梁 雯,趙 冰,黃文梅
(西北農(nóng)林科技大學(xué) 風(fēng)景園林藝術(shù)學(xué)院,陜西 楊凌712100)
高溫會引起植物細(xì)胞成分、細(xì)胞組織結(jié)構(gòu)和新陳代謝的變化[1-2],嚴(yán)重時(shí)導(dǎo)致植物葉片萎蔫甚至死亡,是限制植物分布及生長的主要環(huán)境因子。與動(dòng)物相比,植物不能移動(dòng),只能利用自身抵抗熱害的能力來應(yīng)對自然界中出現(xiàn)的高溫?zé)岷Γ@種抵抗熱害的能力就是耐熱性[3]。植物的耐熱性可以通過施用生長調(diào)節(jié)劑,如鈣(主要為氯化鈣)[4]、水楊酸[1-3]等或高溫鍛煉來提高。植物在非致死高溫處理(即熱鍛煉)下可以獲得耐熱性[5-9],通過感知溫度信號并將這些信號轉(zhuǎn)導(dǎo)成生物化學(xué)過程來啟動(dòng)溫度鍛煉,最終導(dǎo)致耐熱性的發(fā)展[8]。熱鍛煉處理能使植物葉肉細(xì)胞及葉綠體在高溫下保持結(jié)構(gòu)穩(wěn)定[8,10],減少活性氧積累[8],提高抗氧化酶活性,調(diào)節(jié)滲透物質(zhì)積累[11],減少光抑制[12]等,從而提高植物耐熱性。熱鍛煉能提高亞洲百合Asiatic lilies[13],灰?guī)r皺葉報(bào)春Primula forrestii和滇北球花報(bào)春Primula denticulate ssp.sinodenticulata[10],菊花Chrysanthemum[11]等園林植物的耐熱性,但針對熱鍛煉提高杜鵑花Rhododendron耐熱性的研究迄今亦未見報(bào)道。周廣等[14]通過多年對杜鵑花的引種馴化研究,發(fā)現(xiàn)高溫?zé)岷κ怯绊懚霹N花引種馴化和應(yīng)用的主要因子。探究如何提高杜鵑花的耐熱性,使其更加廣泛地應(yīng)用到園林中,是園林工作者亟待解決的問題。本研究以杜鵑花品種 ‘狀元紅’Rhododendron ‘Zhuangyuan Hong’生長健壯植株為試材,研究熱鍛煉對植物葉片解剖結(jié)構(gòu)、光合作用和生理特征(包括細(xì)胞膜系統(tǒng)、滲透調(diào)節(jié)系統(tǒng)以及酶促抗氧化系統(tǒng))變化的影響,揭示熱脅迫下熱鍛煉處理對杜鵑花耐熱性的影響及其作用機(jī)理,為杜鵑花的引種馴化以及園林應(yīng)用提供理論依據(jù)。
供試杜鵑花品種 ‘狀元紅’購于浙江嘉善,在陜西楊凌新天地日光溫室[溫度(25±1)℃]培養(yǎng),生長健壯。選取栽植于塑料盆里的大小一致的 ‘狀元紅’18盆,1株·盆-1。栽培基質(zhì)為V(松針)∶V(泥炭土)=1∶2。試驗(yàn)在西北農(nóng)林科技大學(xué)林學(xué)院實(shí)驗(yàn)樓人工氣候箱中進(jìn)行,處理光照度約為12 000 lx, 光周期14 h,相對濕度80%?;ㄅ桦S機(jī)擺放,2 d澆1次水并互換位置以減少位置的影響。試驗(yàn)開始前所有植株在22℃下適應(yīng)3 d,隨后隨機(jī)選擇一半植株移到30℃下熱鍛煉處理6 d,另一半依然置于22℃作為對照。6 d后,將處理組和對照組植株各取6盆并分成2組,轉(zhuǎn)移到重度高溫(38℃)和極端高溫(42℃)下進(jìn)行6 d脅迫試驗(yàn),并把經(jīng)過熱鍛煉的余下的3盆轉(zhuǎn)移到人工氣候箱(22℃)培養(yǎng)6 d。整個(gè)試驗(yàn)設(shè)6 個(gè)處理(表 1)。
