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    DNA微陣列芯片法檢測耐藥結(jié)核分枝桿菌的價值探討

    2018-03-21 03:15:39
    傳染病信息 2018年1期
    關(guān)鍵詞:結(jié)核結(jié)核病雜交

    何 建

    2010年全國第五次結(jié)核病流行病學(xué)抽樣調(diào)查報告顯示我國肺結(jié)核患者的耐藥情況較嚴(yán)重。與2000年調(diào)查結(jié)果相比,異煙肼(isoniazid, INH)的耐藥率增加了11.0個百分點(diǎn),利福平(rifampin,RFP)的耐藥率減少了7.7個百分點(diǎn),對結(jié)核分枝桿菌分離菌株的總耐多藥率為6.8%,雖然下降了3.9個百分點(diǎn),但仍高于全球的平均水平[1]。如此高的耐藥率突顯耐多藥防控的必要性、緊迫性。耐藥結(jié)核病的控制包括患者發(fā)現(xiàn)、治療、管理等各過程。其中耐藥結(jié)核病患者的發(fā)現(xiàn)是控制耐藥結(jié)核病的第一環(huán)節(jié)。既往檢測耐多藥的經(jīng)典藥物敏感試驗(yàn)為比例法或絕對濃度法,但檢測時間過長。WHO現(xiàn)推薦采用快速耐藥結(jié)核病診斷技術(shù)以利于該類患者的早期發(fā)現(xiàn)。宜昌市第三人民醫(yī)院自2014年5月起采用DNA微陣列芯片法進(jìn)行結(jié)核病的INH、RFP耐藥快速檢測,并與傳統(tǒng)藥物敏感試驗(yàn)作比較,以了解該方法對耐藥結(jié)核菌檢測的應(yīng)用價值。

    1 材料與方法

    1.1 標(biāo)本來源 收集本院2014年5月1日—2015年5月31日結(jié)核分枝桿菌痰涂片陽性或痰結(jié)核培養(yǎng)陽性標(biāo)本。其中痰涂片陽性標(biāo)本125份,痰培養(yǎng)陽性標(biāo)本40份。

    1.2 痰菌檢查 采用萋爾-尼爾遜(ziehl-neelsen,Z-N)抗酸染色法進(jìn)行痰涂片檢查。

    1.3 痰結(jié)核分枝桿菌培養(yǎng)及藥物敏感試驗(yàn) 結(jié)核分枝桿菌培養(yǎng)采用改良羅氏培養(yǎng)基,采用對硝基苯甲酸生長實(shí)驗(yàn)進(jìn)行初步菌種鑒定,對鑒定為結(jié)核分枝桿菌的菌株采用絕對濃度法進(jìn)行分枝桿菌藥物敏感試驗(yàn)。試驗(yàn)方法依據(jù)中國防癆協(xié)會2006版《結(jié)核病診斷實(shí)驗(yàn)室檢驗(yàn)規(guī)程》[2]進(jìn)行。

    1.4 DNA微陣列芯片法檢測 DNA微陣列芯片法采用北京博奧生物有限公司藥物敏感檢測試劑盒進(jìn)行檢測,操作嚴(yán)格按照說明書進(jìn)行。

    1.4.1 核酸提取 向核酸提取管中加入80 μl核酸提取液,加入用無菌接種環(huán)挑取的培養(yǎng)陽性的1個菌落或涂片陽性的痰液,使用Extractor 36核酸快速提取儀震蕩5 min,90 ℃水浴5 min,5000 rpm離心1 min,所提取核酸于-20 ℃暫存。

