù)提高濃度,清除率上升緩慢。當(dāng)最大質(zhì)量濃度為1 mg/mL時(shí),串葉松香草總黃酮對(duì)DPPH自由基的清除率達(dá)73.06%。
圖6 不同總黃酮質(zhì)量濃度對(duì)DPPH自由基的清除作用Fig.6 Scavenging activity of total flavonoids from cup plant at various concentrations against DPPH free radicals
2.3.2ABTS+自由基清除作用由圖7可以看出,隨著串葉松香草總黃酮濃度的增加,ABTS+自由基的清除作用逐漸增強(qiáng),在0.2 mg/mL時(shí)抗壞血酸的清除能力與總黃酮的清除能力相差最大,ABTS+自由基的清除作力為88.66%,明顯高于抗壞血酸。在0.6 mg/mL時(shí)兩點(diǎn)重合,ABTS+自由基的清除作用與抗壞血酸的清除作用持平均為100%。
圖7 不同總黃酮質(zhì)量濃度對(duì)ABTS+自由基的清除作用Fig.7 Scavenging activity of total flavonoids from cup plant at various concentrations against ABTS+ free radicals
2.3.3還原力由圖8可以看出在測(cè)定的質(zhì)量濃度范圍內(nèi),串葉松香草總黃酮的還原力隨著質(zhì)量濃度的升高也在不斷增強(qiáng),在串葉松香草總黃酮質(zhì)量濃度3~4 mg/mL時(shí)還原力增加速度最快,在6 mg/mL時(shí)的吸光度為0.188。而抗壞血酸在0.2 mg/mL時(shí)吸光值為0.701,還原力遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于串葉松香草總黃酮的還原力,因此串葉松香草總黃酮的還原力較弱。
圖8 不同總黃酮質(zhì)量濃度的還原力Fig.8 Ferric reducing power of total flavonoids from cup plant at various concentrations
3.1采用響應(yīng)面法優(yōu)化了乙醇提取串葉松香草總黃酮的工藝,最優(yōu)提取工藝條件為液料比31∶1 mL/g、提取時(shí)間129 min、提取溫度38 ℃、乙醇濃度42%。在此條件下獲得的實(shí)際總黃酮提取量達(dá)(38.93±0.012) mg/g,與理論值相差0.04%。
3.2串葉松香草中總黃酮對(duì)DPPH自由基和ABTS+自由基有較好的清除能力,當(dāng)濃度為1 mg/mL的串葉松香草中總黃酮對(duì)DPPH自由基清除率是73.06%,當(dāng)濃度為0.6 mg/mL的串葉松香草中總黃酮對(duì)ABTS+自由基清除率是100%,同時(shí)還具有一定的還原力,因此串葉松香草有較好的抗氧化能力。
[1]延璽,劉會(huì)青,鄒永青,等.黃酮類化合物生理活性及合成研究進(jìn)展[J].有機(jī)化學(xué),2008,28(9):1534-1544.
[2]周樂(lè),趙曉莉,狄留慶,等.黃酮類化合物口服吸收與代謝特征及其規(guī)律分析[J].中草藥,2013,44(16):2313-2320.
[3]朱文振,馬龍,李國(guó)榮.黃酮類化合物的抗癌作用及作用機(jī)制[J].生命科學(xué),2012,24(5):444-449.
[4]蘇新芳.接骨木葉片總黃酮提取、純化及抗氧化活性研究[D].臨汾:山西師范大學(xué),2016.
[5]徐金瑞,張瑞芬,潘國(guó)偉.番石榴葉黃酮的微波提取及其抗氧化作用研究[J].中國(guó)食品學(xué)報(bào),2010,10(5):166-170.
[6]Birt D F,Jeffery E.Flavonoids[J].Advances in Nutrition,2013,4(5):576-577.
[7]Majewska-Wierzbicka M,Czeczot H.Flavonoids in the prevention and treatment of cardiovascular diseases[J].Polski Merkuriusz Lekarski Organ Polskiego Towarzystwa Lekarskiego,2012,32(187):50-54.
[9]Akachi T,Shiina Y,Ohishi Y,et al.Hepatoprotective effects of flavonoids from shekwasha(Citrusdepressa)against D-galactosamine-induced liver injury in rats[J].Journal of
Nutritional Science & Vitaminology,2010,56(1):60-67.
[10]田曉冬,吳衛(wèi)國(guó).苦蕎黃酮類化合物研究進(jìn)展[J].農(nóng)產(chǎn)品加工·學(xué)刊,2012(6):86-88.
[11]方向,周小理,張婉萍.苦蕎萌發(fā)物中黃酮的防曬性研究[J].日用化學(xué)工業(yè),2013,43(5):362-366.
[12]伏兵哲,米福貴,高雪芹,等. 串葉松香草的研究現(xiàn)狀及進(jìn)展[J]. 農(nóng)業(yè)科學(xué)研究,2011,32(2):60-64.
[13]王一平.新型高產(chǎn)優(yōu)質(zhì)高蛋白牧草——串葉松香草[J].河北農(nóng)業(yè),2004(11):27-27.
[14]聶芙蓉,劉太宇,李夢(mèng)云,等.串葉松香草不同生育期營(yíng)養(yǎng)成分及其綿羊瘤胃降解動(dòng)態(tài)研究[J].西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2009(5):69-73.
[15]張薇.串葉松香草類SOD研究[D].上海:華東理工大學(xué),2012.
[16]韓雪梅,許效群,王緣,等. 苦蕎葉總黃酮提取純化工藝研究[J]. 山西農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2017,37(2):134-140.
[17]尚紅梅,郭瑋,潘丹,等.干燥方式對(duì)菊苣根多酚含量和抗氧化活性的影響[J].食品科學(xué),2015(1):84-88.
[18]Hatano T,Edamatsu R,Hiramatsu M,et al. Effects of the interaction of tannins with go-existing suof bstances. VI.:Effects of tannins and related polyphenols on superoxide anion radical,and on 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl radical[J]. Chemical & Pharmaceutical Bulletin,2008,37(8):2016-2021.
[19]Miller N J,Sampson J,Candeias L P,et al. Antioxidant activities of carotenes and xanthophylls[J]. Febs Letters,1996,384(3):240.
[20]R Re,N Pellegrinil A Proteggente,et al. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay[J]. Free Radical Biol Med,1999,26:1231-1237.
[21]Cheng IH,Chiang HC,Cheng MC,et al. Three new triterpenoids from Antrodia cinnamomea[J].J Nat Prod,1995,58:365-371.
[22]Cheng IH,Wu D P,ChiangH C.Triterpenoids from Antrodia cinnamomea[J].Phytochem,1996,41:263-267.
[23]郭玲.新疆石榴生理活性物質(zhì)的提取及其特性的研究[D].合肥:安徽農(nóng)業(yè)大學(xué),2006.
[24]杜彬,王同坤,侯文龍,等.板栗花中總多酚提取工藝優(yōu)化[J].食品科學(xué),2011,32(16):121-126.
[25]張黎明,李瑞超,郝利民,等.響應(yīng)面優(yōu)化瑪咖葉總黃酮提取工藝及其抗氧化活性研究[J].現(xiàn)代食品科技,2014(4):233-239.
[25]陳晨,胡文忠,田沛源,等.超聲輔助提取香蕉皮多酚工藝優(yōu)化及其抗氧化性的分析[J].食品科學(xué),2014,35(2):12-17.
[26]王海燕,李睿,曾秀,等.響應(yīng)面優(yōu)化超聲波提取桑葉謝皮素工藝[J].食品科學(xué),2014,35(22):56-62.