帥常娟 劉淑云 姚宇 楊燁 殷澤登
氧化應(yīng)激是細(xì)胞氧化-抗氧化失衡而導(dǎo)致的應(yīng)激損傷狀態(tài),研究證實(shí)氧化應(yīng)激是導(dǎo)致老化的重要原因之一[1~3]。沉默信息調(diào)節(jié)因子1(silent information regulator1, SIRT1)是煙酰胺腺嘌呤二核苷依賴的蛋白脫乙?;?,可通過(guò)脫乙?;せ钸^(guò)氧化物酶體增殖物激活受體γ 輔激活因子1α (peroxisome proliferators-activated receptor-γ coactivator 1α, PGC-1α)等底物調(diào)節(jié)細(xì)胞內(nèi)氧化應(yīng)激狀態(tài),從而保護(hù)細(xì)胞免受氧化應(yīng)激損傷[4~7]。PGC-1α是近年來(lái)發(fā)現(xiàn)的在抗氧化應(yīng)激系統(tǒng)中起關(guān)鍵作用的轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)因子,能夠誘導(dǎo)細(xì)胞抗氧化酶的表達(dá),提高組織抗氧化能力[8]。前期研究發(fā)現(xiàn)聽(tīng)覺(jué)中樞老化可能與超氧化物歧化酶(superoxide dismutase, SOD)活性降低所導(dǎo)致的抗氧化功能下降有關(guān),電針“聽(tīng)宮”和“翳風(fēng)”兩個(gè)穴位可提高SOD活性,能在一定程度上抑制D-半乳糖所致的豚鼠聽(tīng)覺(jué)中樞的老化過(guò)程[9],但有關(guān)通過(guò)電針耳穴提高聽(tīng)覺(jué)中樞抗氧化能力的分子信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑尚不清楚。研究表明,SIRT1/PGC-1α途徑參與年齡相關(guān)性骨骼肌老化萎縮和聽(tīng)力損失過(guò)程[10~12]。本研究擬從mRNA水平和蛋白水平檢測(cè)D-半乳糖致年齡相關(guān)性聾豚鼠聽(tīng)皮層SIRT1、PGC-1α表達(dá),并觀察電針“聽(tīng)宮”穴和“翳風(fēng)”穴對(duì)其表達(dá)的影響,探討SIRT1/PGC-1α 途徑在年齡相關(guān)性聾豚鼠聽(tīng)皮層老化過(guò)程中的作用以及電針耳穴是否通過(guò)SIRT1/PGC-1α途徑調(diào)節(jié)聽(tīng)皮層的老化過(guò)程。
1.1實(shí)驗(yàn)動(dòng)物及分組 選取耳廓反射靈敏、無(wú)噪聲暴露及耳毒性藥物使用史的4月齡豚鼠30只(體重230~400 g),隨機(jī)分為對(duì)照組、D-半乳糖模型組(簡(jiǎn)稱模型組)、D-半乳糖模型+電針組(簡(jiǎn)稱電針組),每組10只;以18月齡豚鼠10只(體重500~700 g)為老年組。豚鼠均由西南醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。
1.2實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1D-半乳糖致年齡相關(guān)性聾豚鼠造模 參照李君梅等建立的方法[9],模型組及電針組豚鼠頸背部皮下注射D-半乳糖300 mg·kg-1·d-1,對(duì)照組予以注射等量生理鹽水,每天1次,連續(xù)6周。老年組豚鼠常規(guī)飼養(yǎng),不作任何處理。在飼養(yǎng)過(guò)程中,仔細(xì)觀察各組動(dòng)物的外觀及表現(xiàn)。
1.2.2電針?lè)椒?清醒狀態(tài)下,電針組豚鼠固定后取雙側(cè)“聽(tīng)宮”穴和“翳風(fēng)”穴[13, 14],用HM6805-I型經(jīng)穴治療儀(HM6805-I型,1100801072,四川恒明科技開(kāi)發(fā)有限公司)刺激,疏密波,頻率14 Hz,強(qiáng)度0.4~0.6 mA,連續(xù)輸出,9次/秒,持續(xù)刺激15 min,每天一次,連續(xù)6周。刺激強(qiáng)度以針刺附近豚鼠耳廓顫動(dòng),四肢輕抖動(dòng)但不掙扎嘶叫為度[15]。