    1.4.2 PCR擴(kuò)增 每個樣品設(shè)3個復(fù)孔進(jìn)行擴(kuò)增反應(yīng)。分別取PCR擴(kuò)增試劑1、2、3 各18 μl均加入 200 μl離心管中(3管),將核酸提取管中的上清液(包含待檢樣品DNA)2 μl依次加入到3個管中,并置于PCR擴(kuò)增儀中,按說明書中的熱循環(huán)程序進(jìn)行PCR擴(kuò)增。其中PCR擴(kuò)增試劑1、2、3擴(kuò)增的分別是分枝桿菌屬探針序列(擴(kuò)增產(chǎn)物1),rpoB基因突變位點(diǎn)序列(擴(kuò)增產(chǎn)物2),katG和inhA基因突變位點(diǎn)序列(擴(kuò)增產(chǎn)物3)。PCR引物序列由中國博奧生物有限公司提供[3]。

    1.4.3 芯片雜交 將雜交緩沖液加熱至50 ℃使其完全融化,混勻后各取9 μl分別裝于2管中,將PCR產(chǎn)物1、PCR產(chǎn)物2各取3 μl加入上述裝有雜交緩沖液的管中配制雜交混合物R;將PCR產(chǎn)物1、PCR產(chǎn)物3各取3 μl配制雜交混合物H;將雜交反應(yīng)混合物加熱至95 ℃變性5 min,冰浴3 min。吸取13.5 μl雜交混合物加入加樣孔,微陣列1或3加入雜交混合物R,微陣列2加入雜交混合物H,蓋上雜交盒并密封放入50 ℃恒溫水浴鍋中,時間為120 min。

    1.4.4 芯片洗滌及干燥 將雜交盒拆開,將芯片取出放入盛有芯片洗滌液Ⅰ的容器中,并在恒溫?fù)u床上振蕩,速度為80~100 rpm,洗滌3 min。再用芯片洗滌液Ⅱ在恒溫?fù)u床上振蕩,速度為80~100 rpm,洗滌3 min。然后將芯片置于離心機(jī)中進(jìn)行離心,轉(zhuǎn)速為800 rpm,時間為5 min,甩干后掃描。

    1.4.5 芯片掃描和結(jié)果判讀 使用微陣列芯片掃描儀(Luxscan 10K-B)和相應(yīng)軟件進(jìn)行信號讀取及結(jié)果判讀。

    1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 用CHISS 2004軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。在本研究中,金標(biāo)準(zhǔn)為傳統(tǒng)藥物敏感試驗(yàn),以檢測菌株表型耐藥為真陽性,以檢測菌株表型敏感為真陰性。分析DNA微陣列芯片法檢測的靈敏度、特異度及一致性。2種方法檢出率的差異性檢驗(yàn)用配對四格表χ2檢驗(yàn)。P<0.05表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié) 果

    2.1 DNA微陣列芯片法檢測INH耐藥性 2種方法檢測INH耐藥結(jié)果見表1,配對χ2=0.500,P=0.480,表明2種方法檢出率具有一致性,一致率為98.8%。以傳統(tǒng)藥物敏感試驗(yàn)絕對濃度法為金標(biāo)準(zhǔn),DNA微陣列芯片法檢測INH的靈敏度為87.5%,特異度為100%。

    表1 2種方法檢測INH耐藥結(jié)果(例)Table 1 Results of INH resistance by 2 methods(cases)

    2.2 DNA微陣列芯片法檢測RFP耐藥性 2種方法檢測RFP耐藥結(jié)果見表2,配對χ2=0.000,P=1.000,表明2種方法檢出率具有一致性,一致率為99.4%。以傳統(tǒng)藥物敏感試驗(yàn)絕對濃度法為金標(biāo)準(zhǔn),DNA微陣列芯片法檢測RFP的靈敏度為83.3%,特異度為100%。

    表2 2種方法檢測RFP耐藥結(jié)果(例)Table 2 Results of RFP resistance by 2 methods(cases)

    2.3 DNA微陣列芯片法檢測耐多藥性 2種方法檢測耐多藥結(jié)果見表3,配對χ2=0.000,P=1.000,表明2種方法檢出率具有一致性,一致率為100%。以傳統(tǒng)藥物敏感試驗(yàn)絕對濃度法為金標(biāo)準(zhǔn),DNA微陣列芯片法檢測耐多藥的靈敏度為100%,特異度為100%。

