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    基于SCoT標記的陜西茶樹種質資源遺傳多樣性分析

    2018-03-06 05:19:49席彥軍吳軍艦郭明星李秀峰
    西北農(nóng)業(yè)學報 2018年2期
    關鍵詞:條帶茶樹種質

    王 令,李 佼,席彥軍,吳軍艦,郭明星,李秀峰,張 羽

    (1.陜西理工大學 生物科學與工程學院,陜西漢中 723000;2.陜西省漢中市農(nóng)業(yè)科學研究所,陜西漢中 723000)

    茶樹[Camelliasinensis(L.) O. Kuntze]屬山茶科(Theaceae)山茶屬(CamelliaL.),起源于中國西南地區(qū),作為重要的經(jīng)濟作物,其已有3 000多年的栽培歷史[1]。茶樹種質資源是茶樹遺傳改良、種質創(chuàng)新等工作的物質基礎,開展茶樹種質資源遺傳研究,對收集利用優(yōu)異茶樹種質資源和促進茶葉科技創(chuàng)新具有重要意義[2]。陜西茶區(qū)毗鄰古茶樹發(fā)源地四川,歷經(jīng)千年的自然演化和人工栽培,擁有豐富的茶樹種質資源,根據(jù)20世紀80年代的資源調查結果,陜西茶樹地方品種大體分為7大群體和28個品種[3]。但早期分類主要依據(jù)地域、栽培歷史和茶樹形態(tài)等宏觀指標,缺乏生理生化和分子遺傳等微觀水平研究,利用分子標記技術深入了解地方茶樹遺傳背景和親緣關系,為茶樹分類和種質創(chuàng)新等研究提供技術支撐。

    SCoT(start codon targeted polymorphism)分子標記是根據(jù)植物基因中的起始密碼子(ATG)側翼序列具有較高保守特性,設計單引物對基因組進行擴增,產(chǎn)生偏向候選功能基因區(qū)的顯性多態(tài)性標記。該技術具有操作簡便、多態(tài)信息豐富、成本低廉、引物通用性廣等諸多優(yōu)點,已在油菜、柑橘、西瓜和柿等多種植物中建立了PCR體系并成功開展遺傳研究[4-8]。陳熙等[9]首次利用SCoT標記分析了部分陜西茶樹遺傳背景,但未對SCoT-PCR體系做優(yōu)化試驗。本研究通過優(yōu)化SCoT-PCR體系,建立茶樹SCoT標記技術,并分析‘陜茶一號’及其他陜西地方群體茶樹材料的遺傳背景和親緣關系,為茶樹資源遺傳多樣性研究奠定基礎。

    1 材料與方法

    1.1 材 料

    供試茶樹品種為‘陜茶一號’。其余21份茶樹品種來自本地群體種資源圃(表1)。供試材料取自陜西省漢中市農(nóng)業(yè)科學研究所茶葉綜合試驗站,選取無病蟲害、幼嫩的茶樹1芽1葉,-80 ℃保存。

    試驗所用SCoT引物由北京奧科生物公司合成,TaqDNA聚合酶和DNA提取試劑盒購于大連寶生物工程有限公司。

    1.2 DNA提取與檢測

    采用DNA提取試劑盒提取茶葉DNA,加TE緩沖液保存。用紫外分光光度計檢測DNA純度和質量濃度,稀釋至50 ng/μL。采用8 g/L的瓊脂糖凝膠檢測茶葉基因組DNA。

    表1 本研究所用試驗材料Table 1 Materials used in this study

    1.3 SCoT反應體系的優(yōu)化

    1.3.1 正交試驗設計 體系優(yōu)化試驗以‘陜茶一號’茶樹DNA為模板,SCoT25為擴增引物,采用L16(45)正交試驗設計,對反應體系中的Mg2+、dNTPs、引物、Taq酶和DNA 模板5個影響因素分別設置4個水平共16 個組合(表2),重復3次,總反應體系為20 μL。擴增反應程序:94 ℃預變性3 min;35個循環(huán)( 94 ℃變性30 s,50 ℃退火30 s,72 ℃延伸2 min);72 ℃延伸10 min,4 ℃保存。擴增產(chǎn)物用15 g/L瓊脂糖凝膠電泳檢測。