表1 試驗(yàn)中的6個(gè)處理Table 1 6 treatments in this trial
處理結(jié)束后選取各盆植株從頂端開始數(shù)的第3片葉,將它們迅速切成3 mm×1 mm大小,用體積分?jǐn)?shù)為4%的戊二醛溶液固定過夜,之后用磷酸緩沖液漂洗,梯度乙醇依次脫水,并進(jìn)行乙酸異戊酯置換,用K-850CO2臨界點(diǎn)干燥儀(Quorum,英國)干燥,E-1045離子濺射儀(HITACHI,日本)噴金,再用JSM-6360LV鎢燈絲掃描電子顯微鏡(JEOL,日本)進(jìn)行觀察拍照,記錄葉片柵欄、海綿等組織排列情況。用Nano Measure 1.2測量軟件測量葉片葉肉組織厚度,并計(jì)算柵欄海綿組織比、葉片組織結(jié)構(gòu)疏松度(RS)和葉片組織結(jié)構(gòu)緊密度(RCT)。柵欄海綿組織比=柵欄組織厚度/海綿組織厚度×100%;葉片組織結(jié)構(gòu)疏松度(RS)=海綿組織厚度/葉片厚度×100%;葉片組織結(jié)構(gòu)緊密度(RCT)=柵欄組織厚度/葉片厚度×100%。
使用LI-6400便攜式光合熒光儀(LI-COR,美國)測定葉片的凈光合速率(Pn),氣孔導(dǎo)度(Gs),蒸騰速率(Ts),細(xì)胞間隙二氧化碳摩爾分?jǐn)?shù)(Ci)。測定時(shí)葉室面積為6 cm2,樣品室流速設(shè)為500 μmol·s-1。
處理結(jié)束后選取植株中部葉位的葉片測定各項(xiàng)生理參數(shù)。稱取葉片0.1 g·次-1,重復(fù)測定3次。利用過氧化氫(H2O2)測試盒(南京建成生物工程研究所,A064)測定過氧化氫質(zhì)量摩爾濃度,采用硫代巴比妥酸法測定丙二醛(MDA)質(zhì)量摩爾濃度。采用蒽酮比色法測定可溶性糖質(zhì)量分?jǐn)?shù),試劑盒法測定可溶性蛋白質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)(南京建成生物工程研究所,A045),酸性茚三酮顯色法測定游離脯氨酸(Pro)質(zhì)量分?jǐn)?shù)。并采用氮藍(lán)四唑光化還原法測定超氧化物歧化酶(SOD)活性,愈創(chuàng)木酚法測定過氧化物酶(POD)活性,紫外吸收法測定過氧化氫酶(CAT)活性。
利用Excel和IBM SPSS Statistics 19進(jìn)行數(shù)據(jù)處理和方差分析,檢驗(yàn)不同處理間的差異顯著性。
葉片是植物發(fā)展進(jìn)化過程中對環(huán)境改變敏感且可塑性較大的器官,環(huán)境的變化常導(dǎo)致葉肉柵欄組織、海綿組織等解剖結(jié)構(gòu)的響應(yīng)與適應(yīng)。由圖1可以看出:在38℃熱脅迫下,相比未經(jīng)過熱鍛煉的植株,經(jīng)過熱鍛煉處理的植株柵欄組織細(xì)胞皺縮程度較輕,排列也較整齊;海綿組織則稍顯疏松。在42℃熱脅迫下,未經(jīng)熱鍛煉的植株葉片海綿組織皺縮嚴(yán)重,柵欄組織細(xì)胞皺縮,其柵狀排列幾不可見;經(jīng)熱鍛煉的植株葉片柵欄組織細(xì)胞皺縮但仍保持其柵狀排列,海綿組織結(jié)構(gòu)則嚴(yán)重破壞。結(jié)果表明,經(jīng)熱鍛煉預(yù)處理的 ‘狀元紅’植株葉片能在熱脅迫下較好地保持柵欄組織結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性。
