張應(yīng)龍,左汶奇
(重慶醫(yī)科大學(xué)附屬永川醫(yī)院耳鼻喉科,重慶 402160)
電磁輻射是繼空氣、水、食品污染后的第4大污染物。隨著社會(huì)的進(jìn)步,電子產(chǎn)品的使用大量增加,如微波爐、電腦、電磁爐等,人們暴露于電磁場(chǎng)的概率也隨之增高。手機(jī)是現(xiàn)代社會(huì)交流傳遞信息必不可少的工具,人們常常隨身攜帶。900、1 800 MHz是常用的兩種手機(jī)頻率,手機(jī)的輻射強(qiáng)度在每個(gè)國(guó)家有不同的規(guī)定,比如歐洲和美國(guó)標(biāo)準(zhǔn)是小于1.6 w/kg,但4 w/kg常被用來了解手機(jī)輻射的熱效應(yīng)[1]。關(guān)于手機(jī)對(duì)人體的影響,目前有學(xué)者發(fā)現(xiàn)手機(jī)電磁輻射可以導(dǎo)致精子活力的下降、神經(jīng)元細(xì)胞的數(shù)量及活力的降低,同時(shí)手機(jī)電磁輻射與神經(jīng)膠質(zhì)瘤和聽神經(jīng)瘤發(fā)病有相關(guān)性[2-4]。但有研究發(fā)現(xiàn)電磁輻射并不會(huì)引起明顯的生物學(xué)效應(yīng),原因?yàn)殡姶泡椛洳煌陔婋x輻射,其能量低于電離輻射,電磁輻射對(duì)各器官的影響仍是目前研究的熱點(diǎn)[5]。雙耳是手機(jī)輻射的直接效應(yīng)器官,有研究發(fā)現(xiàn)幼鼠暴露于900 MHz手機(jī)電磁輻射裝置下,盡管聽力沒有改變,但耳蝸超微結(jié)構(gòu)有改變[6];有離體研究發(fā)現(xiàn)耳蝸螺旋神經(jīng)節(jié)細(xì)胞在經(jīng)過脂多糖處理后暴露于1 800 MHz、4 w/kg強(qiáng)度下,細(xì)胞有自噬小體生成,自噬蛋白LC3-Ⅱ和beclin1有陽性表達(dá),證實(shí)細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)有改變[7];還有研究報(bào)道小鼠耳蝸毛細(xì)胞HEI-OC1暴露于1 760 MHz電磁輻射系統(tǒng)下,細(xì)胞周期、蛋白表達(dá)及DNA等均未見明顯異常[8]?;钚匝醮?ROS)系統(tǒng)的激活被認(rèn)為是電磁輻射產(chǎn)生生物學(xué)效應(yīng)的主要機(jī)制[9],而耳蝸邊緣細(xì)胞對(duì)維持內(nèi)耳生理具有重要作用。因此,本課題組選擇耳蝸邊緣細(xì)胞作為模擬電磁輻射研究的效應(yīng)細(xì)胞,探討1 800 MHz輻射頻率、輻射強(qiáng)度比吸收率(SAR)在2、4 w/kg模式下,邊緣細(xì)胞DAN的損傷、細(xì)胞凋亡情況及其可能的機(jī)制。
1.1材料來源 0~3 d SD大鼠的乳鼠(由重慶醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物中心提供),體質(zhì)量約為5 g,雌雄不限。所有動(dòng)物均按照標(biāo)準(zhǔn)化流程飼養(yǎng),并得到重慶醫(yī)科大學(xué)倫理委員會(huì)的批準(zhǔn)。