    1.3.2 單因素試驗 在正交試驗結果基礎上,以直觀分析的最佳水平為標準,分別對20 μL反應體系中Mg2+、dNTPs、引物、Taq酶和DNA 模板5個因素進行單因素分析試驗,濃度水平梯度同正交試驗。

    1.4 對22份茶樹材料的PCR擴增

    應用優(yōu)化的SCoT-PCR 反應體系,選取22條SCoT引物對茶樹材料進行擴增。擴增產(chǎn)物用8%的非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳檢測,銀染法顯色并統(tǒng)計條帶。

    1.5 數(shù)據(jù)統(tǒng)計與處理

    每條引物檢測到的每條多態(tài)性帶視為1個等位變異,將電泳圖有帶賦值為“1”,無帶賦值為“0”。利用NTSYS-pc2.10e系統(tǒng)軟件中DICE法計算遺傳相似系數(shù),用UPGMA進行聚類分析。

    2 結果與分析

    2.1 PCR體系優(yōu)化

    2.1.1 正交試驗結果 SCoT-PCR擴增結果顯示16個組合的條帶數(shù)量和清晰度差異很大(圖1)。其中組合11和12擴增的條帶數(shù)最多,且清晰度高。參考韓國輝等[10]的方法對擴增的條帶進行分析,即根據(jù)電泳條帶的多少及清晰度對16個組合從1~16進行打分,結合評分做直觀分析。直觀分析的極差R值反映該因素對試驗結果影響的程度,R越大說明該因素對試驗結果影響越大。由表3可知,茶樹SCoT-PCR 反應體系中各因素的影響依次為Mg2+>Taq酶>dNTPs>DNA>引物。根據(jù)直觀分析中各因素不同水平的均值(K)大小,表明各因素單一 最 佳 水 平 分 別 為Mg2+2.5 mmol/L,Taq酶0.75 U,dNTPs 0.25 mmol/L,DNA 30 ng,引物0.8 μmol/L。

    表2 茶樹SCoT-PCR L16(45)正交試驗設計Table 2 L16(45)orthogonal design for SCoT-PCR system in tea

    M.Marker DL 2000 ; 1~16.16個正交試驗設計組合擴增結果 The PCR result of L16(45) orthogonal design products

    水平LevelDNA/(ng)Mg2+/(mmol/L)dNTPs/(mmol/L)引物/(μmol/L)PrimerTaq酶/UTaqenzymeK16.754.0010.758.005.50K210.757.2510.507.757.75K39.7512.007.2510.0011.00K46.7510.755.508.259.75R4.008.005.252.255.50

    2.1.2 單因素試驗結果 影響茶樹SCoT-PCR擴增最大的因素是 Mg2+,Mg2+濃度太低會降低Taq酶的活性,減少擴增條帶,太高則會增加非特異性擴增[11],從圖2中5~8泳道看出,Mg2+濃度為1.5 mmol/L時,條帶非常少,當濃度提高到2.5 mmol/L時,擴增質量最佳。

    PCR 反應中DNA模板濃度過低可能導致條帶太弱甚至無條帶,過多則會增加非特異性擴增。由圖2中1~4泳道看出,4個模板用量都能擴增出豐富的譜帶,其中30 ng擴增效果最好,與正交試驗的結果相吻合。

    dNTPs濃度對PCR反應影響較大,由圖2可知,隨著濃度的增加,擴增條帶逐漸減少,說明高濃度的dNTPs 不利于擴增,故選擇0.25 mmol/L為dNTPs 的最佳濃度。