1.2.3ABR檢測(cè) 采用Kong等[16]建立的方法進(jìn)行ABR檢測(cè)。豚鼠造模及電針結(jié)束后,2%戊巴比妥鈉(40 mg/kg)腹腔注射麻醉,麻醉滿意后置于隔聲屏蔽室內(nèi),環(huán)境溫度(25±3) ℃,應(yīng)用聽(tīng)覺(jué)腦干誘發(fā)電位儀(Intelligent Hearing Systems, 美國(guó))測(cè)試。記錄電極置于顱頂,參考電極置于雙側(cè)耳廓背面,接地電極置于鼻尖。刺激聲為短聲,雙耳同時(shí)刺激、記錄,聲刺激強(qiáng)度從100 dB SPL 開(kāi)始,掃描時(shí)間25 μs,疊加次數(shù)為1 024次,刺激間隔19.30次/秒,最大刺激強(qiáng)度為132 dB SPL,刺激強(qiáng)度按10 dB遞減,接近閾值時(shí),按5 dB遞減,記錄各組ABR反應(yīng)閾。
1.2.4動(dòng)物聽(tīng)皮層取材 ABR測(cè)試完成后,動(dòng)物麻醉未醒前,迅速斷頭,暴露顱腔,參照Schofield等[17]的方法對(duì)雙側(cè)聽(tīng)皮層解剖定位后于無(wú)菌臺(tái)上取出,立即用4 ℃生理鹽水洗凈血跡后凍存于-80 ℃冰箱。
1.2.5實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)聽(tīng)皮層SIRT1、PGC-1α mRNA的表達(dá) 聽(tīng)皮層于液氮中研磨后,按照離心柱型RNA提取分離試劑盒(DP419, 北京天根生化科技有限公司,中國(guó))的步驟提取總RNA。用分光光度計(jì)(ND-100, NanoDrop公司, 美國(guó))測(cè)定總RNA的濃度和純度,并通過(guò)電泳鑒定其完整性。按逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(FSQ-201, TOYOBO, 日本)說(shuō)明,以所提取的RNA為模版逆轉(zhuǎn)錄得到cDNA,PCR擴(kuò)增。參考Khan-Malek等[18]的方法對(duì)PCR結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。PCR引物相關(guān)信息見(jiàn)表1。
表1 實(shí)時(shí)熒光定量PCR引物相關(guān)信息
1.2.6Western Blot法檢測(cè)豚鼠聽(tīng)皮層組織SIRT1、PGC-1α蛋白表達(dá) 蛋白提取后,采用BCA法測(cè)定蛋白含量。4%濃縮膠和10%分離膠分離蛋白質(zhì)樣品,濃縮膠電壓80 V,分離膠電壓120 V;采用濕轉(zhuǎn)法轉(zhuǎn)膜,脫脂牛奶進(jìn)行封閉,SIRT1蛋白一抗(9475s, 上海優(yōu)寧維科技股份有限公司, 中國(guó))、PGC-1α蛋白一抗(ab54481, 上海復(fù)申生物科技有限公司, 中國(guó))和內(nèi)參一抗(β-actin)4 ℃冰箱中孵育過(guò)夜,二抗(bs-0295G-HRP, 北京博奧森生物技術(shù)有限公司, 中國(guó))置于脫色搖床上低速震蕩室溫孵育1 h。底物發(fā)光,凝膠成像系統(tǒng)成像拍照。使用Quantity one凝膠成像系統(tǒng)分析條帶的灰度值,為避免人為因素的誤差,采用目的蛋白與相應(yīng)內(nèi)參灰度的比值作為蛋白的相對(duì)表達(dá)量,進(jìn)行半定量檢測(cè),并進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。
1.3統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS17.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,結(jié)果以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,應(yīng)用單因素方差分析,方差齊時(shí),組間比較采用LSD檢驗(yàn)。