圖1 各處理下 ‘狀元紅’葉片葉肉組織解剖結(jié)構(gòu)Figure 1 Mesophyll tissue anatomical structure of the leaves in ‘Zhuangyuan Hong’ under each treatment
柵欄海綿組織比是柵欄組織厚度與海綿組織厚度的比值,可用葉片組織結(jié)構(gòu)緊密度與組織結(jié)構(gòu)疏松度的比值表示。葉片組織結(jié)構(gòu)緊密度越大或組織結(jié)構(gòu)疏松度越小,柵海比越大。從表2可知,對照溫度下,經(jīng)熱鍛煉和未經(jīng)熱鍛煉處理對葉片柵海比無顯著影響。42℃時(shí)各處理葉片的柵海比與38℃時(shí)要低。而在同一熱脅迫下,熱鍛煉組柵海比比對照組要高,在38℃時(shí)高24.8%,42℃時(shí)高31.3%。檢測葉片組織結(jié)構(gòu)緊密度發(fā)現(xiàn),在對照溫度下,熱鍛煉處理后葉片組織結(jié)構(gòu)緊密度顯著低于未經(jīng)鍛煉的葉片。38℃下熱鍛煉的葉片組織結(jié)構(gòu)緊密度則有所增加,但差異不顯著。42℃時(shí)熱鍛煉處理的葉片組織結(jié)構(gòu)緊密度比未經(jīng)鍛煉的葉片增加了13.0%,差異顯著。檢測葉片組織結(jié)構(gòu)疏松度發(fā)現(xiàn),對照溫度下,熱鍛煉對葉片組織結(jié)構(gòu)疏松度沒有顯著差異。但當(dāng)溫度達(dá)到38℃和42℃時(shí),熱鍛煉葉片組織結(jié)構(gòu)疏松度值分別顯著低于未經(jīng)熱鍛煉的葉片。
光合作用是植物對熱脅迫最為敏感的生理過程之一[15]。表3為熱鍛煉對 ‘狀元紅’葉片光合作用參數(shù)的影響。由表3可知:在對照溫度下,經(jīng)熱鍛煉的植株葉片凈光合速率(Pn)高于未經(jīng)鍛煉的葉片,表明此時(shí)植株光合作用受到影響,但差異不顯著;在同一熱激水平下,經(jīng)熱鍛煉的植株葉片凈光合速率均顯著高于未經(jīng)鍛煉的葉片。對照溫度下,經(jīng)熱鍛煉的葉氣孔導(dǎo)度(Gs)顯著高于未經(jīng)鍛煉的葉片;在38℃脅迫下經(jīng)熱鍛煉的葉片葉氣孔導(dǎo)度值低于未經(jīng)鍛煉的葉片;而在42℃脅迫下則是高于未經(jīng)熱鍛煉的葉片,但差異均不顯著。高溫脅迫時(shí),經(jīng)熱鍛煉的植株葉片胞間二氧化碳摩爾分?jǐn)?shù)(Ci)均低于未經(jīng)鍛煉的葉片,38℃下,兩者相差了25.5%,差異顯著。測定葉片蒸騰速率 (Ts)值發(fā)現(xiàn),對照溫度下,經(jīng)熱鍛煉的葉片蒸騰速率值顯著高于未經(jīng)鍛煉的葉片;38℃下經(jīng)熱鍛煉的葉片蒸騰速率低于未經(jīng)鍛煉的葉片,42℃下則高于未經(jīng)鍛煉的葉片,但差異均不顯著。
表2 不同溫度下熱鍛煉對葉片葉肉組織結(jié)構(gòu)的影響Table 2 Effects of heat acclimation on mesophyll structure under different temperatures
表3 不同溫度下熱鍛煉對葉片光合參數(shù)的影響Table 3 Effects of heat acclimation on photosynthetic parameters under different temperatures
