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    一種重組角質(zhì)細胞生長因子-1的純化工藝研究

    2018-03-01 11:58:23郝東史瑾王維鄧晗王俊楊曉琳趙金禮
    生物化工 2018年1期
    關鍵詞:電導層析電泳

    郝東,史瑾,王維,鄧晗,王俊,楊曉琳,趙金禮

    (陜西慧康生物科技有限責任公司,陜西西安 710054)

    角質(zhì)細胞生長因子(KGF-1)是成纖維母細胞生長因子家族(FGFs)的一員,又名成纖維細胞生長因子7(FGF-7)[1],最早由Rubin等在胚胎肺成纖維細胞的培養(yǎng)上清中發(fā)現(xiàn)[2],其特異性受體FGFR2Ⅲb僅表達于各種上皮細胞,所以KGF-1僅特異作用于上皮細胞。這一特性使得KGF-1蛋白藥物在給藥時定向性更好,同時也更加安全。KGF-1不由上皮表達,在胚胎中可被多種基質(zhì)細胞表達,對原腸等多種上皮組織的形成起重要作用[3]。該因子通過旁分泌的形式發(fā)揮其生理學作用[4],在皮膚創(chuàng)傷愈合中起重要生理病理學作用[5]。

    本研究以本公司畢赤酵母表達KGF-1發(fā)酵液為原料,純化得到純度大于90%的KGF-1,可用于進一步工業(yè)化研究。

    1 材料和方法

    1.1 儀器

    遼陽陽光三足式離心機(SSC600-NG)、0.22 μm除菌濾器、天津膜天膜中空纖維膜組件、武漢新力協(xié)力超濾膜組件、AKTA purifiers 100、北京六一電泳儀、日立HPLC 、C8層析柱(中科院大連化學物理研究所)。

    1.2 試劑

    十二水合磷酸氫二鈉、二水合磷酸二氫鈉、氯化鈉、氫氧化鈉、鹽酸以及電泳相關試劑,均為國產(chǎn)分析純;去離子水;超純水;乙腈及三氟乙酸均為色譜純;SP Bio-sep FF(保賽恒成生產(chǎn),批號:20170327)。對照品LYZ:Sigma Lysozme hunman(L1667)。

    1.3 材料

    陜西慧康生物科技有限責任公司20170817批KGF-1發(fā)酵液。

    1.4 KGF-1分離

    發(fā)酵液經(jīng)沉降式離心機2 000 r/min離心60 min進行固液分離;收集上清,經(jīng)0.22 μm中空纖維膜過濾系統(tǒng),去除殘余菌體、細胞碎片以及部分雜質(zhì);收集0.22 μm濾出液用3 k卷式超濾膜超濾濃縮脫鹽。

    1.5 KGF-1陽離子交換層析提純

    (1)樣品處理。最終收集收集的濃縮液中加入0.1 mol/L氫氧化鈉溶液,調(diào)節(jié)pH 6.0~6.5,電導1.5~2.0 mS/cm,配成上樣溶液備用。

    (2)SPFF陽離子交換層析純化一。配制流動相A:pH 6.5的10 mmol/L磷酸鹽緩沖液,pH 6.5~ 7.0,電導 1.5~ 2.0 mS/cm;流動相B:pH 6.5的10 mmol/L磷酸鹽緩沖液、1mol/L NaCl,pH6.5~7.0。將(1)中的KGF-1樣品上SPFF層析柱,樣品上樣完成后,用A相平衡,100% B相洗脫為雜質(zhì),上樣穿柱液為KGF-1。

    (3)SPFF陽離子交換層析純化二。配制流動相A:pH5.0的20 mmol/L乙酸-乙酸鈉緩沖液,pH 4.8~5.3,電導0.8~1.3 mS/cm;流動相B:pH 5.0的20 mmol/L乙酸-乙酸鈉緩沖液,1 mol/L NaCl,pH 4.8~5.3;將(2)中的穿柱液加冰乙酸調(diào)節(jié)pH 4.8~5.3,電導0.8~1.3 mS/cm上SPFF層析柱,樣品上樣完成后,用A相平衡,8%B相洗脫為雜質(zhì),15%B相洗脫為KGF-1。

    1.6 Tricine-SDS-PAGE電泳檢測

    KGF-1分子量為18.9 kD,故采用15%的分離膠分別對粗純樣品以及離子交換層析樣品進行分析檢測,先40 V電壓60 min,再120 V電壓150 min。電泳完成后用固定液固定30 min,再用R250染色30 min,最后用脫色液脫色。