1.2邊緣細(xì)胞原代培養(yǎng)及鑒定 SD大鼠乳鼠通過乙醚麻醉后,75%乙醇的容器浸泡10 min,充分消毒斷頭;在解剖顯微鏡下用顯微鑷去除顳骨聽泡骨殼后,用顯微鑷分離出耳蝸外側(cè)壁的基底回,將血管紋組織完全剝離,0.1%Ⅱ型膠原酶溶解,置于37 ℃孵箱中30 min;取出后離心,棄上清液,用1 mL MEM基礎(chǔ)培養(yǎng)液與之輕輕吹打混勻后,將細(xì)胞懸液置入無菌6孔培養(yǎng)板,細(xì)胞在37 ℃、95%O2、5%CO2孵箱中培養(yǎng)24 h后可貼壁,倒置顯微鏡下可以觀察到邊緣細(xì)胞的典型形態(tài)。由于成纖維細(xì)胞貼壁較慢,隔天可用無菌磷酸鹽緩沖液(PBS)輕輕沖洗培養(yǎng)板底部能純化邊緣細(xì)胞。將純化后細(xì)胞懸液接種于盛有用多聚賴氨酸包被后的蓋玻片無菌6孔板,當(dāng)細(xì)胞單層生長(zhǎng)至蓋玻片的80%時(shí),用免疫熒光染色方法檢測(cè)細(xì)胞角蛋白18(CK18)在該細(xì)胞中的表達(dá)。棄培養(yǎng)基,PBS清洗,4%多聚甲醛固定,0.3% Triton X-100穿透,5% 牛血清清蛋白(BSA)封閉,100 μL一抗(1∶50 稀釋)4 ℃孵育過夜;加入100 μL二抗(1∶100),避光,孵箱中孵育30 min;DAPI工作液染色,抗熒光淬滅劑封片。
1.31 800 MHz輻射系統(tǒng) 該系統(tǒng)由4部分組成:高頻電磁發(fā)生器和頻帶放大器(購(gòu)自北京博倫銳科技公司)、計(jì)算機(jī)、放置于培養(yǎng)箱內(nèi)的兩個(gè)矩形電磁波導(dǎo)臺(tái)(放置35 mm細(xì)胞培養(yǎng)皿)。暴露程序所有數(shù)據(jù)均由計(jì)算機(jī)控制。可以隨機(jī)設(shè)置一個(gè)波導(dǎo)臺(tái)為暴露組,另一個(gè)波導(dǎo)臺(tái)自動(dòng)成為屏蔽組;也可以手動(dòng)設(shè)置暴露組。
1.4細(xì)胞暴露程序及分組 細(xì)胞暴露于1 800 MHz輻射系統(tǒng)下,SAR值選擇2、4 w/kg,時(shí)間是24 h,模式是開5 min,關(guān)10 min的手機(jī)通話模式。細(xì)胞分組:(1)對(duì)照組;(2)2 w/kg暴露組和屏蔽組;(3)4 w/kg暴露組和屏蔽組;(4)雙氧水陽性對(duì)照組。
1.5彗星實(shí)驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞DNA損傷 彗星實(shí)驗(yàn)是公認(rèn)的檢測(cè)單個(gè)細(xì)胞核損傷的技術(shù),具有較高的特異度和靈敏度[10],具體方法是棄去培養(yǎng)基,PBS清洗,胰酶消化,離心棄上清液。PBS重懸,細(xì)胞計(jì)數(shù)105/mL。彗星試劑盒(購(gòu)自美國(guó)Trebigen公司),低熔點(diǎn)瓊脂糖100 ℃融化后60 ℃水浴箱中備用。吸取10 μL細(xì)胞懸液加入60 μL瓊脂糖中反復(fù)吹打混勻,吸取含細(xì)胞懸液的瓊脂糖10 μL鋪板后在暗盒內(nèi)4 ℃冷卻30 min待膠凝固。將載玻片放置于4 ℃裂解液中裂解2 h,避光。將載玻片放置于電泳槽中,設(shè)置電壓25 V/300 mA,時(shí)間30 min。載玻片取出后蒸餾水清洗,75%、95%無水乙醇中分別脫水。載玻片4 ℃中干燥30 min。SYBR?Green 染色15 min。熒光顯微鏡拍照。CASP軟件分析。正常細(xì)胞無拖尾現(xiàn)象,而受損細(xì)胞的DNA表現(xiàn)為像彗星一樣的拖尾,細(xì)胞的頭部基本維持在原來的位置,尾部是損傷后從細(xì)胞核遷移的DNA片段,觀察DNA損傷的3個(gè)參數(shù):尾部DNA水平、尾力距和尾長(zhǎng)。