高溫影響細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)和活性氧積累,使得膜脂質(zhì)過氧化,加重膜損害。從表4可以看出,過氧化氫及MDA質(zhì)量摩爾濃度變化趨勢相同。在對照溫度下,熱鍛煉對過氧化氫及MDA質(zhì)量摩爾濃度的影響不顯著。隨著熱脅迫程度的增加,過氧化氫及MDA質(zhì)量摩爾濃度均減少。在38℃時(shí),相比于未經(jīng)鍛煉的葉片,經(jīng)熱鍛煉的葉片中過氧化氫質(zhì)量摩爾濃度顯著降低,MDA質(zhì)量摩爾濃度變化則不顯著。在42℃時(shí),過氧化氫與MDA質(zhì)量摩爾濃度變化均不顯著。
表4 不同溫度下熱鍛煉對葉片過氧化氫和MDA質(zhì)量摩爾濃度的影響Table 4 Effects of heat acclimation on molality of H2O2and MDA under different temperatures
熱脅迫下,植物通過細(xì)胞內(nèi)溶質(zhì)積累完成滲透調(diào)節(jié),調(diào)節(jié)細(xì)胞水分環(huán)境的變化[13]。由表5可以看出:在對照溫度下,經(jīng)熱鍛煉的 ‘狀元紅’植株葉片可溶性糖、可溶性蛋白質(zhì)、游離脯氨酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)均高于未經(jīng)鍛煉的植株葉片;隨著熱脅迫溫度上升,熱鍛煉組中所有可溶性物質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)均低于未經(jīng)鍛煉組。脅迫溫度達(dá)38℃時(shí),熱鍛煉對可溶性糖、可溶性蛋白質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)影響差異不明顯,對游離脯氨酸影響顯著;脅迫溫度達(dá)42℃時(shí),熱鍛煉組葉片中可溶性糖、可溶性蛋白質(zhì)均低于未鍛煉組,且差異顯著,但游離脯胺酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)差異仍不明顯。
熱脅迫下,植物體內(nèi)活性氧產(chǎn)生與清除的平衡被打破,活性氧積累。SOD,POD和CAT是植物體內(nèi)清除活性氧的重要保護(hù)酶[14]。對照溫度下,經(jīng)熱鍛煉的葉片中SOD活性高于未經(jīng)鍛煉的葉片;在38℃和42℃2個(gè)熱脅迫水平下,經(jīng)熱鍛煉的葉片SOD活性則低于未經(jīng)鍛煉的葉片,但差異并不明顯。POD及CAT活性與SOD變化趨勢相同,對照溫度下,經(jīng)熱鍛煉的葉片中POD及CAT活性均顯著低于未經(jīng)鍛煉的葉片;38℃高溫下,熱鍛煉組葉片POD及CAT活性均較低;42℃高溫下,熱鍛煉組葉片CAT活性較高但與未鍛煉組葉片差異并不顯著,而POD活性則高出約2.5倍,差異顯著。
表5 不同溫度下熱鍛煉對葉片可溶性糖、可溶性蛋白、游離脯氨酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響Table 5 Effects of heat acclimation on mass fraction of soluble sugar,soluble protein and pro under different temperatures