    引物4個水平的濃度均可以擴增出清晰的條帶,但是高濃度的引物會提高引物二聚體形成機率,引起非特異性擴增,故選擇濃度低且條帶最清晰的0.7 μmol/L水平為最適濃度。

    從圖2看出,隨著TaqDNA 聚合酶用量的增大,條帶亮度提高且更加清晰,0.75 U和1.0 U擴增條帶亮度基本一致,從經(jīng)濟角度考慮,選擇0.75 U為最佳Taq酶用量。

    在正交設計試驗的基礎上,綜合單因素試驗結果,最終確定茶樹SCoT-PCR總體積為20 μL時,最佳體系為Mg2+2.5 mmol/L,Taq酶0.75 U,引物0.7 μmol/L,dNTPs 0.25 mmol/L,DNA 30 ng。

    2.2 22個茶樹材料的SCoT 分析

    2.2.1 SCoT 標記的等位變異數(shù)和擴增片段多態(tài)性 應用優(yōu)化的SCoT-PCR體系對‘陜茶1號’及21個陜西本地群體種質材料進行PCR擴增和電泳檢測,結果表明擴增條帶多且清晰。統(tǒng)計分析結果如表4所示,22條引物在22個材料中共檢測出241個等位位點,其中多態(tài)性位點228個,多態(tài)性比率為94.6%,平均每個引物可擴增11個條帶,引物SCoT 18擴增出最多的23個條帶(圖3)。SCoT位點的PIC值變化在0.57~0.92間,都為高度多態(tài)基因座。

    1~4.DNA模板用量為20 ng、30 ng、40 ng、50 ng 1-4 DNA template 20 ng,30 ng,40 ng,50 ng;5~8.Mg2+濃度為1.5、2.0、2.5、3.0 mmol/L Mg2+concentration 1.5、2.0、2.5、3.0 mmol/L;9~12.dNTPs濃度為0.25、0.3、0.35、0.4 mmol/L dNTPs concentration 0.25,0.3,0.35,0.4 mmol/L;13~16.引物濃度為0.6、0.7、0.8、0.9 μmol/L Primer concentration 0.6、0.7、0.8、0.9 μmol/L;17~20.Taq聚合酶0.25、0.5、0.75、1.0 UTaq0.25、0.5、0.75、1.0 U

    圖2 單一因素不同濃度對SCoT-PCR反應的影響Fig.2 Effect of single parameter with different concentrations on SCoT-PCR reaction

    M.Marker DL 2000; 1~22.22個材料的PCR擴增結果 PCR results of 22 different materials as templates

    2.2.2 供試材料間的遺傳相似系數(shù) 基于22條SCoT引物擴增結果,利用NTSYS-pc 2.10e軟件的DICE法計算遺傳相似系數(shù)。如圖4所示,22個材料間的相似系數(shù)為0.58~0.89,平均相似系數(shù)0.72。其中‘X14-2’和‘X13-1’間的相似系數(shù)最小,‘N13-8’和‘M2’間的相似系數(shù)最大,達到0.89。

    2.2.3 聚類分析 用UPGMA構建22個茶樹材料的聚類圖(圖5)。結果顯示在相似系數(shù)0.67處,‘X14-2’單獨聚為一組,其余21份材料在相似系數(shù)0.69處分成3類。第1類包括‘Z14-3’‘陜茶1號’和‘N14-3’等3個材料。第2類包括‘Z14-25’‘B11-5’和‘B13-6’等16個材料。第3類包括‘X13-1’和‘X13-11’2個材料。聚類結果與品種所在茶區(qū)地理分布無明顯規(guī)律。

    圖4 供試材料間遺傳相似系數(shù)的頻率分布Fig.4 Distribution of genetic similarity between materials

