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    響應(yīng)面法優(yōu)化蛋殼內(nèi)膜酶解制備抑菌活性物質(zhì)的工藝條件

    2018-04-12 03:14:57牛明福杜夢(mèng)璇張婷婷李亞恒秦翠麗
    中國(guó)飼料 2018年7期
    關(guān)鍵詞:解液蛋殼蛋白酶

    牛明福,杜夢(mèng)璇,張婷婷,李亞恒,宮 強(qiáng),秦翠麗,侯 穎,李 陽(yáng)

    (河南科技大學(xué)食品與生物工程學(xué)院微生物資源開(kāi)發(fā)與利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河南洛陽(yáng)471023)

    蛋殼由蛋外殼與蛋殼內(nèi)膜兩部分組成,兩者都具有多種有效成分(何柳,2012),是豐富的鈣資源和蛋白資源,可作為食品、飼料、化學(xué)、輕工、醫(yī)藥等相關(guān)行業(yè)的寶貴原材料 (白鑫華,2017;Preetam和Somenath,2016;Eletta,2016)。 蛋外殼主要成分為碳酸鈣,蛋殼內(nèi)膜的主要成分是蛋白質(zhì),類似細(xì)胞膜蛋白質(zhì)的組成,以糖蛋白的形式存在,蛋殼膜約含90%蛋白質(zhì) (角蛋白、膠原蛋白、復(fù)合蛋白等)(Mohammadi,2016;劉焱,2014;周艷華,2010)。 研究表明,蛋殼膜中膠原蛋白可代替食品中動(dòng)物膠原蛋白(任萌,2012;Zhao,2009;Long,2004),所以蛋殼膜應(yīng)用于食品、化妝品或其他行業(yè)的潛力巨大,也是多肽或氨基酸的極好來(lái)源(Shi,2104)。

    多肽的制備途徑和方法有很多,酶解法反應(yīng)速度快、條件溫和、氨基酸不會(huì)被破壞,構(gòu)型不會(huì)發(fā)生改變,操作易于控制,不會(huì)對(duì)環(huán)境造成污染,而且能夠保證多肽的天然活性(Sarbjeet,2015;汪寶歡,2009;張嫻,2007)。本試驗(yàn)首先用不同的蛋白酶酶解蛋殼內(nèi)膜制備蛋膜酶解液,檢測(cè)其抑菌活性,為了得到更好的試驗(yàn)效果和最優(yōu)的酶解工藝條件,進(jìn)一步應(yīng)用Box-Behnken中心組合設(shè)計(jì)和響應(yīng)面分析法(RSM)(Reza,2016;劉瓊,2016;李莉,2013),以蛋殼內(nèi)膜酶解液對(duì)腸炎沙門(mén)氏菌(S.enteritidis)的抑菌圈直徑為響應(yīng)值,對(duì)蛋殼內(nèi)膜酶解條件進(jìn)行優(yōu)化,以期獲得最佳酶解工藝條件,同時(shí)對(duì)蛋殼內(nèi)膜的開(kāi)發(fā)利用提供一定的理論依據(jù)和參考。

    1 材料與方法

    1.1試驗(yàn)材料 雞蛋殼采自學(xué)校蛋糕房;堿性蛋白酶(≥200 U/mg)、中性蛋白酶(≥60 U/mg)、胰蛋白酶(4 ~ 6 U/mg)、木瓜蛋白酶(0.5 ~ 2 U/mg)購(gòu)自上海源葉生物科技有限公司;抗生素對(duì)照品恩諾沙星(Enrofloxacin,ENR)購(gòu)自國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)中心;雞大腸埃希氏菌(Chicken E.coli)、金黃色葡萄球菌(S.aureus)、銅綠假單胞菌(P.aeruginosa)、雞腸炎沙門(mén)氏菌(S.enteritidis)、痢疾志賀氏菌(S.dysenteriae)、嗜水汽單胞菌(A.hydrophila)、產(chǎn)腸毒大腸埃希氏菌(Enterotoxigenic E.coli)、禽多殺性巴氏桿菌(P.multocida)為實(shí)驗(yàn)室保藏菌種。