熱鍛煉能有效提高植株耐熱性,降低熱脅迫引起的傷害,如減緩高溫引起的葉片組織結(jié)構(gòu)損傷,減輕光合抑制,維持細(xì)胞膜穩(wěn)定性等[1,15-16]。本研究結(jié)果表明:經(jīng)30℃熱鍛煉后,杜鵑花品種‘狀元紅’在38℃和42℃熱脅迫下,耐熱性得到提高;表現(xiàn)為葉片組織結(jié)構(gòu)受損較輕,柵欄海綿組織比、組織結(jié)構(gòu)緊密度以及凈光合速率均有提高,過氧化氫、MDA質(zhì)量摩爾濃度和可溶性糖、可溶性蛋白質(zhì)及游離脯胺酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)以及SOD活性均下降。此外,熱鍛煉對POD及CAT活性也有影響。對杜鵑花而言,經(jīng)30℃熱鍛煉后,植株在38℃熱脅迫下耐熱性提高比較明顯,而在42℃下耐熱性變化不明顯。這與XU等[8]發(fā)現(xiàn)熱鍛煉對高羊茅Festuca arundinacea和多年生黑麥草Lolium perenne的影響研究結(jié)果相同,即即使經(jīng)過熱鍛煉,植株在經(jīng)受極端熱脅迫后(如42℃),耐熱性提高也不明顯。
表6 不同溫度下熱鍛煉對葉片SOD,POD和CAT活性的影響Table 6 Effects of heat acclimation on activity of SOD,POD and CAT under different temperatures
植物葉片的形態(tài)和解剖結(jié)構(gòu)特征最能體現(xiàn)植物對環(huán)境的適應(yīng)能力[16-17]。胡偉娟等[16]和申惠翡等[17]的研究發(fā)現(xiàn),耐熱性較高的植物種或品種柵海比和結(jié)構(gòu)緊密度較高。本研究可知,熱鍛煉后植株葉片柵海比和結(jié)構(gòu)緊密度均高于未鍛煉的植株。這可以在一定程度上表明,熱鍛煉處理后的杜鵑花植株耐熱性得到了提高。本研究還發(fā)現(xiàn),熱鍛煉處理植株在2個(gè)應(yīng)試熱脅迫溫度下,植株葉肉組織結(jié)構(gòu)疏松度均低于未熱鍛煉的植株,與王鳳蘭等[18]的研究結(jié)果相同,即植株耐熱性較強(qiáng)時(shí),疏松度反而較低,疏松度與耐熱性呈負(fù)相關(guān)。這主要是因?yàn)楹>d組織厚度越大,即疏松度越高,越容易適應(yīng)濕生環(huán)境,而這種環(huán)境中的植物耐熱性往往較弱[17]。
光合作用是植物體內(nèi)對熱較敏感的生理過程之一。試驗(yàn)結(jié)果表明,熱鍛煉的植株葉片Pn在高溫脅迫下要高于未經(jīng)熱鍛煉的植株,表明熱鍛煉處理能減輕高溫脅迫引起的光合抑制。ZHAO等[15]發(fā)現(xiàn)鴨茅Dactylis glomerata在經(jīng)熱鍛煉處理后Pn要比未經(jīng)熱鍛煉的顯著增高,這與本實(shí)驗(yàn)結(jié)論相同。關(guān)于熱脅迫對光合作用的抑制機(jī)制,早期研究認(rèn)為,主要?dú)w因于氣孔因素,即氣孔導(dǎo)度下降會降低植物與外界二氧化碳的交換,大大減少二氧化碳的供應(yīng),造成光合作用原料供應(yīng)不足進(jìn)而引起凈光合速率的下降;同時(shí)氣孔導(dǎo)度下降降低蒸騰速率,減緩光合產(chǎn)物運(yùn)輸速率,進(jìn)而造成光合產(chǎn)物在葉綠體中不斷積累,間接制約凈光合速率[19]。也有研究表明:光合作用受到抑制主要與葉肉細(xì)胞自身活性(如胞間二氧化碳摩爾分?jǐn)?shù)增加)有關(guān)[20]。在38℃高溫脅迫下,經(jīng)熱鍛煉的植株凈光合速率顯著上升,此時(shí)胞間二氧化碳摩爾分?jǐn)?shù)顯著降低,提示熱鍛煉后凈光合速率的上升可能歸因于非氣孔因素。但在42℃熱脅迫下,熱鍛煉后的植株凈光合速率顯著上升時(shí),胞間二氧化碳摩爾分?jǐn)?shù)下降,氣孔導(dǎo)度和和蒸騰速率上升,且變化均不顯著,這表明凈光合速率的上升是氣孔及非氣孔因素共同作用的結(jié)果。
