王 瑩 李文媛 尹國華 李智剛 金在順 滕誠毅 孫 平
(牡丹江醫(yī)學院解剖教研室,黑龍江 牡丹江 157011)
近年發(fā)現(xiàn)性腺類固醇激素睪酮為中樞神經(jīng)系統(tǒng)損傷后許多病理生理改變提供廣泛的神經(jīng)保護和治療作用〔1〕。睪酮可通過抑制氧化應激反應進行神經(jīng)保護和防止神經(jīng)元死亡,降低炎癥和自由基表達,并能夠加速失神經(jīng)軸突再生和功能恢復〔2〕。有研究表明睪酮還能夠顯著促進腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(BDNF)等表達〔3〕,但其在周圍神經(jīng)再生的作用及其機制報道較少。我們前期研究〔4〕已證實同種異體脫細胞異體神經(jīng)(ANA)能夠有效橋接坐骨神經(jīng)缺損,但單獨使用ANA運動功能恢復效果并不理想。本研究擬將脂肪源性干細胞(ADSC)作為種子細胞植入ANA橋接坐骨神經(jīng)缺損,并聯(lián)合在體內(nèi)具有較強睪酮活性的雄激素二氫睪酮(DHT)治療,探討DHT聯(lián)合ADSC對坐骨神經(jīng)缺損后小鼠BDNF信號通路和功能恢復的影響。
1.1細胞培養(yǎng)參照前期研究方法取小鼠腹部脂肪組織進行ADSC分離、培養(yǎng)及傳代〔4〕,2 w后茜草素紅染色鑒定ADSC向成骨誘導的細胞,經(jīng)細胞鑒定后取第4代ADSC行PKH26(Sigma公司,美國)染色標記〔5,6〕,進行體內(nèi)移植實驗。
1.2動物模型30只6~8周齡C57BL/6小鼠(雄性15 只,雌性15 只),由中國醫(yī)科大學實驗動物中心提供,體質(zhì)量18~22 g,按體質(zhì)量隨機分為:①ANA組:采用化學萃取脫細胞方法〔5〕制備CD1小鼠ANA,注入100 μl磷酸鹽緩沖液(PBS)于ANA,橋接長5 mm坐骨神經(jīng)兩斷端間的缺損,n=10;②ADSC組:注入等劑量ADSC(1×106個/100 μl)于ANA橋接坐骨神經(jīng)缺損,n=10;③DHT + ADSC組:同ADSC組方法進行ANA橋接后,皮下給予DHT0.2 ml(含有DHT 0.8 mg密度為4.0 mg/ml的醫(yī)用玉米油溶液,Sigma公司,美國)注射〔7〕,1次/d,給藥1 w,n=10。3組術后28 d麻醉取材。
1.3坐骨神經(jīng)功能指數(shù)(SFI)參照前期研究方法行SFI檢測〔6〕,術后28 d,制備1個塑料通道(8.5 cm寬,50 cm長),底部放置一張70 g白紙,黑色墨水蘸在小鼠雙側(cè)后足從通道一端行走至另一端,每個后足印在紙面3~4個足印,檢測足趾寬度(TS)、足趾長度(PL)及中間足趾寬度(ITS)。
1.4電生理檢測采用經(jīng)顱磁刺激MEP(tcMMEP)方法〔1〕,應用Magstim Model 200 磁刺激器(Magstim 公司,英國)和誘發(fā)電位儀(NIHON KOHDEN公司,日本)經(jīng)顱磁刺激運動誘發(fā)電位觀察小鼠坐骨神經(jīng)損傷后發(fā)生神經(jīng)傳導潛伏期、傳導速度及波幅改變,將電磁線圈置于顱骨激活皮層下組織誘發(fā)tcMMEP反應,探查電極置于腓腸肌肌腹,參考電極插入肌腱,接地電極插入尾巴。每只小鼠每側(cè)均檢測3次,每次間隔1 min,結(jié)果取平均值。
1.5Western印跡檢測神經(jīng)移植體內(nèi)DNF表達及其受體TrkB術后28 d,小鼠麻醉取ANA沖洗,剝離硬膜放置干冰保存,電泳分離蛋白樣品(20 μg)后轉(zhuǎn)膜、封閉,加入一抗:兔抗BDNF抗體(1∶200,Sigma公司,美國)和兔抗TrkB抗體(1∶200,Sigma公司,美國),4℃過夜,加入二抗(1∶5 000)孵育1 h,使用增強化學發(fā)光檢測系統(tǒng)(GE Healthcare公司,英國)觀察蛋白印跡。
1.6免疫熒光組化染色將快速分離的ANA置于含4%多聚甲醛固定,30%蔗糖脫水,冰凍切片,常規(guī)免疫組化染色,一抗為兔抗NF200(1∶200,Sigma公司,美國),二抗為FITC(1∶200,Sigma公司,美國),熒光顯微鏡下觀察并同時示蹤PKH26標記的ADSC。每張切片400倍鏡下隨機選取4個視野檢測光密度(IOD)值。
1.7統(tǒng)計學方法應用SPSS13.0軟件行t檢驗及單因素方差分析。
2.1ADSC培養(yǎng)與分化原代培養(yǎng)ADSC 8 d后形成的細胞群落較為密集,ADSC呈多角形或梭形伸展,有鋪路石狀特征。ADSC分化誘導成骨28 d后,可見分化細胞內(nèi)的鈣沉積茜素紅染色,見圖1。
圖1 ADSC培養(yǎng)與分化(×200)