    1.2試驗(yàn)方法

    1.2.1蛋殼內(nèi)膜粉的制備 新鮮雞蛋殼 (清洗蛋殼上污物及殘余蛋清)→手剝蛋殼得蛋殼內(nèi)膜→置70℃烘箱6 h→粉碎機(jī)粉碎 (80目篩)→蛋殼內(nèi)膜粉,于干燥瓶中儲(chǔ)存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2.2酶解液的制備 取一定量的蛋殼內(nèi)膜粉加入PBS溶液中,添加適量的NaOH,90℃水浴20 min,冷卻至室溫,調(diào)整pH,加入適量蛋白酶,在適當(dāng)溫度下酶解數(shù)小時(shí),并維持酶解液pH基本不變,反應(yīng)完畢后于90℃水浴10 min進(jìn)行滅酶處理。滅酶后的酶解液12000 r/min離心10 min,上清用0.45 μm濾膜過(guò)濾得粗酶解液(史雅凝,2015)。

    1.2.3蛋白酶的篩選 蛋殼膜中主要是膠原蛋白、角蛋白等硬性蛋白,難溶于水,預(yù)試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),蛋殼內(nèi)膜質(zhì)量分?jǐn)?shù)為2%時(shí),通過(guò)NaOH處理完后溶液呈透明狀,黏度較小,較適合于后續(xù)的酶解試驗(yàn),因此后面的酶解試驗(yàn)均使用NaOH預(yù)處理的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為2%的蛋殼內(nèi)膜。稱取等量的蛋殼內(nèi)膜粉分別置于4個(gè)錐形瓶中,NaOH預(yù)處理后,在不同蛋白酶各自最適溫度和pH條件下(具體酶解條件見(jiàn)表1),分別添加同等量的堿性蛋白酶、中性蛋白酶、木瓜蛋白酶和胰蛋白酶,對(duì)蛋殼內(nèi)膜酶解4 h,90 ℃滅酶10 min,12000 r/min離心10 min,上清用0.45 μm濾膜過(guò)濾得各酶解液,采用牛津杯法(佘之蘊(yùn)等,2016)測(cè)定各種蛋白酶酶解液的抑菌活性,選擇酶解效果最好的蛋白酶。

    表1 各種蛋白酶的酶解條件

    1.2.4單因素試驗(yàn) 參照李鑫(2013)的方法并加以改進(jìn)進(jìn)行單因素試驗(yàn),以2%蛋殼內(nèi)膜為底物,選擇NaOH添加量、酶添加量、酶解溫度、酶解時(shí)間及酶解pH五因素,各因素梯度見(jiàn)表2,以對(duì)S.enteritidis的抑菌效果為指標(biāo),篩選較合適的酶解條件范圍。

    表2 酶解條件的單因素試驗(yàn)

    1.2.5響應(yīng)面分析因素及水平的確定 在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,以抑菌圈直徑Y(jié)為響應(yīng)值,利用Design Expert 8.0.6軟件的Box-Behnken中心組合設(shè)計(jì)法對(duì)酶解溫度(A)、酶解時(shí)間(B)、酶用量(C)、pH(D)設(shè)計(jì)四因素三水平響應(yīng)面試驗(yàn)進(jìn)行優(yōu)化分析(表 3)(楊瑩瑩等,2012;黎元生,1996)。

    表3 響應(yīng)面試驗(yàn)因素與水平

    1.2.6蛋殼內(nèi)膜酶解液抑菌活性成分的初步確定將蛋殼內(nèi)膜堿性蛋白酶酶解液12000 r/min離心10 min,取上清0.45 μm濾膜過(guò)濾,濾液加入2倍體積無(wú)水乙醇沉淀過(guò)夜,12000 r/min離心10 min,上清蒸發(fā)除去乙醇(標(biāo)記為①),沉淀用水溶解,加入等體積10%TCA溶液,再靜置2 h,12000 r/min離心10 min,離心后的上清液即為含多糖的溶液(標(biāo)記為②),沉淀用適量PBS溶液溶解后即為含多肽的溶液(標(biāo)記為③),仍采用牛津杯法,恩諾沙星(ENR)做陽(yáng)性對(duì)照,檢測(cè)樣品①、②、③對(duì)S.enteritidis的抑菌活性(胡徐登等,2015)。

    1.3數(shù)據(jù)處理 所有數(shù)據(jù)均為3次重復(fù)試驗(yàn)的平均值,并表示為“平均值±標(biāo)準(zhǔn)差”,單因素試驗(yàn)數(shù)據(jù)運(yùn)用 Origin7.5軟件繪制曲線圖;響應(yīng)面試驗(yàn)采用 Design-Expert 8.0.6軟件進(jìn)行方差分析,并優(yōu)化出最佳提取工藝。