2.1各組豚鼠ABR閾值 對(duì)照組、模型組、電針組和老年組的ABR閾值分別為:35.75±4.66、74.5±5.59、44.4±7.92和76.5±7.8 dB SPL。與對(duì)照組比較,模型組和老年組ABR閾值升高(P模型組<0.00 1;P老年組<0.00 1);與模型組和老年組相比,電針組ABR閾值降低(P<0.00 1);模型組與老年組相比,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.344)。
2.2豚鼠聽(tīng)皮層STR1/PGC-1α mRNA表達(dá) 各組豚鼠聽(tīng)皮層SIRT1/PGC-1α mRNA相對(duì)表達(dá)量見(jiàn)表2。與對(duì)照組比較,老年組和模型組SIRT1、PGC-1α mRNA表達(dá)降低(P老年組SIRT1=0.02;P老年組PGC-1α<0.00 1;P模型組SIRT1=0.01;P模型組PGC-1α<0.00 1);與模型組比較,電針組SIRT1、PGC-1α mRNA表達(dá)增加(P電針組SIRT1=0.011,P電針組PGC-1α<0.00 1);與老年組相比較,電針組SIRT1、PGC-1α mRNA表達(dá)增加(P電針組SIRT1=0.016;P電針組PGC-1α<0.001);模型組和老年組相比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(PPGC-1α=0.536;PSIRT1=0.814)。
表2 各組豚鼠聽(tīng)皮層SIRT1、PGC-1α mRNA相對(duì)表達(dá)量
注:★與對(duì)照組比較;◆與模型組比較;△與老年組比較,P<0.01
2.3豚鼠聽(tīng)皮層SIRT1/PGC-1α蛋白表達(dá)
各組豚鼠聽(tīng)皮層SIRT1、PGC-1α蛋白表達(dá)變化見(jiàn)表3、圖1、2。與對(duì)照組比較,老年組和模型組SIRT1、PGC-1α蛋白水平降低(P老年組SIRT1<0.001;P老年組PGC-1α<0.001;P模型組SIRT1<0.001;P模型組PGC-1α<0.001);與模型組比較,電針組SIRT1、PGC-1α蛋白表達(dá)增加(P電針組SIRT1<0.001,P電針組PGC-1α<0.001);與老年組相比較,電針組SIRT1、PGC-1α 蛋白表達(dá)增加(P電針組SIRT1<0.001;P電針組PGC-1α<0.001);模型組和老年組相比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(PPGC-1α=0.753;PSIRT1=0.282)。
表3 聽(tīng)皮層SIRT1、PGC-1α蛋白表達(dá)相對(duì)灰度值
注:▲與對(duì)照組比較;●與模型組比較;*與老年組比較,P<0.01
圖1 各組豚鼠聽(tīng)皮層SIRT1蛋白表達(dá)
圖2 各組豚鼠聽(tīng)皮層PGC-1α蛋白表達(dá)
3.1SIRT1/PGC-1α途徑在年齡相關(guān)性聾豚鼠聽(tīng)皮層老化中的作用
應(yīng)用D-半乳糖用于年齡相關(guān)性聾動(dòng)物造模具有造模簡(jiǎn)單、周期相對(duì)較短的優(yōu)勢(shì),現(xiàn)已廣泛用于衰老相關(guān)的實(shí)驗(yàn)研究[19]。前期研究發(fā)現(xiàn),應(yīng)用D-半乳糖造模的年齡相關(guān)性聾豚鼠可表現(xiàn)出與自然衰老豚鼠相一致的聽(tīng)力下降,機(jī)體氧化損傷加重,抗氧化酶活性降低,聽(tīng)覺(jué)中樞老化[9,15,20]。本研究顯示,模型組豚鼠與對(duì)照組相比ABR反應(yīng)閾增高,但與老年組相比,無(wú)明顯差異,提示D-半乳糖致年齡相關(guān)性聾豚鼠模型構(gòu)建成功。
