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    大鼠肝損傷過程中肝組織神經(jīng)營養(yǎng)因子神經(jīng)突蛋白水平變化及其意義研究

    2018-03-22 10:29:19周濤朱美意周杰曹東歐陽軍
    中國全科醫(yī)學 2018年6期
    關鍵詞:胞質造模肝細胞

    周濤,朱美意,周杰,曹東,歐陽軍

    隨著現(xiàn)代工業(yè)和交通業(yè)的迅猛發(fā)展,各類事故所致腹部閉合性損傷日漸增多,而腹部創(chuàng)傷中肝損傷較常見,占腹部創(chuàng)傷發(fā)生率>20%[1]。嚴重肝損傷的傷情復雜,并發(fā)癥多,病死率為10%[2]。目前對肝損傷的研究主要集中在免疫性、化學性肝損傷,而對機械性肝損傷的研究相對較少。神經(jīng)突蛋白(Neuritin)作為神經(jīng)營養(yǎng)因子在多個器官表達,其在肝損傷及修復過程中的變化及作用尚未被研究。因此本研究建立大鼠肝損傷模型,采用免疫組化法觀察肝損傷后不同時間點肝組織Neuritin水平,以初步探討Neuritin在肝損傷修復過程中的作用。

    1 材料與方法

    1.1 主要試劑 Neuritin免疫組化一抗為多克隆山羊抗體(型號AF283),購于美國R&D公司,相應二抗(型號:PV-9003)購于北京中杉金橋生物技術有限公司,10%水合氯醛購于MERCK,肝素購于南京化學試劑股份有限公司。

    1.2 儀器與設備 自制改良型BIM-IV生物撞擊機購于第三軍醫(yī)大學;Sartorius電子天平(型號:PRACTUM124-1CN)購自深圳市盛美儀器有限公司;鼠板由本院實驗室提供。

    1.3 實驗動物、分組及造模

    1.3.1 實驗動物、分組 清潔級SD大鼠126只,由新疆醫(yī)科大學動物飼養(yǎng)中心〔許可證號XJZZQ(XK)200301〕提供,6周齡,雌雄不限,體質量(200±20)g。2015年11月—2016年11月,采用隨機數(shù)字表法將SD大鼠分為空白組(42只)、非肝損傷組(42只)、肝損傷組(42只)。

    1.3.2 造模 各組大鼠腹腔注射10%水合氯醛(3 ml/kg)麻醉,取仰臥位固定于鼠板。肝損傷組采用自制改良型BIM-IV生物撞擊機建立肝損傷模型:將大鼠右側腹部置于自制改良型BIM-IV生物撞擊機打擊頭下,對其劍突與右肋弓夾角處行2次打擊致肝臟鈍性撞擊破裂傷,肝損傷造模成功與否根據(jù)美國創(chuàng)傷外科協(xié)會(AAST)肝損傷分級標準[3]評判;非肝損傷組大鼠于同一部位給予同一力度致其股骨骨折;空白組不給予任何處置。

    1.4 標本采集 分別于造模后6 h、12 h、1 d、2 d、3 d、5 d采用隨機數(shù)字表法在各組選取7只大鼠,處死大鼠,完整取下?lián)p傷肝組織并使用Sartorius電子天平測量其重量,10%甲醛溶液固定,常規(guī)包埋、切片。從股動脈處取靜脈血l~2 ml并肝素化,室溫靜置30 min,3 000 r/min離心10 min(離心半徑3 cm),取血清、分裝并于4 ℃保存待用。

    1.5 肝組織HE染色 取肝組織石蠟塊,制備切片(4 μm),進行HE染色,顯微鏡下(×200)觀察肝組織病理情況。

    1.6 檢測血清丙氨酸氨基轉移酶(ALT)、天冬氨酸氨基轉移酶(AST)水平 將血清送往石河子大學醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院檢驗科,由固定專業(yè)檢驗人員利用全自動生化分析儀檢測血清ALT、AST水平。