    2 試驗(yàn)結(jié)果與討論

    2.1蛋殼內(nèi)膜酶解的單酶篩選 由表4可知,堿性蛋白酶和中性蛋白酶酶解液對(duì)禽大腸埃希氏菌、金黃色葡萄球菌、銅綠假單胞菌、痢疾志賀氏菌、腸炎沙門(mén)氏菌、嗜水氣單胞菌、產(chǎn)腸毒大腸埃

    表4 不同酶解液的抑菌結(jié)果

    希氏菌和禽多殺性巴氏桿菌均有抑菌效果,木瓜蛋白酶酶解液對(duì)產(chǎn)腸毒大腸埃希氏菌和禽多殺性巴氏桿菌沒(méi)有抑菌效果,胰蛋白酶解液對(duì)所有菌都沒(méi)有抑菌效果,這可能是不同蛋白酶的酶切位點(diǎn)不同,所得酶解液中的成分也不同所致。不同蛋白酶酶解液對(duì)腸炎沙門(mén)氏菌的抑菌效果比其他幾種菌都好,基于上述抑菌試驗(yàn)結(jié)果,以對(duì)腸炎沙門(mén)氏菌的抑菌圈直徑大小為指標(biāo),選用堿性蛋白酶進(jìn)行單因素試驗(yàn)及優(yōu)化試驗(yàn),以獲得具有最好抑菌活性的蛋殼內(nèi)膜酶解液。

    2.2酶解單因素試驗(yàn) 由圖1可以看出NaOH濃度為4%時(shí)酶解液的抑菌圈直徑最大;溫度為30~45℃時(shí),隨著溫度的升高,抑菌圈直徑呈現(xiàn)增長(zhǎng)趨勢(shì);當(dāng)溫度達(dá)到45℃時(shí),抑菌圈直徑幾乎是最大值;當(dāng)溫度為50℃后,抑菌圈直徑明顯變小,說(shuō)明溫度可能會(huì)影響堿性蛋白酶的活性,酶解溫度為40℃和45℃時(shí)的抑菌圈直徑差異不顯著(P>0.05)。當(dāng)酶解時(shí)間為1~3 h,抑菌圈直徑趨于增大,抑菌效果有明顯提高,3 h后抑菌圈直徑趨于平穩(wěn),變化不明顯,4 h和5 h的抑菌圈直徑與3 h的差異不顯著(P>0.05)。隨著加酶量的逐漸加大,酶解液抑菌圈直徑逐漸增大,超過(guò)40 U/mg后不再增大,50 U/mg與40 U/mg加酶量的抑菌圈直徑差異不顯著(P>0.05)。抑菌圈直徑隨pH的增大先上升后下降,pH是影響蛋白酶活性的重要因素,當(dāng)pH低于10時(shí),可能未達(dá)到堿性蛋白酶的最佳催化效果,而當(dāng)pH超過(guò)10時(shí),又會(huì)影響蛋白酶自身的結(jié)構(gòu)和活性,使酶的催化能力受到一定程度的抑制,pH 9和pH 11的抑菌圈直徑與pH 10的差異顯著 (p<0.05)。綜上可知,單因素酶解的較適條件為:NaOH 4%,酶解溫度45℃,酶解時(shí)間3 h,加酶量 40 U/mg,pH 10。

    2.3響應(yīng)面法優(yōu)化試驗(yàn)結(jié)果

    2.3.1響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果 利用Design Expert 8.0.6分析軟件,采用Box-Behnken中心組合設(shè)計(jì)法及響應(yīng)面分析法,探討A-酶解溫度、B-酶解時(shí)間、C-酶用量、D-pH及其交互作用對(duì)雞蛋殼內(nèi)膜蛋白酶酶解液抑菌效果的影響。21個(gè)試驗(yàn)點(diǎn)分為析因點(diǎn)和零點(diǎn),試驗(yàn)號(hào) 2、4、7、14、21 是中心試驗(yàn)點(diǎn)(零點(diǎn)),其中析因點(diǎn)為自變量取值在 A、B、C、D所構(gòu)成的三維頂點(diǎn);零點(diǎn)為區(qū)域的中心點(diǎn),零點(diǎn)試驗(yàn)重復(fù)5次,用以估計(jì)試驗(yàn)誤差。響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果與分析如表5所示,響應(yīng)面數(shù)據(jù)方差分析結(jié)果見(jiàn)表6。