前期研究發(fā)現(xiàn),聽(tīng)皮層的老化可能與SOD活性降低所導(dǎo)致的抗氧化功能下降有關(guān)[9],但其具體機(jī)制目前尚不清楚。近年來(lái)有研究表明,SIRT1/ PGC-1α信號(hào)途徑在氧化應(yīng)激時(shí),可促進(jìn)抗氧化酶類表達(dá)增加,發(fā)揮抗氧化應(yīng)激作用[21,22]。Di Emidio等[23]研究發(fā)現(xiàn)SIRT1的下游因子錳超氧化物歧化酶(Mn-SOD)是位于線粒體中的關(guān)鍵抗氧化酶,過(guò)表達(dá)SIRT1可通過(guò)上調(diào)Mn-SOD保護(hù)小鼠卵母細(xì)胞免受氧化應(yīng)激損傷。本研究結(jié)果顯示,與對(duì)照組相比,模型組和老年組豚鼠聽(tīng)皮層SIRT1和PGC-1α在mRNA水平及蛋白水平的表達(dá)均顯著下調(diào),說(shuō)明SIRT1下調(diào)可能參與D-半乳糖致年齡相關(guān)性聾豚鼠的聽(tīng)皮層老化。Xue等[24]研究發(fā)現(xiàn),老年C57BL/6小鼠耳蝸毛細(xì)胞的凋亡與SIRT1和PGC-1α的表達(dá)降低有關(guān),過(guò)表達(dá)SIRT1顯著增加了耳蝸毛細(xì)胞中PGC-1α的表達(dá),減少氧化應(yīng)激誘導(dǎo)的線粒體功能障礙,從而抑制細(xì)胞凋亡。本研究結(jié)果顯示與對(duì)照組相比較,模型組和老年組豚鼠聽(tīng)皮層SIRT1和PGC-1α表達(dá)下調(diào),這可能與氧化應(yīng)激誘導(dǎo)線粒體功能障礙,從而促進(jìn)細(xì)胞凋亡相關(guān)。由此推測(cè),豚鼠聽(tīng)皮層的老化可能是由于SIRT1/PGC-1α表達(dá)下調(diào),導(dǎo)致SOD活性下降所致。
3.2電針耳穴通過(guò)SIRT1/PGC-1α 途徑延緩年齡相關(guān)性聾豚鼠聽(tīng)皮層老化
年齡相關(guān)性聾目前尚無(wú)有效的治療藥物[25]。電針耳穴不僅能提高毛細(xì)胞及耳蝸血管紋細(xì)胞線粒體酶的活性,保障細(xì)胞能量供應(yīng)[26],而且還能促進(jìn)聽(tīng)神經(jīng)纖維的再生[27]。前期研究表明,電針可以促進(jìn)聽(tīng)皮層 β-catenin蛋白表達(dá)[20]、改善聽(tīng)皮層糖代謝和促進(jìn)聽(tīng)皮層 IGF-1表達(dá),從而改善聽(tīng)力[28]。本研究結(jié)果顯示,電針組豚鼠ABR閾值較老年組和模型組明顯降低,表明電針在一定程度上能改善年齡相關(guān)性聾豚鼠的聽(tīng)功能。Dong等[29]研究發(fā)現(xiàn),電針可通過(guò)上調(diào)SIRT1依賴的PGC-1α的表達(dá),從而改善SAMP8小鼠腦的能量代謝。Jung等[30]研究發(fā)現(xiàn)電針可通過(guò)減少活性氧及其相關(guān)酶的產(chǎn)生,從而改善缺血性腦卒中患者血腦屏障功能,減輕腦水腫。這些研究說(shuō)明電針能調(diào)節(jié)機(jī)體氧化應(yīng)激功能。本研究結(jié)果顯示,電針組豚鼠聽(tīng)皮層SIRT1和PGC-1α的mRNA和蛋白表達(dá)高于模型組和老年組,說(shuō)明電針耳穴能提高SIRT1和PGC-1α的表達(dá),本課題組前期研究也證實(shí)了電針可提高SOD的活性;說(shuō)明電針能在一定程度上通過(guò)調(diào)節(jié)氧化應(yīng)激抑制D-半乳糖所致的豚鼠聽(tīng)皮層的老化過(guò)程[9]。
綜上所述,電針可能通過(guò)上調(diào)SIRT1/PGC-1α的表達(dá),提高SOD的活性,提高機(jī)體抗氧化應(yīng)激能力,從而延緩年齡相關(guān)性聾豚鼠聽(tīng)皮層的老化過(guò)程,但其具體機(jī)制有待繼續(xù)研究。
1 Mikhed Y, Daiber A, Steven S, et al. Mitochondrial oxidative stress mitochondrial DNA damage and their role in age-related vascular dysfunction[J]. Int J MolSci, 2015, 16: 15918.