    1.7 檢測肝組織Neuritin水平 取肝組織石蠟塊,制備切片(4 μm),進行免疫組化染色,采用Envision兩步法:切片脫蠟至水,微波加熱(95 ℃、15 min)以修復抗原,H2O2孵育10 min以減少背景染色;4 ℃孵育過夜;磷酸鹽緩沖液(PBS)震洗3次,5 min/次;滴加二抗,37 ℃孵育30 min;PBS震洗3次,5 min/次;DAB顯色后進行蘇木素核復染、脫水、透明、封固、干燥。以PBS代替一抗作為陰性對照,陽性對照為損傷肝組織標本。計算免疫組化得分(IS),IS采用AB值法來計算:A為染色面積,按切片中顯色細胞比例評分,1分為顯色細胞數(shù)占切片中細胞總數(shù)的1/3以下,2分為顯色細胞數(shù)占切片中細胞總數(shù)的1/3~2/3,3分為顯色細胞數(shù)占切片中細胞總數(shù)的2/3以上;B為染色強度,按切片中細胞有無顯色及深淺評分,0分細胞無著色,1分細胞顯色為淺黃色,2分細胞顯色為深黃色,3分細胞顯色為棕褐色;SI=A×B。以SI代表Neuritin水平。

    1.8 統(tǒng)計學方法 采用SPSS 17.0統(tǒng)計學軟件進行數(shù)據(jù)分析。計量資料以表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用SNK-q檢驗;兩變量間的相關性采用直線相關分析。以p<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

    2 結果

    2.1 肝組織HE染色結果 空白組、非肝損傷組各時間點均可見肝細胞排列規(guī)則整齊,胞質、細胞核大小形態(tài)正常,胞質嗜酸性,細胞膜完整,無變性壞死,無炎性細胞浸潤。肝損傷組造模后6 h時可見肝細胞排列不規(guī)則、胞質疏松化及氣球樣變;造模后12 h、1 d、2 d時可見肝細胞大片壞死甚至出現(xiàn)細胞核脫失;造模后3 d、5 d時可見肝細胞排列、胞質、細胞核大小形態(tài)接近正常(見圖1)。

    2.2 血清ALT、AST水平 3組造模后6 h、12 h、1 d、2 d血清ALT、AST水平比較,差異有統(tǒng)計學意義(p<0.05);3組造模后3 d、5 d血清ALT、AST水平比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。其中肝損傷組造模后6 h、12 h、1 d、2 d血清ALT、AST水平高于空白組、非肝損傷組,差異有統(tǒng)計學意義(p<0.05)。空白組、非肝損傷組造模后6 h、12 h、1 d、2 d、3 d、5 d血清ALT、AST水平組內(nèi)比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);肝損傷組造模后6 h、12 h、1 d、2 d、3 d、5 d血清ALT、AST水平組內(nèi)比較,差異有統(tǒng)計學意義(p<0.05)。其中肝損傷組造模后12 h血清ALT、AST水平高于造模后6 h,造模后2 d、3 d、5 d血清ALT、AST水平低于造模后6 h、12 h,造模后2 d、3 d、5 d血清ALT、AST水平低于造模后1 d,造模后3 d、5 d血清ALT、AST水平低于造模后2 d,差異有統(tǒng)計學意義(p<0.05,見表1)。

    2.3 肝組織Neuritin水平 3組造模后6 h、12 h、1 d、2 d、3 d肝組織Neuritin水平比較,差異有統(tǒng)計學意義(p<0.05);3組造模后5 d肝組織Neuritin水平比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。其中肝損傷組造模后6 h、12 h、1 d、2 d、3 d肝組織Neuritin水平高于空白組、非肝損傷組,差異有統(tǒng)計學意義(p<0.05)??瞻捉M、非肝損傷組造模后6 h、12 h、1 d、2 d、3 d、5 d肝組織Neuritin水平組內(nèi)比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);肝損傷組造模后6 h、12 h、1 d、2 d、3 d、5 d肝組織Neuritin水平組內(nèi)比較,差異有統(tǒng)計學意義(p<0.05)。其中肝損傷組造模后12 h、1 d肝組織Neuritin水平高于造模后6 h,造模后3 d、5 d肝組織Neuritin水平低于造模后6 h,造模后1 d、2 d、3 d、5 d肝組織Neuritin水平低于造模后12 h,造模后2 d、3 d、5 d肝組織Neuritin水平低于造模后1 d,造模后3 d、5 d肝組織Neuritin水平低于造模后2 d,造模后5 d肝組織Neuritin水平低于造模后3 d,差異有統(tǒng)計學意義(p<0.05,見圖2、表2)。注:與空白組比較,ap<0.05;與非肝損傷組比較,bp<0.05;與造模后6 h比較,cp<0.05;與造模后12 h比較,dp<0.05;與造模后1 d比較,ep<0.05;與造模后2 d比較,fp<0.05;與造模后3 d比較,gp<0.05