1.6流式細(xì)胞技術(shù)檢測(cè)電磁輻射對(duì)邊緣細(xì)胞凋亡水平的影響 將各組細(xì)胞分別重懸于200 μL 1×結(jié)合緩沖液中,控制細(xì)胞濃度在106~107個(gè)/毫升,并分別移入流式管中;每管加入5 μL的annexin V-FITC和10 μL的PI;避光,冰上孵育15 min;流式細(xì)胞儀上讀取每組10 000個(gè)細(xì)胞的凋亡率,計(jì)算出平均值。
1.7熒光酶標(biāo)儀檢測(cè)ROS的生成 以雙氧水為陽性對(duì)照。按照1∶1 000用無血清的DMEM/F12培養(yǎng)基稀釋DCFH-DA終濃度10 μmol/L。收集細(xì)胞后裝載探針。去除細(xì)胞培養(yǎng)液加入50 μL稀釋好DCFH-DA,37 ℃培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)20 min,以無血清培養(yǎng)基洗滌3次,每次5 min;收集細(xì)胞,在熒光酶標(biāo)儀中觀察細(xì)胞熒光值。激發(fā)波長(zhǎng)使用488 nm,發(fā)射波長(zhǎng)使用525 nm。
2.1邊緣細(xì)胞原代培養(yǎng)及鑒定 倒置相差顯微鏡下觀察原代培養(yǎng)的大鼠邊緣細(xì)胞。未純化前的邊緣細(xì)胞與長(zhǎng)梭形的成纖維細(xì)胞一起貼壁生長(zhǎng),邊緣細(xì)胞大小不一,呈多角形,細(xì)胞間境界清楚,顏色較暗。數(shù)個(gè)細(xì)胞生長(zhǎng)融合成單層時(shí)即呈典型的“鋪路石”特征。當(dāng)細(xì)胞堆積成多層時(shí)可形成“dome”結(jié)構(gòu)。應(yīng)用免疫熒光技術(shù)檢測(cè)邊緣細(xì)胞內(nèi)CK-18的表達(dá),可見CK-18在邊緣細(xì)胞的細(xì)胞質(zhì)內(nèi)高表達(dá),呈綠色熒光。
2.2彗星實(shí)驗(yàn) 隨機(jī)選擇200個(gè)細(xì)胞作為結(jié)果分析,細(xì)胞拍攝時(shí)一般選擇200倍。分析軟件采用CASP Lab。雙氧水作為陽性對(duì)照,細(xì)胞有明顯的拖尾現(xiàn)象,結(jié)果顯示手機(jī)電磁輻射能量不足以引起邊緣細(xì)胞DNA的損傷。DNA損傷的3個(gè)參數(shù)與陽性對(duì)照組比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見表1。
2.3流式細(xì)胞技術(shù)檢測(cè)電磁輻射對(duì)邊緣細(xì)胞凋亡的影響 流式細(xì)胞檢測(cè)結(jié)果顯示雙氧水陽性對(duì)照組邊緣細(xì)胞凋亡率與對(duì)照組相比顯著升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);其余各組同對(duì)照組邊緣細(xì)胞相比,凋亡細(xì)胞無明顯變化(P>0.05),說明電磁輻射不會(huì)引起邊緣細(xì)胞凋亡率增加。見表2。
2.4電磁輻射對(duì)細(xì)胞ROS生成的影響 本實(shí)驗(yàn)采用DCFH-DA試劑盒檢測(cè)暴露于電磁輻射后細(xì)胞內(nèi)ROS變化情況,以雙氧水作為陽性對(duì)照。發(fā)現(xiàn)在4 w/kg輻射后ROS生成量和對(duì)照組相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見表2。說明4 w/kg輻射強(qiáng)度下ROS生成量顯著增加。
表1 各組彗星實(shí)驗(yàn)參數(shù)數(shù)值
表2 細(xì)胞凋亡率和ROS生成量在各組中的表達(dá)情況
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05