    2.3.2響應(yīng)面模型的建立及顯著性檢驗(yàn) 根據(jù)表5試驗(yàn)結(jié)果,運(yùn)用Design Expert 8.0.6軟件對(duì)響應(yīng)值進(jìn)行多元回歸擬合分析,得到的模擬回歸方程,如下所示:

    響應(yīng)面的回歸顯著性方差分析見(jiàn)表5。

    由表6可知,該回歸二次方程模型具有顯著差異性(p< 0.05), R2=0.9275,模型相關(guān)度很好,說(shuō)明該模型是顯著的、擬合情況良好、可靠性較高。失擬項(xiàng)P值0.0543>0.05,不顯著,表明試驗(yàn)誤差較小,失擬度好,一些未知因素對(duì)試驗(yàn)干擾少,這進(jìn)一步說(shuō)明各因素值和響應(yīng)值之間的關(guān)系可以用Quadratic模型來(lái)函數(shù)化。模型的信噪比為7.499>4,表明選用的響應(yīng)面模型合理。當(dāng)顯著水平小于0.05時(shí),它所對(duì)應(yīng)的單個(gè)條件對(duì)響應(yīng)值的作用是顯著的。分析結(jié)果表明,因素一次項(xiàng)以及二次項(xiàng)A、B、C、C2、D2對(duì)酶解液抑菌效果有顯著影響 (P <0.05),交互項(xiàng) BC(P=0.0135<0.05)、BD(P=0.0181<0.05)、CD(P=0.0034<0.05)差異顯著,表明酶解時(shí)

    間、酶用量、酶解pH對(duì)蛋殼內(nèi)膜酶解液的抑菌效應(yīng)顯著,并且它們之間存在交互作用。由回歸方程可知,各因素對(duì)蛋殼內(nèi)膜酶解液的抑菌效果影響的方程系數(shù)為 A-酶解溫度 (0.69)、B-酶解時(shí)間(0.97)、C-酶用量(0.92)、D-pH(0.39),影響因素的主次順序?yàn)槊附鈺r(shí)間>酶用量>酶解溫度>pH。

    表5 響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果與分析

    表6 回歸模型方差分析

    2.3.3響應(yīng)面交互作用結(jié)果分析 采用軟件Design Expert 8.0.6分析軟件做兩兩因素交互作用的響應(yīng)曲面及等高線,確定酶解時(shí)間、酶用量、酶解溫度、酶解pH對(duì)蛋殼內(nèi)膜酶解液抑菌效果的影響,經(jīng)回歸模型方差分析結(jié)果可知,交互項(xiàng)AB、AC、AD的P值均大于0.05,差異不顯著,交互項(xiàng)BC(P=0.0135<0.05)、BD(P=0.0181<0.05)、CD(P=0.0034<0.05)差異顯著,所選試驗(yàn)因素與響應(yīng)面之間的具有顯著作用的交互項(xiàng),通過(guò)繪制響應(yīng)面曲線圖及等高線進(jìn)行可視分析,結(jié)果如圖2、3、4 所示。

    圖2 酶解時(shí)間和酶用量交互作用對(duì)蛋殼內(nèi)膜酶解液抑菌效果影響的響應(yīng)曲面及等高線

    圖3 酶解時(shí)間和pH交互作用對(duì)蛋殼內(nèi)膜酶解液抑菌效果影響的響應(yīng)曲面及等高線

    圖4 pH和酶用量交互作用對(duì)蛋殼內(nèi)膜酶解液抑菌效果影響的響應(yīng)曲面及等高線

    圖2、3、4表明酶解時(shí)間、酶用量、pH中任意一個(gè)變量取零水平時(shí),其余兩個(gè)變量對(duì)蛋膜酶解液抑菌效果的影響。一個(gè)響應(yīng)曲面圖的坡度越陡峭,表明響應(yīng)值對(duì)于這種處理?xiàng)l件下的改變?cè)矫舾校f(shuō)明這兩種自變量的交互作用比較強(qiáng)。從圖中可以看出酶用量與酶解pH的交互作用,以及酶解時(shí)間與酶用量的交互作用比酶解時(shí)間與酶解pH的交互作用要大。等高線圖的形狀反映出交互作用的強(qiáng)弱,橢圓表示2個(gè)因素作用顯著,圓形則相反,圖 2、3、4等高線曲率較小,說(shuō)明交互項(xiàng)CD,BC,BD的影響較顯著,當(dāng)酶用量一定時(shí),隨著酶解時(shí)間的延長(zhǎng)抑菌圈直徑增大,當(dāng)酶解到一定時(shí)間后,抑菌效果幾乎不變,甚至有減小趨勢(shì),說(shuō)明酶解時(shí)間不易過(guò)長(zhǎng),否則既浪費(fèi)資源,抑菌效果也不理想;當(dāng)pH一定時(shí),抑菌效果隨時(shí)間的延長(zhǎng)先增強(qiáng)后減弱;且當(dāng)pH一定時(shí),抑菌效果隨酶用量的增多而增強(qiáng),達(dá)到一定濃度后抑菌效果不再變化。