    圖1 3組肝組織HE染色結果(×200)Figure 1 HE staining results of liver tissue in three groups

    表1 3組血清ALT、AST水平比較(,U/L,n=7)Table 1 Comparison of serum ALT and AST levels measured at different measurement times in three groups

    表1 3組血清ALT、AST水平比較(,U/L,n=7)Table 1 Comparison of serum ALT and AST levels measured at different measurement times in three groups

    注:ALT=丙氨酸氨基轉移酶,AST=天冬氨酸氨基轉移酶;與空白組比較,ap<0.05;與非肝損傷組比較,bp<0.05;與造模后6 h比較,cp<0.05;與造模后12 h比較,dp<0.05;與造模后1 d比較,ep<0.05;與造模后2 d比較,fp<0.05

    空白組 41.2±9.2 42.2±8.5 44.7±9.4 43.0±5.3 43.2±9.0 39.2±7.6 0.27 0.93非肝損傷組 45.3±7.0 40.7±6.6 42.4±7.4 47.2±6.2 45.0±5.8 42.0±6.4 0.89 0.51肝損傷組 261.2±18.4ab 429.2±8.4abc 242.2±15.3abcd 115.0±11.8abcde 53.0±5.4cdef 47.8±8.0cdef 901.46 <0.01 F值 603.61 4 834.46 627.45 142.49 3.42 2.04 P值 <0.01 <0.01 <0.01 <0.01 0.06 0.16組別 AST F值 P值造模后6 h 造模后12 h 造模后1 d 造模后2 d 造模后3 d 造模后5 d空白組 69.3±9.5 68.8±12.8 71.0±10.7 77.0±9.2 73.7±12.2 65.2±10.6 0.85 0.52非肝損傷組 71.8±12.8 73.7±11.9 75.7±9.5 83.2±9.5 72.5±11.8 67.3±11.7 1.30 0.29肝損傷組 275.3±10.8ab 778.2±30.6abc 410.2±16.9abcd 200.2±17.6abcde 78.2±6.9cdef 70.7±10.1cdef 1 411.9 <0.01 F值 676.43 2 413.08 1 391.64 178.40 0.48 0.39 P值 <0.01 <0.01 <0.01 <0.01 0.63 0.68

    表2 3組肝組織Neuritin水平比較(,n=7)Table 2 Comparison of Neuritin levels in liver tissue measured at different measurement times in three groups

    表2 3組肝組織Neuritin水平比較(,n=7)Table 2 Comparison of Neuritin levels in liver tissue measured at different measurement times in three groups

    空白組 1.78±0.23 1.70±0.14 1.71±0.17 1.65±0.10 1.76±0.20 1.70±0.16 0.45 0.85非肝損傷組 1.68±0.18 1.78±0.17 1.68±0.22 1.73±0.17 1.68±0.19 1.71±0.14 0.29 0.91肝損傷組 3.72±0.26ab 6.13±0.25abc 4.48±0.19abcd 3.58±0.14abde 3.28±0.18abcdef 1.85±0.27cdefg 240.32 <0.01 F值 154.55 995.00 397.32 339.50 128.09 1.06 P值 <0.01 <0.01 <0.01 <0.01 <0.01 0.37

    圖2 3組肝組織免疫組化染色結果(×200)Figure 2 Immunohistochemical staining of liver tissue in three groups

    2.4 肝損傷組肝組織Neuritin水平與血清ALT、AST水平的相關性 肝損傷組肝組織Neuritin水平與血清ALT、AST水平均呈正相關(r=0.796 2,p<0.001;r=0.769 1,p<0.001;見圖 3、4)。