植物受到熱脅迫會促使過氧化氫積累,從而導(dǎo)致細(xì)胞膜膜脂過氧化,膜熱穩(wěn)定性下降[8]。MDA是脂質(zhì)過氧化作用的產(chǎn)物,對細(xì)胞膜有毒害作用,其含量變化能反映細(xì)胞膜脂過氧化作用強(qiáng)弱和細(xì)胞的受損程度[14]。植物在受到逆境傷害后可通過滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)調(diào)節(jié)細(xì)胞膨壓,對減輕高溫傷害有一定作用[21]。滲透物質(zhì)的積累也間接表明了細(xì)胞受到了損害,且在一定范圍內(nèi)積累物質(zhì)越多,細(xì)胞受損程度可能越大。XU等[8]在研究高羊茅和黑麥草時(shí)發(fā)現(xiàn),同一脅迫溫度下經(jīng)熱鍛煉的植株葉片過氧化氫和MDA的積累比未經(jīng)鍛煉的要低,說明熱鍛煉處理能減輕細(xì)胞膜脂過氧化程度。本實(shí)驗(yàn)也發(fā)現(xiàn),經(jīng)熱鍛煉處理后,滲透物質(zhì)積累較少,這表明細(xì)胞受損程度較輕,植株耐熱性得到了提升。
對于在高溫逆境下細(xì)胞膜逐漸積累的活性氧,植物發(fā)展出2種抗氧化系統(tǒng),酶清除系統(tǒng)和非酶清除系統(tǒng)。酶清除系統(tǒng)包括能夠?qū)⒊踝杂苫D(zhuǎn)化成過氧化氫的SOD和能夠觸發(fā)過氧化氫轉(zhuǎn)化成水和氧氣的CAT和POD[8],本質(zhì)為通過控制胞內(nèi)活性氧含量來保護(hù)植物細(xì)胞。本研究中熱鍛煉后的植株葉片SOD活性得到了提高,與前人研究結(jié)果一致[8-9,11];但在38℃高溫條件下,SOD,POD和CAT活性經(jīng)熱鍛煉的均低于未經(jīng)鍛煉的,這可能是因?yàn)樵谶@個(gè)溫度下,熱鍛煉后過氧化氫和MDA的積累量較少,并不需要高活性的酶分解過氧化氫及MDA;而在42℃高溫脅迫下,經(jīng)熱鍛煉的植株SOD活性低,POD和CAT活性較高,同時(shí)過氧化氫含量較低,這可能是因?yàn)镾OD受高溫影響較大使得活性較低,而POD和CAT這2種酶則能保持較高活性,因此積累的過氧化氫主要依靠這2種酶清除的。
本實(shí)驗(yàn)從解剖結(jié)構(gòu)、光合作用、生理生化特性等方面研究熱鍛煉對杜鵑花品種 ‘狀元紅’耐熱性的影響,證實(shí)了熱鍛煉處理能提高植株葉片光合作用,減輕葉片葉肉以及細(xì)胞的受損程度,一定程度上提高杜鵑花植株耐熱性。熱鍛煉處理對杜鵑花抵抗熱脅迫具有一定的實(shí)踐應(yīng)用價(jià)值,但其分子機(jī)制還有待進(jìn)一步研究。
[1] 賈思振,楊恒偉,顏志明,等.高溫脅迫下水楊酸對菊花幼苗生理生化指標(biāo)的影響[J].浙江農(nóng)林大學(xué)學(xué)報(bào),2016, 33(3): 449-454.JIA Sizhen,YANG Hengwei,YAN Zhiming,et al.Physiological and biochemical indexes of exogenous salicylic acid on Chrysanthemum seedlings with high temperature stress [J].J Zhejiang A&F Univ,2016,33(3):449-454.