2.2Western印跡結(jié)果DHT + ADSC組和ADSC組ANA中BDNF及其受體TrkB蛋白表達較ANA組顯著增高,其中DHT+ADSC組BDNF及其受體TrkB蛋白表達顯著高于ADSC組(均P<0.001),見圖2,表1。
表1 各組Western 印跡蛋白相對表達
與ANA組比較:1)P<0.05;與ADSC組比較:2)P<0.05,表3同
2.3免疫熒光染色觀察熒光顯微鏡下可見DHT + ADSC組和ADSC組在ANA中段有PKH26標記的ADSC,而DHT + ADSC組PKH26陽性表達顯著高于ADSC組(t=6.715,P<0.001)。免疫熒光法染色NF200檢測神經(jīng)支架中段軸突生成情況,與ADSC組比較,DHT + ADSC組NF200表達顯著增加(t=22.542,P<0.001),見圖3,表2。
圖3 術后4 w ADSC組和DHT + ADSC組神經(jīng)移植體中段PKH26和NF200免疫組化熒光染色(×200)
表2 各組PKH26和NF200的IOD值
與ADSC組比較:1)P<0.05
2.4SFI檢測結(jié)果術后28 d,與ANA組(-72.32±6.05)和ADSC組(-68.87±7.52)比較,DHT + ADSC組SFI指數(shù)顯著增高(-54.30±5.45,F(xiàn)=24.62,P<0.001),而ANA組與ADSC組SFI指數(shù)差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。
2.5神經(jīng)電生理檢測與ANA組比較,ADSC組和DHT + ADSC組神經(jīng)傳導速度及波幅顯著增加,而延遲期顯著縮短,其中DHT+ADSC組改善神經(jīng)電生理參數(shù)明顯優(yōu)于ADSC組 (神經(jīng)傳導速度:F=65.22,P<0.05;延遲期:F=14.32,P<0.05;波幅:F=19.65,P<0.05),見表3。
表3 各組神經(jīng)電生理參數(shù)檢測
目前發(fā)現(xiàn)近端周圍神經(jīng)病變或完全橫斷的預后普遍較差,運動功能恢復緩慢。其中主要原因是適宜神經(jīng)生長的微環(huán)境缺乏,軸突生長底物和神經(jīng)營養(yǎng)因子減少及受損軸突內(nèi)在生長速度太慢,導致再生軸突需較長時間連接遠端失神經(jīng)支配的神經(jīng)、不能重新支配靶組織,其功能恢復并不理想〔8〕。
前期研究發(fā)現(xiàn)〔4,5〕ANA由于脫去了周圍神經(jīng)的細胞成分,保存了神經(jīng)天然結(jié)構(gòu),具有較好的組織相容性,能夠為神經(jīng)缺損提供良好的神經(jīng)生長微環(huán)境。而種子細胞ADSC可合成和分泌大量神經(jīng)營養(yǎng)因子,如神經(jīng)生長因子、血管內(nèi)皮生長因子等,這些促進神經(jīng)生長的因子表達變化提供軸突生長的營養(yǎng)。本研究也再次證實ADSC能夠促進ANA橋接神經(jīng)缺損后功能恢復,但SFI結(jié)果表明ADSC組神經(jīng)功能恢復效果并不盡如人意,盡管其SFI有增高趨勢,且有研究證實〔6,9〕聯(lián)合治療能夠克服多種抑制神經(jīng)軸突再生的因素,較單一治療效果更為明顯。在中樞神經(jīng)系統(tǒng)中,睪酮能夠促進體外培養(yǎng)的海馬神經(jīng)元存活,防止皮質(zhì)錐體細胞損傷誘導的樹突萎縮〔3〕,促進腦卒中后早期功能恢復,并刺激周圍神經(jīng)損傷后運動神經(jīng)元軸突的生長〔10〕。而在周圍神經(jīng)系統(tǒng)中,睪酮能夠加速面神經(jīng)、舌下神經(jīng)、坐骨神經(jīng)軸突再生和神經(jīng)切斷后功能恢復〔2,11〕,但其促進軸突再生的機制尚不明確,本研究證實DHT治療能夠有效激活BDNF細胞信號,這與以往研究結(jié)果相一致〔3〕,其機制可能是BDNF的表達是通過鈣依賴的信號通路進行調(diào)節(jié),而cAMP反應元件(CRE)和cAMP反應元件結(jié)合蛋白(CREB)參與其信號通路發(fā)揮調(diào)節(jié)作用。睪酮已證實能夠有效激活CRE和CREB,因此,睪酮介導cAMP信號通路能夠調(diào)控和促進BDNF產(chǎn)生〔10〕。本研究推測DHT可能通過激活BDNF細胞信號,促進移植的ADSC增殖和存活,進而促進軸突的再生,且DHT聯(lián)合ADSC能夠協(xié)同促進神經(jīng)功能恢復。
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