離體和活體研究中已經(jīng)證實(shí)ROS的激活是手機(jī)電磁輻射產(chǎn)生生物學(xué)效應(yīng)的主要機(jī)制,過量產(chǎn)生的活性氧可以引起細(xì)胞不同程度的氧化應(yīng)激損傷[11]。耳蝸是保持著較高有氧代謝的器官,在產(chǎn)生ATP供應(yīng)能量的同時(shí)也能產(chǎn)生出大量ROS,因此極易遭到ROS的氧化攻擊。維持穩(wěn)定的耳蝸微電位對(duì)正常的聽力至關(guān)重要,而耳蝸微電位的維持則主要取決于耳蝸外側(cè)壁組織的泵機(jī)制。血管紋是位于耳蝸外側(cè)壁的重要組織結(jié)構(gòu),它是由3類細(xì)胞構(gòu)成的特殊的含毛細(xì)血管的復(fù)層上皮,最外層是邊緣細(xì)胞,中間層是中間細(xì)胞,最內(nèi)層是基底細(xì)胞。而其中的邊緣細(xì)胞鄰近內(nèi)淋巴腔,其細(xì)胞膜上具有Na+-K+-ATP酶以及Na+/K+通道,對(duì)維持內(nèi)淋巴液離子環(huán)境以及耳蝸微電位具有重要意義[12]。一旦邊緣細(xì)胞受到ROS 的損害,會(huì)影響到內(nèi)耳的能量供應(yīng)。
本研究初期僅僅采用離體的短期暴露的方式研究手機(jī)電磁輻射對(duì)耳蝸邊緣細(xì)胞的影響,但手機(jī)電磁輻射對(duì)聽力系統(tǒng)的長(zhǎng)期影響仍需要在活體研究中進(jìn)一步證實(shí)。本研究中采用的手機(jī)通話模式,即開5 min關(guān)10 min暴露模式能更好地探討手機(jī)電磁輻射的生物學(xué)效應(yīng),更能模擬手機(jī)電磁輻射對(duì)人體的影響。手機(jī)對(duì)SAR有明確的限制規(guī)定,各個(gè)國(guó)家規(guī)定和標(biāo)準(zhǔn)有所不同,但手機(jī)在接通瞬間或者信號(hào)不足的情況下輻射強(qiáng)度會(huì)較平常顯著增大,4 w/kg常常被用來作為電磁輻射熱效應(yīng)的研究,因此本課題組采用的2、4 w/kg輻射強(qiáng)度是合理的。本研究發(fā)現(xiàn)1 800 MHz手機(jī)電磁輻射不足以引起耳蝸邊緣細(xì)胞DNA的直接損傷,因?yàn)殡姶泡椛涞哪芰窟h(yuǎn)較電離輻射弱,但通過熒光探針發(fā)現(xiàn)了4 w/kg輻射強(qiáng)度下有ROS的激活,證實(shí)了ROS的激活是手機(jī)電磁輻射產(chǎn)生生物學(xué)效應(yīng)的主要機(jī)制,但生成的過量的ROS不足以引起邊緣細(xì)胞凋亡的增加和細(xì)胞DNA的損傷,認(rèn)為ROS盡管增加明顯,但尚在代償范圍之內(nèi);連續(xù)暴露于電磁輻射下,ROS的生成量會(huì)逐漸增加,超過細(xì)胞和組織的代償能力后即會(huì)出現(xiàn)損傷。有研究認(rèn)為手機(jī)輻射產(chǎn)生的過量的ROS可以引起細(xì)胞DNA損傷,Ca2+通道激活,以及熱休克蛋白表達(dá)增加,但在本研究中未發(fā)現(xiàn)明顯的損傷,考慮不同組織和細(xì)胞對(duì)電磁輻射有不同的敏感性[13-14]。本課題組擬進(jìn)一步通過動(dòng)物模型驗(yàn)證手機(jī)電磁輻射的長(zhǎng)期累積效應(yīng)。
[1]VECCHIA P.Exposure of humans to electromagnetic fields.Standards and regulations[J].Ann Ist Super Sanita,2007,43(3):260-267.