[2] 龔仲幸,何勇,朱祝軍.水楊酸對高溫脅迫下一串紅耐熱性的影響[J].浙江農(nóng)林大學(xué)學(xué)報(bào),2015,32(5):701-707.GONG Zhongxing,HE Yong,ZHU Zhujun.Heat resistance of Salvia splendens with salicylic acid added and high temperature stress [J].J Zhejiang A&F Univ,2015,32(5):701-707.
[3] LIU Hongtao,HUANG Weidong,PAN Qiuhong,et al.Contributions of PIP2-specific-phospholipase C and free salicylic acid to heat acclimation-induced thermotolerance in pea leaves [J].J Plant Physiol,2006,163(4):405-416.
[4] 汪蓉.抗熱劑對馬纓杜鵑抗熱性的影響研究[D].廣州:仲愷農(nóng)業(yè)工程學(xué)院,2014.WANG Rong.Studies on the Effect of Additives on the Themal Resistance of Rhododendron delavayi [D].Guangzhou:Zhongkai University of Agriculture and Engineering,2014.
[5] WANG Xiao,WOLLENWEBER B,JACOBSEN S,et al.Pre-anthesis high-temperature acclimation alleviates damage to the flag leaf caused by post-anthesis heat stress in wheat[J].J Plant Physiol,2011,168(6):585-593.
[6] YUAN Yuan,QIAN Hongmei,YU Yidong,et al.Thermotolerance and antioxidant response induced by heat acclimation in Freesia seedlings [J].Acta Physiol Plant,2011,33(3):1001-1009.
[7] MüLLER Fl,RIEU I.Acclimation to high tempeture during pollen development [J].Plant Reprod,2016,29(1/2):107-118.doi:10.1007/s00497-016-0282-x.
[8] XU Sheng,LI Jianlong,ZHANG Xinquan,et al.Effects of heat acclimation pretreatment on changes of membrane lipid peroxidation,antioxidant metabolites,and ultrastructure of chloroplasts in two cool-season turfgrass species under heat stress [J].Environ Exp Bot,2006,56(3):274-285.
[9] WANG Lijun,LI Shaohua.Thermotolerance and related antioxidant enzyme activities induced by heat acclimation and salicylic acid in grape(Vitis vinifera L.) leaves [J].Plant Growth Regul,2006,48(2):137-144.
[10] 胡偉娟,張啟翔,潘會堂,等.灰?guī)r皺葉報(bào)春和滇北球花報(bào)春在熱鍛煉和熱脅迫下葉肉細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)的差異[J].華南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2010, 31(3): 43-46.HU Weijuan,ZHANG Qixiang,PAN Huitang,et al.Difference in ultrastructure of mesophyll cell between two Primula species with different thermotolerance under heat acclimation and heat stress [J].J South China Agric Univ,2010,31(3):43-46.
[11] 李云,張鋼,楊際雙.熱激鍛煉對高溫脅迫下菊花生理代謝的影響[J].武漢植物學(xué)研究,2008,26(2):175-178.LI Yun,ZHANG Gang,YANG Jishuang.Effects of heat shock on physiological metabolism of Chrysanthemum under high temperature stress [J].J Wuhan Bot Res,2008,26(2):175-178.
[12] 王延書.水楊酸與高溫鍛煉對葡萄苗抗熱性和光合作用變化的影響[D].石河子:石河子大學(xué),2007.WANG Yanshu.Effects of Salicylic Acid or Heat Acclimation on the Thermotolerance and Photosynthesis in Grape Leaves [D].Shihezi:Shihezi University,2007.