2 Venkataraman K, Khurana S, Tai TC, et al. Oxidative stress in aging-matters of the heart and mind[J]. Int J MolSci, 2013, 14: 17897.
3 Sánchez-Rodríguez C, Martín-Sanz E, Cuadrado E, et al. Protective effect of polyphenols on presbycusis via oxidative/nitrosative stress suppression in rats[J]. Exp Gerontol, 2016, 83: 31.
4 Cheng Y, Takeuchi H, Sonobe Y, et al. Sirtuin 1 attenuates oxidative stress via upregulation of superoxide dismutase 2 and catalase in astrocytes[J]. Neuroimmunol, 2014, 269: 38.
5 Lee YH, Chen HY, Su LJ, et al .Sirtuin 1 (SIRT1) deacetylase activity and NAD+/NADH ratio are imperative for capsaicin-mediated programmed cell death[J]. Agric Food Chem, 2015, 63: 7361.
6 Liu H, Sheng M, Liu Y, et al. Expression of SIRT1 and oxidative stress in diabetic dry eye[J]. Int J Clin Exp Pathol, 2015, 8: 7644.
7 Tan M, Tang C, Zhang Y, et al. SIRT1/PGC-1α signaling protects hepa-tocytes against mitochondrial oxidative stress induced by bile acids[J]. Free Radic Res, 2015, 49: 935.
8 Basu S. A complex interplay between PGC-1 co-activators and mTORC1 regulates hematopoietic recovery following 5-fluorouracil treatment[J]. Stem Cell Res, 2014, 12: 178.
9 李君梅, 殷澤登, 謝仕津, 等. 電針耳穴對(duì)年齡相關(guān)性聾豚鼠耳蝸核、下丘和聽(tīng)皮層超氧化物歧化酶活性的影響[J]. 中國(guó)老年學(xué)雜志, 2013, 33: 5608.
10 Li FH, Yu HT, Xiao L, et al. Response of BAX, Bcl-2 Proteins, and SIRT1/PGC-1α mRNA expression to 8-week treadmill running in the aging rat skeletal muscle[J]. AdvExp Med Biol, 2016, 923: 283.
11 Kou X, Li J, Liu X, et al. Ampelopsin attenuates the atrophy of skeletal muscle from D-gal-induced aging rats through activating AMPK/SIRT1/PGC-1α signaling cascade[J]. Biomed Pharmacother, 2017, 90: 311.
12 Tian G, Sawashita J, Kubo H, et al. Ubiquinol-10 supplementation activates mitochondria functions to decelerate senescence insenescence-accelerated mice[J]. Antioxid Redox Signal, 2014, 20: 2606.
13 趙銘輝, 李勝, 譙鳳英, 等. 國(guó)內(nèi)針灸治療突發(fā)性聾臨床隨機(jī)對(duì)照試驗(yàn)文獻(xiàn)分析[J]. 中國(guó)中西醫(yī)結(jié)合耳鼻咽喉科雜志, 2010, 18: 244.