    表3 2種方法檢測耐多藥耐藥結(jié)果(例)Table 3 Results of multi drug resistance by 2 methods(cases)

    3 討 論

    傳統(tǒng)的藥物敏感性方法是以固體培養(yǎng)為基礎(chǔ)的絕對濃度法或比例法,但需較長時間。一般從患者就診到獲得藥物敏感結(jié)果需要2~3個月[4]。采用液體培養(yǎng)法,如MGIT960系統(tǒng),可將藥物敏感試驗(yàn)時間縮短至2~4周,但仍不能滿足臨床需要[5]。因此,快速、簡便的耐藥檢測方法一直是結(jié)核病研究的重要內(nèi)容之一,也是及時治療以保證結(jié)核病治療效果的重要前提。

    目前熱門的快速檢測方法主要是分子生物學(xué)檢測方法?,F(xiàn)只有該種方法能在2 d得到耐藥檢測結(jié)果。WHO也推薦采用分子生物學(xué)技術(shù)中的線性探針和Xpert MDR/RIF技術(shù)用于耐藥結(jié)核病的檢測[6]。DNA微陣列芯片技術(shù)與線性探針相似,都是通過檢測2種抗結(jié)核一線藥物INH和RFP的3個耐藥基因katG、inhA和rpoB啟動子的野生型及不同突變型來判斷是否耐藥[7]。主要技術(shù)特點(diǎn)是根據(jù)這3個耐藥基因的特異性保守核酸序列,設(shè)計(jì)PCR擴(kuò)增引物及相應(yīng)的寡核苷酸探針,固定在芯片表面上,經(jīng)與針對性的擴(kuò)增被檢測樣本的 DNA片段雜交,并通過芯片掃描儀掃描雜交后的芯片上特定位置的熒光信號,從而檢測出樣品的耐藥基因信息。該檢測方法可在6 h內(nèi)得到結(jié)果[8]。

    本研究表明,DNA微陣列芯片法診斷INH耐藥的敏感度為87.5%,診斷RFP耐藥的敏感度為83.3%,診斷耐多藥的敏感度為100%,三者特異度均為100%。DNA微陣列芯片法與傳統(tǒng)藥物敏感試驗(yàn)診斷INH耐藥、RFP耐藥、耐多藥的一致率為98.8%~100%。顯示了DNA微陣列芯片檢測技術(shù)具有較高的敏感度和特異度,與傳統(tǒng)藥物敏感方法相比,一致性較高。因此,具有較好的可靠性及較高的檢測效能。

    本研究的不足之處是敏感的樣本較少,使檢驗(yàn)效能偏低,影響檢驗(yàn)結(jié)果的可信度。后續(xù)有待進(jìn)一步擴(kuò)大樣本量,進(jìn)行檢測并比較分析以得出更為準(zhǔn)確的結(jié)論。