[2]AGARWAL A,DESAI N R,MAKKER K,et al.Effects of radiofrequency electromagnetic waves (RF-EMW) from cellular phones on human ejaculated semen:an in vitro pilot study[J].Fertil Steril,2009,92(4):1318-1325.
[3]SALFORD L G,BRUN A E,EBERHARDT J L,et al.Nerve cell damage in mammalian brain after exposure to microwaves from GSM Mobile phones[J].Environ Health Perspect,2003,111(7):881-883.
[4]HARDELL L,CARLBERG M,HANSSON MILD K.Use of Mobile phones and cordless phones is associated with increased risk for glioma and acoustic neuroma[J].Pathophysiology,2013,20(2):85-110.
[5]GALLONI P,LOVISOLO G A,MANCINI S,et al.Effects of 900 MHz electromagnetic fields exposure on cochlear cells' functionality in rats:evaluation of distortion product otoacoustic emissions[J].Bioelectromagnetics,2005,26(7):536-547.
[6]SECKINE,SURENBASARF,ATMACAS,etal.TheeffectofradiofrequencyradiationgeneratedbyaGlobalSystemforMobileCommunicationssource
on cochlear development in a rat model[J].J Laryngol Otol,2014,128(5):400-405.
[7]ZUO W Q,HU Y J,YANG Y,et al.Sensitivity of spiral ganglion neurons to damage caused by Mobile phone electromagnetic radiation will increase in lipopolysaccharide-induced inflammation in vitro model[J].J Neuroinflammation,2015,12(1):1-13.
[8]HUANG T Q,LEE M S,OH E H,et al.Characterization of biological effect of 1763 MHz radiofrequency exposure on auditory hair cells[J].Int J Radiat Biol,2008,84(11):909-915.
[9]KESARI K K,KUMAR S,NIRALA J,et al.Biophysical evaluation of radiofrequency electromagnetic field effects on male reproductive pattern[J].Cell Biochem Biophys,2013,65(2):85-96.
[10]NERI M,MILAZZO D,UGOLINI D,et al.Worldwide interest in the comet assay:a bibliometric study[J].Mutagenesis,2015,30(1):155-163.
[11]FRIEDMAN J,KRAUS S,HAUPTMAN Y,et al.Mechanism of short-term ERK activation by electromagnetic fields at Mobile phone frequencies[J].Biochem J,2007,405(3):559-568.
[12]GABAIZADEH R,STAECKER H,LIU W,et al.BDNF protection of auditory neurons from cisplatin involves changes in intracellular levels of both reactive Oxygen species and glutathione[J].Brain Res Mol Brain Res,1997,50(1/2):71-78.
[13]AVCI B,AKAR A,BILGICI B,et al.Oxidative stress induced by 1.8 GHz radio frequency electromagnetic radiation and effects of garlic extract in rats[J].Int J Radiat Biol,2012,88(11):799-805.
[14]DEMIREL S,DOGANAY S,TURKOZ Y,et al.Effects of third generation mobile phone-emitted electromagnetic radiation on oxidative stress parameters in eye tissue and blood of rats[J].Cutan Ocul Toxicol,2012,31(2):89-94.