[13] 劉雪凝,楊利平.熱激鍛煉對亞洲百合耐熱性的誘導(dǎo)[J].東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2011,39(5):64-66.LIU Xuening,YANG Liping.Effects of thermal stimulation exercise for bulbs on heat tolerance of Asiatic hybrid lily[J].J Northeast For Univ,2011,39(5):64-66.
[14] 周廣,孫寶騰,張樂華,等.井岡山杜鵑葉片抗氧化系統(tǒng)對高溫脅迫的響應(yīng)[J].西北植物學(xué)報(bào),2010,30(6): 1149-1156.ZHOU Guang,SUN Baoteng,ZHANG Lehua,et al.Responses of antioxidant system in leaves of Rhododendron jinggangshanicum to high temperature stress [J].Acta Bot Boreal-Occident Sin,2010,30(6):1149-1156.
[15] ZHAO Xinxin,HUANG Linkai,ZHANG Xinquan,et al.Effects of heat acclimation on photosynthesis,antioxidant enzyme activities,and gene expression in orchardgrass under heat stress [J].Molecules,2014,19(9):13564-13576.
[16] 胡偉娟,張啟翔,潘會堂,等.報(bào)春葉片解剖結(jié)構(gòu)與耐熱性的關(guān)系[J].華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2010,29(3):363-368.HU Weijuan,ZHANG Qixiang,PAN Huitang,et al.Relationship between leaf anatomical structure and heat resistance of Primula [J].J Huazhong Agric Univ,2010,29(3):363-368.
[17] 申惠翡,趙冰,徐靜靜.15個(gè)杜鵑花品種葉片解剖結(jié)構(gòu)與植株耐熱性的關(guān)系[J].應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào),2016,27(12): 1-13.SHEN Huifei,ZHAO Bing,XU Jingjing.Relationship between leaf anatomical structure and heat resistance of 15 Rhododendron cultivars [J].Chin J Appl Ecol,2016,27(12):3895-3904.
[18] 王鳳蘭,周厚高,黃子峰,等.新鐵炮百合葉片抗熱性形態(tài)指標(biāo)初探[J].湖北農(nóng)學(xué)院學(xué)報(bào),2004,24(2):102-105.WANG Fenglan,ZHOU Hougao,HUANG Zifeng,et al.Studies on the morphological indices of heat-resistance of lily(Lilium formolongi) leaf blade [J].J Hubei Agric Coll,2004,24(2):102-105.
[19] 田彥彥.逆境脅迫對菊花光合特性及相關(guān)生理指標(biāo)的影響[D].鄭州:河南農(nóng)業(yè)大學(xué),2009.TIAN Yanyan.Effects of Adverse Stress on Photosynthetic Characteristics and Relative Physiological Index [D].Zhengzhou:Henan Agricultural University,2009.
[20] 鄭宇,何天友,陳凌艷,等.高溫脅迫對西洋杜鵑光合作用和葉綠素?zé)晒鈩?dòng)力學(xué)參數(shù)的影響 [J].福建農(nóng)林大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版), 2012, 41(6): 608-615.ZHENG Yu,HE Tianyou,CHEN Lingyan,et al.Effects of high temperature stress on photosynthesis and chlorophyll fluorescence of Rhododendron hybridum [J].J Fujian Agric For Univ Nat Sci Ed,2012,41(6):608-615.
[21] 張樂華,周廣,孫寶騰,等.高溫脅迫對兩種常綠杜鵑亞屬植物幼苗生理生化特性的影響[J].植物科學(xué)學(xué)報(bào),2011, 29(3): 362-369.ZHANG Lehua,ZHOU Guang,SUN Baoteng,et al.Physiological and biochemical effects of high temperature stress on the seedlings of two Rhododendron species of subgenus Hymenanthes [J].Plant Sci J,2011,29(3):362-369.