    在本研究中,2例INH單耐藥和1例RFP單耐藥未被DNA微陣列芯片法檢出,原因可能有以下兩方面。首先,商品化DNA微陣列芯片試劑盒受檢測探針的限制,所檢測的耐藥基因及相應(yīng)位點(diǎn)不能覆蓋目前已知的所有耐藥基因及相應(yīng)位點(diǎn)。例如:①結(jié)核分枝桿菌對INH的耐藥與katG、inhA、kasA、ndh、ahpC 5種基因突變或缺失有關(guān),其中80%以上的耐INH分離株與katG和inhA基因發(fā)生突變有關(guān)[9-10]。而目前采用的結(jié)核分枝桿菌耐藥檢測試劑盒主要通過檢測INH耐藥相關(guān)基因katG 315、inhA及位點(diǎn)來判斷是否耐藥。因此,如果是另外3種基因位點(diǎn)突變引起的耐藥,可能該試劑盒無法檢出。②結(jié)核分枝桿菌對 RFP的耐藥主要與RNA聚合酶亞單位rpoB基因的突變有關(guān),是否與RNA 聚合酶亞單位其他3 個基因rpoA、rpoC 或rpoZ 突變相關(guān)目前尚不清楚。廖小琴等[11]分析發(fā)現(xiàn)57株耐RFP結(jié)核分枝桿菌中有50株為rpoB基因突變,2株為rpoC突變。并且在rpoB 765、1001、1156位及rpoC 51位發(fā)現(xiàn)新的突變位點(diǎn)。而所使用的結(jié)核分枝桿菌耐藥檢測試劑盒探針檢測范圍僅為RFP耐藥相關(guān)基因rpoB的531、526、513、516、511、533位共6個位點(diǎn)。因此,若為探針檢測范圍之外的其他相關(guān)基因(如rpoC或rpoB)的位點(diǎn)突變,則該檢測試劑盒可能無法檢出。

    其次,在實(shí)際檢測過程中,如果待檢標(biāo)本痰菌量太少或含有雜質(zhì),會造成核酸提取、擴(kuò)增失敗。因此,研發(fā)新的能覆蓋所有已知耐INH、RFP相關(guān)基因及位點(diǎn)檢測的試劑盒可能是進(jìn)一步提高DNA微陣列芯片法耐藥檢測技術(shù)陽性率的方法之一。

    總之,本研究對DNA微陣列芯片法檢測耐藥結(jié)核菌的效果作了初步評價,發(fā)現(xiàn)該檢測方法具有較高的敏感度和特異度,與傳統(tǒng)藥物敏感試驗(yàn)相比具有較好的一致率。而且該方法可靠性較好且檢測所需時間短,可以作為臨床結(jié)核病耐藥性的快速篩查方法。

    [1]全國第五次結(jié)核病流行病學(xué)抽樣調(diào)查技術(shù)指導(dǎo)組,全國第五次結(jié)核病流行病學(xué)抽樣調(diào)查辦公室. 2010年全國第五次結(jié)核病流行病學(xué)抽樣調(diào)查報告[J]. 中國防癆雜志,2012,34(8):485-508.

    [2]中國防癆協(xié)會基礎(chǔ)專業(yè)委員會.結(jié)核病診斷實(shí)驗(yàn)室檢驗(yàn)規(guī)程[M]. 北京:中國教育文化出版社,2006:13-65.

    [3]周楊,歐喜超,樂軍,等. 基因芯片診斷耐多藥結(jié)核病的臨床多中心研究 [ J ]. 中華檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)雜志,2011,34(9):793-799.

    [4]王心靜,王仲元. 結(jié)核病實(shí)驗(yàn)室診斷新技術(shù)的臨床應(yīng)用[J].傳染病信息,2014,27(6):373-376.

    [5]蔣俊,張娟,張紅,等. MGIT960系統(tǒng)行二線抗結(jié)核藥物敏感性試驗(yàn)的實(shí)用性評價[J].中國防癆雜志,2012,34(8):527-531.

    [6]世界衛(wèi)生組織. 耐藥結(jié)核病規(guī)劃管理指南2011年更新版 [M].日內(nèi)瓦:世界衛(wèi)生組織,2011:3-7.

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    [10]Jiao WW, Mokrousov I, Sun GZ, et al. Molecular characteristics of rifampin and isoniazid resistant Mycobacterium tuberculosis strains from Beijing, China[J]. Chin Med J (Engl) , 2007, 120(9):814-819.

    [11]廖小琴,劉梅,彭章麗,等. 耐利福平結(jié)核分枝桿菌 rpoA、rpoB、rpoC和 rpoZ 突變的研究[J]. 中華臨床醫(yī)師雜志,2013,7(22):9874-9878.

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