    1.7 HPLC對KGF-1純度分析

    采用HPLC對純化后KGF-1進行純度分析,色譜柱為C8柱,流動相A為超純水+0.1%TFA;B相為已腈+0.1%TFA,色譜分析程序為20%B→50%B 30 min。檢測波長為215 nm。

    2 結果與分析

    2.1 KGF-1分離

    KGF-1發(fā)酵液先進行離心固液分離,去除酵母細胞以及不溶性雜質(zhì),再過0.2 μm中空纖維膜過濾系統(tǒng),進一步去除殘余菌體、細胞碎片以及部分大分子物質(zhì)等,最后用3 k卷式超濾膜超濾濃縮脫鹽出去部分小分子物質(zhì)。各部純化效果良好,除0.22 μm過濾截留端有微量損失外,其余過程基本無明顯損失,粗純的結果良好,結果如圖1所示。

    圖1 KGF-1粗純電泳圖譜

    2.2 陽離子交換層析提純

    將3 k脫鹽濃縮后的KGF-1加入0.1 mol/L氫氧化鈉溶液,調(diào)節(jié)pH 6.0~6.5,電導1.5~2.0 mS/cm,經(jīng)由SPFF陽離子交換收集穿柱樣品,掛柱洗脫雜質(zhì),洗脫曲線如圖2所示,電泳結果如圖3所示。

    圖2 陽離子交換層析一次洗脫曲線

    圖3 KGF-1一次精純電泳圖譜

    2.3 陽離子交換層析深度純化

    將一次精純的穿柱樣品中加入冰乙酸,調(diào)節(jié)pH 4.8~5.3,電導0.8~1.3 mS/cm,上SPFF陽離子交換層析柱,8%B相洗雜后,15%B相洗脫KGF-1,經(jīng)電泳檢測分離得到的KGF-1分子量約為18.4 kD,洗脫曲線如圖4所示,電泳結果如圖5所示。

    圖4 陽離子交換層析二次洗脫曲線

    圖5 KGF-1二次精純電泳圖譜

    2.4 HPLC純度分析

    高效液相色譜分析表明,純化后KGF-1出峰時間為17.67 min。采用面積歸一法計算峰面積,得到KGF-1產(chǎn)品純度91.9%,KGF-1產(chǎn)品檢測色譜圖如圖6所示。

    圖6 純化后KGF-1 HPLC圖譜

    3 結論

    本方法采用傳統(tǒng)的固液分離技術、過濾技術以及超濾技術得到KGF-1粗品,經(jīng)兩步陽離子交換層析得到純度為91.9%的KGF-1產(chǎn)品。目前國內(nèi)外對于KGF-1的研究較少,且大部分集中在對提高KGF-1的表達量的研究,而對KGF-1分離純化方面的研究鮮有報道,本工作初步建立了一種以超濾過濾技術粗純,陽離子交換層析技術精純的KGF-1高純度分離純化工藝,工藝進一步優(yōu)化后,有望進行高純度大規(guī)模的生產(chǎn)。

    [1]宗憲磊,蔡景龍,姜篤銀,等.角質(zhì)細胞生長因子研究進展[J].中國修復重建外科雜志,2009(2):188-193.

    [2]Rubin J S,Osada H,Finch P W.Purificatin and Characterization of a Newly Identified Growth Factor Specific for Epithelial Cells[J].Pro Natl Acad Sci USA,1989,86,(3):802-806.

    [3]Marti G,Ferguson M,Wang J,et al.Electroporative Transfection with KGF-1 DNA Improves Wound Healing in a Diabetic Mouse Model[J].Gene Therapy,2004,11(24):1780-1785.

    [4]金萍,李玉新,麻彤輝,等.角質(zhì)細胞生長因子的研究進展[J].生物工程進展,2001,21(6):34-37.

    [5]Waldeck H,Chung A S,Kao W J.Interpenetrating Polymer Networks Containing Gelatin Modified with PEGy Lated RGD and Soluble KGF: Synthesis,Characterization,and application in in vivo critical dermal wound[J].Journal of biomedical materials research,2007,82(4):861-871.

    [6]周昭,范清林,宋禮華.重組人KGF-1蛋白的表達、純化及活性研究[J].生物學雜志,2016,33(1):13-16.

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