    3 討論

    圖3 肝損傷組肝組織Neuritin水平與血清ALT水平的相關性Figure 3 Correlation between Neuritin levels and serum ALT levels in rats with liver injury

    圖4 肝損傷組肝組織Neuritin水平與血清AST水平的相關性Figure 4 Correlation between Neuritin levels and serum AST levels in rats with liver injury

    肝臟是再生能力較強的實質性器官,其再生機制異常復雜[4]。肝臟由肝實質細胞及肝非實質細胞組成,其中肝實質細胞數(shù)量占全部肝細胞的80%[5]。有研究者通過表達于肝實質細胞中的鳥氨酸循環(huán)的關鍵酶氨基甲酰磷酸合成酶1(CPS-1)以及表達于肝非實質細胞中的組織金屬蛋白酶抑制劑2(TIMP-2)對肝實質細胞和肝非實質細胞進行檢測分離發(fā)現(xiàn),Neuritin僅在肝實質細胞中有表達[6]。日本研究者發(fā)現(xiàn),在切除成年小鼠70%肝臟后Neuritin水平出現(xiàn)一過性降低,切除手術24 h后,隨著肝臟再生的開始,Neuritin水平開始回升,其水平回升的時間與細胞周期蛋白D1(cyclinD1)一致,而cyclinD1是反映肝臟發(fā)育成熟和再生的指標[6]。由此可以推測,Neuritin在肝臟中對肝細胞的發(fā)育或再生/增殖均有重要作用,其具有潛在的臨床價值。Neuritin是NEDIVI等[7]于1993年在谷氨酸類似物紅藻氨酸鹽的誘導下,從鼠海馬cDNA文庫中篩選和鑒定出的一系列與長期可塑性相關的候選基因15(CPG15)之一。隨后的研究顯示,光刺激可誘導CPG15在大鼠的視覺皮質中表達[8];對人類腦皮質cDNA文庫篩選得到的CPG15進行初步的功能研究發(fā)現(xiàn),其能促進神經(jīng)突起的快速生長,故又將其命名為Neuritin[7]。Neuritin是神經(jīng)營養(yǎng)因子家族中的一種小分子物質,之前有關Neuritin的研究一直集中在神經(jīng)系統(tǒng)、胃、骨折等[9-11],之后利用免疫組化法對人體正常組織Neuritin水平做了進一步的研究:Neuritin除了在神經(jīng)系統(tǒng)(腦)表達外,在肝組織中也有明顯表達[12],這與NEDIVI等[13]的研究結果基本一致,證實了Neuritin還參與介導神經(jīng)系統(tǒng)外其他細胞(真皮微血管內(nèi)皮細胞,DMVEC)的再生和細胞形態(tài)學上的生長變化,并在血管領航和網(wǎng)絡形成中發(fā)揮導向作用[14]。Neuritin作為神經(jīng)營養(yǎng)因子在多個器官表達,但其在肝損傷及修復過程中的變化及作用尚未被研究。因此本研究建立大鼠肝損傷模型,采用免疫組化法觀察肝損傷后不同時間點肝組織Neuritin水平,以初步探討Neuritin在肝損傷修復過程中的作用。