    2.3.4蛋膜酶解液最佳抑菌效果的酶解條件驗(yàn)證試驗(yàn) 應(yīng)用響應(yīng)面分析法優(yōu)化酶解工藝,經(jīng)曲面擬合后,得到的最佳酶解條件為:酶解溫度45℃,酶解時(shí)間2 h,酶用量37.51 U/mg,pH為10.14,此時(shí)預(yù)期的酶解液對(duì)S.enteritidis的抑菌圈直徑是(17.941±0.21)mm。為了檢測(cè)預(yù)測(cè)結(jié)果是否與真實(shí)情況相一致,以曲面擬合的最佳條件為試驗(yàn)條件進(jìn)行三次重復(fù)驗(yàn)證,結(jié)果得到的抑菌圈直徑平均值為(17.927±0.19)mm,高于優(yōu)化前任一條件下的數(shù)據(jù),且與預(yù)期的試驗(yàn)最大值接近。因此,在該工藝條件下試驗(yàn)結(jié)果比較穩(wěn)定,重現(xiàn)性良好,同時(shí)也證明響應(yīng)面分析的可靠性,說(shuō)明按照數(shù)學(xué)模型進(jìn)行預(yù)測(cè)是可行的。

    2.4蛋殼內(nèi)膜酶解液抑菌活性成分的初步確定以對(duì)S.enteritidis的抑菌圈直徑大小為指標(biāo),測(cè)酶解液不同成分的抑菌活性,最終結(jié)果抑菌圈直徑大小分別為:①:0 mm,②:0 mm,③:(14.02 ±0.36)mm,恩諾沙星陽(yáng)性對(duì)照(15.96 ±0.48)mm,從抑菌效果可以看出蛋殼內(nèi)膜酶解液中發(fā)揮抑菌作用的成分為蛋白酶解后的蛋白或多肽,而非蛋殼內(nèi)膜酶解液中的多糖成分或其他成分,這與充分利用蛋殼膜中豐富的蛋白質(zhì)成分的試驗(yàn)初衷相符,也為進(jìn)一步探討蛋殼膜酶解液的抑菌多肽成分奠定了基礎(chǔ)。

    3 結(jié)論

    3.1試驗(yàn)測(cè)定了堿性蛋白酶、中性蛋白酶、胰蛋白酶和木瓜蛋白酶4種蛋白酶對(duì)雞蛋殼內(nèi)膜酶解后的抑菌活性,發(fā)現(xiàn)堿性蛋白酶酶解液對(duì)幾種測(cè)試菌的抑菌效果較好。

    3.2對(duì)堿性蛋白酶的酶解條件進(jìn)行了單因素試驗(yàn)及響應(yīng)面優(yōu)化,通過(guò)中心組合設(shè)計(jì)并同時(shí)建立回歸模型,經(jīng)驗(yàn)證得到的回歸擬合程度較好 (R2=0.9275)。從模型中看出,酶解時(shí)間、酶用量、酶解pH對(duì)蛋殼內(nèi)膜酶解液的抑菌效果影響顯著,各因素之間存在交互作用。在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,利用Box-Behnken中心組合設(shè)計(jì)和響應(yīng)面分析法,確定蛋殼內(nèi)膜酶解液抑菌效果最佳工藝酶解條件為酶解溫度45℃,酶解時(shí)間2 h,酶用量37.51 U/mg,酶解pH 10.14。

    3.3在獲得的最佳酶解條件下,試驗(yàn)驗(yàn)證所得蛋殼內(nèi)膜酶解液對(duì)S.enteritidis的抑菌圈直徑為(17.927±0.19)mm,與理論最優(yōu)值(17.941±0.21) mm接近,抑菌效果比優(yōu)化前提高了10.52%。

    3.4酶解液初步處理說(shuō)明發(fā)揮抑菌活性的成分為蛋白或多肽,證明了試驗(yàn)的可行性,后續(xù)將進(jìn)一步研究抑菌活性成分及其他生物活性。

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