14 Albuquerque AA, Rossato M, Oliveira JA, et al. Understanding the anatomy of ears from guinea pigs and rats and its use in basic otologic research[J]. Braz J Otorhinolaryngol, 2009, 75: 43.
15 謝仕津, 殷澤登,李君梅, 等. 電針耳穴對(duì) D-半乳糖致豚鼠年齡相關(guān)性聾聽(tīng)覺(jué)中樞丙二醛表達(dá)的影響[J]. 聽(tīng)力學(xué)及言語(yǔ)疾病雜志,2012, 20: 254.
16 Kong WJ, Yin ZD, Fan GR, et al. Time course of neuronal and synaptic plasticity in dorsal cochlear nucleus of guinea pig following chronic kanamycin-induced deafness[J]. Brain Res, 2010, 1328: 118.
17 Schofield BR, Coomes DL. Auditory cortical projections to the cochlear nucleus in guinea pigs[J]. Hear Res, 2005, 199: 89.
18 Khan-Malek R, Wang Y. Statistical analysis of quantitative RT-PCR results[J]. Methods Mol Biol, 2017, 1641: 281.
19 秦紅兵,楊朝曄,范憶江,等. D-半乳糖誘導(dǎo)衰老小鼠模型的建立與評(píng)價(jià)[J]. 中國(guó)組織工程研究與臨床康復(fù),2009,13:1275.
20 劉淑云, 鄧力強(qiáng), 楊燁, 等. 電針耳穴對(duì)年齡相關(guān)性聽(tīng)力損失豚鼠聽(tīng)覺(jué)中樞β-catenin表達(dá)的影響[J]. 聽(tīng)力學(xué)及言語(yǔ)疾病雜志, 2016, 24: 593.
21 Wang SJ, Zhao XH, Chen W, et al. Sirtuin 1 activation enhances the PGC-1α/mitochondrial antioxidant system pathway in status epilepticus[J]. Mol Med Rep, 2015, 11: 521.
22 Bu XS, Wu D, Lu XM, et al. Role of SIRT1/PGC-1α in mitochondrial oxidative stress in autistic spectrum disorder[J]. Neuropsychiatr Dis Treat, 2017, 13: 1633.
23 Di Emidio G, Falone, Vitti M, et al. SIRT1 signalling protects mouse oocytes against oxidative stress and is deregulated during aging [J]. Hum Reprod, 2014, 29: 2006.
24 Xue T, Wei L, Zha DJ, et al. miR-29b overexpression induces cochlear hair cell apoptosis through the regulation of SIRT1/PGC-1α signaling: implications for age-related hearing loss[J]. Int J Mol Med, 2016, 38: 1387.
25 Frisina RD, Ding B, Zhu X, et al. Age-related hearing loss: prevention of threshold declines, cell loss andapoptosis in spiral ganglion neurons[J]. Aging (Albany NY),2016, 8: 2081.
26 康頌建, 史獻(xiàn)君, 史永芝, 等. 電針對(duì)慶大霉素耳中毒的防治作用及其機(jī)制的研究[J]. 中國(guó)應(yīng)用生理學(xué)雜志, 2001, 17: 285.
27 張曉哲. 電針針刺治療耳鳴臨床療效對(duì)比研究[J]. 中國(guó)針灸, 2002, 22: 91.
28 涂厚義, 陳茜, 劉淑云, 等. 電針聽(tīng)宮和翳風(fēng)穴對(duì)豚鼠聽(tīng)皮層糖代謝及IGF-1表達(dá)的影響[J]. 聽(tīng)力學(xué)及言語(yǔ)疾病雜志, 2015, 23: 280.
29 Dong W, Quo W, Wang F, et al. Electroacupuncture up-regulates SIRT1-dependent PGC-1α expression in SAMP8 mice[J].Med Sci Monit, 2015, 21: 3356.
30 Jung YS, Lee SW, Park JH, et al. Electroacupuncture preconditioning reduces ROS generation with NOX4 down-regulation and ameliorates blood-brain barrier disruption after ischemic stroke[J]. J Biomed Sci, 2016, 23: 32.