    ALT、AST主要分布于肝細胞的胞質和線粒體中,而血清中ALT、AST水平較低;當肝實質細胞受損或壞死時,細胞膜通透性增加并導致線粒體損傷,胞質中的ALT、AST大量流出,血清中ALT、AST水平明顯升高,所以血清ALT、AST是肝細胞損傷的敏感指標[15]。本研究結果顯示,非肝損傷組與空白組造模后6 h、12 h、1 d、2 d血清ALT、AST水平無差異;肝損傷組造模后6 h、12 h血清ALT、AST水平高于空白組、非肝損傷組;肝損傷組造模后12 h血清ALT、AST水平高于造模后6 h,造模后2 d、3 d、5 d血清ALT、AST水平低于造模后6 h、12 h;提示造模成功。肝損傷組造模后1 d、2 d血清ALT、AST水平高于空白組、非肝損傷組;3組造模后3 d、5 d血清ALT、AST水平無差異;肝損傷組造模后2 d、3 d、5 d血清ALT、AST水平低于造模后1 d,造模后3 d、5 d血清ALT、AST水平低于造模后2 d;說明ALT、AST水平升高主要由肝損傷引起,從而排除生物撞擊引起其他組織損傷對ALT、AST水平的影響。肝組織HE染色結果顯示,空白組、非肝損傷組各時間點均可見肝細胞排列規(guī)則整齊,胞質、細胞核大小形態(tài)正常,胞質嗜酸性,細胞膜完整,無變性壞死,無炎性細胞浸潤;肝損傷組造模后6 h時可見肝細胞排列不規(guī)則、胞質疏松化及氣球樣變,造模后12 h、1 d、2 d時可見肝細胞大片壞死甚至出現(xiàn)細胞核脫失;說明本實驗建立的肝損傷模型是成功的。肝損傷組造模后6 h、12 h、1 d、2 d、3 d、5d肝組織Neuritin水平高于空白組、非肝損傷組;肝損傷組造模后12 h、1 d肝組織Neuritin水平高于造模后6 h,造模后3 d、5 d肝組織Neuritin水平低于造模后6 h,造模后1 d、2 d、3 d、5 d肝組織Neuritin水平低于造模后12 h,造模后2 d、3 d、5 d肝組織Neuritin水平低于造模后1 d,造模后3 d、5 d肝組織Neuritin水平低于造模后2 d,造模后5 d肝組織Neuritin水平低于造模后3 d;說明在肝損傷后隨著時間的變化肝組織Neuritin水平有先從低到高,再從高到低的變化。肝損傷組大鼠肝組織Neuritin水平與血清ALT、AST水平均呈正相關,說明大鼠肝損傷后隨著ALT、AST水平升高肝細胞周圍Neuritin水平也上升。因此,推測Neuritin與肝損傷程度、修復密切相關:肝損傷后Neuritin水平升高,可能與肝細胞凋亡有關,同時Neuritin對受損肝細胞有一定的修復作用,其可能參與了肝挫裂傷后的修復過程。Neuritin抗細胞凋亡或促進肝細胞再生的機制可能是:(1)Neuritin通過阻斷半胱氨酸蛋白酶(Caspase)3激活抗凋亡[16];(2)Neuritin顯著增強衰老大鼠肝臟中過氧化物歧化酶、過氧化氫酶以及過氧化物酶的活性,能較好地清除自由基、抑制脂質過氧化反應、降低丙二醛水平及延緩細胞衰老[17];(3)Neuritin通過改善線粒體功能,增加能量合成[16],從而發(fā)揮保護肝細胞作用;(4)Neuritin可能通過抑制一氧化氮合酶(NOS)活性[18],從而發(fā)揮抗細胞凋亡及保護細胞膜的作用。

    本研究的局限性在于其他物理或化學因素也能引起肝損傷,這些引起肝損傷的因素會不會對Neuritin也有一定影響需進一步研究證實。肝損傷后Neuritin水平升高可能是肝損傷修復作用的結果,也可能是其保護作用中的一環(huán)節(jié),推測Neuritin可能參與肝損傷后修復,但具體機制仍需進一步研究。因此,進一步探明肝損傷的發(fā)生機制,把握肝損傷修復保護的時間規(guī)律及最佳時間窗,并且進行相應的藥物預處理,則會給肝損傷的防治帶來很好的前景。

    綜上所述,大鼠肝損傷后,肝組織中神經(jīng)營養(yǎng)因子Neuritin水平先升高再降低,與血清中ALT、AST水平變化一致,其可能在肝損傷后肝細胞的再生或增殖過程中發(fā)揮一定的作用,但其具體機制仍需進一步研究。本研究組初步推測Neuritin有可能作為急性肝損傷的分子標志物,為肝損傷的防治發(fā)揮一定的臨床價值。

    作者貢獻:周濤進行丙氨酸氨基轉移酶(ALT)、天冬氨酸氨基轉移酶(AST)、Neuritin水平檢測;朱美意進行組織學檢查;周杰進行動物實驗;曹東進行信息檢索、論文修改;歐陽軍進行項目設計及指導、質量控制及審核,對文章負責。

    本文無利益沖突。

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