    圖5 22份茶樹材料的SCoT標記聚類分析圖Fig.5 Dendrogram of 22 tea materials based on SCoT markers

    3 討 論

    SCoT 標記具有引物通用性廣、能有效產(chǎn)生和性狀連鎖的標記、操作簡便、穩(wěn)定性好、多態(tài)性高、方便分子標記輔助育種等優(yōu)點,因而在茶樹遺傳研究中有極大的潛力和良好的應用前景[12-13]。由于該技術是基于PCR的標記,其結果易受反應體系的影響,在使用前需要對SCoT-PCR體系進行優(yōu)化[14]。利用正交試驗設計進行PCR優(yōu)化能夠綜合考察各因素交互作用,快速得到理想結果,減少工作量,被大多數(shù)體系優(yōu)化試驗所采用[15-17]。本研究結合正交試驗和單因素試驗對反應體系中的5個因素濃度進行優(yōu)化,建立了茶樹SCoT-PCR體系。與牡丹、薺菜、草莓等材料的已有研究一致,其中,Mg2+濃度對反應體系的影響最大,但各因素濃度都略有差異,說明使用SCoT時應先優(yōu)化體系,以達到理想的擴增結果[18-19]。

    本研究利用SCoT 標記分析了22份來自陜西不同茶區(qū)的茶樹材料,22條引物共檢測出241個等位位點,多態(tài)性位點為228個,多態(tài)性比率為94.6%,其中15條引物的多態(tài)性比率為100%, 22份材料的相似系數(shù)為0.58~0.89,反映出所選材料遺傳多樣性豐富,陜西漢中地區(qū)群體種遺傳背景較寬,是開展茶樹系統(tǒng)選育的資源寶庫。同時也表明,優(yōu)化的SCoT 標記能夠有效地應用于茶樹遺傳多樣性分析。

    親緣關系分析是開展遺傳改良和種質創(chuàng)新的基礎。SCoT標記具有高多態(tài)性并能夠跟蹤性狀,是直接與性狀相關聯(lián)的分子標記,能夠用于物種親緣關系分析,揭示種質的遺傳背景。陳虎等[20]利用SCoT標記聚類多個龍眼品種,結果說明SCoT標記數(shù)據(jù)在一定程度上反映品種的地理分布情況。趙夢然等[21]對新疆野生白靈菇聚類分析,其結果也與地理分布大體一致。本研究聚類分析結果表明,茶樹材料之間并沒有按照地理聚類,這是由于材料所處的幾個茶區(qū)距離上相對較近,茶區(qū)間相互引種,茶樹種質交流較頻繁所致。玄參品種的遺傳分析結果也存在不以地理距離聚類的情況[22]。陜西茶樹種質資源的類型劃分目前沿用20世紀80年代的調查結果,根據(jù)群體種茶樹地理分布、葉片大小和葉型分為7大群體28個品種[3]。本研究獲得的聚類結果說明單純根據(jù)地理分布不能準確劃分茶樹品種,進一步結合材料葉型特征分析發(fā)現(xiàn),聚類在一起的材料其葉片大小、葉形亦有一定差別,而來源相同且大小、葉形相似的材料也未聚在一處。其中,聚類結果與葉片特征有一定相關性,如都具有葉面平、葉緣微波、葉身稍內(nèi)折特征的‘X14-7’和‘X14-34’2個材料聚在一起;同樣葉面平、葉緣微波的‘X13-22’‘B12-2’‘N13-3’和‘Z14 -21’聚類在一起;而葉面微隆的‘N13-15’與‘B11-8’、‘X13-1’與‘X13-11’、‘X13-10-3’與‘B12-4’兩兩聚在一起。這表明基于SCoT標記的聚類可能與茶樹葉片形態(tài)有很大的相關性。但本研究中由于材料樣本較少,尚未完全涵蓋所有群體品種,利用SCoT標記對陜西茶樹群體種分類還需后續(xù)更多試驗深入研究。

    分子標記分析茶樹親緣關系的新手段可以補充完善傳統(tǒng)的茶樹種群劃分,對研究茶樹現(xiàn)有群體品種有很大的幫助,為開展茶樹系統(tǒng)選種和雜交育種奠定良好的理論基礎。

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