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    基于競爭性等位基因特異性PCR技術(shù)對啤酒花進行純度檢測

    2018-02-28 10:05:59蔣培基王德良江偉宋濤李濤蒲彪欒春光
    食品與發(fā)酵工業(yè) 2018年1期
    關(guān)鍵詞:酒花啤酒花基因型

    蔣培基,王德良,江偉,宋濤,李濤,蒲彪,欒春光*

    1(四川農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品學(xué)院,四川 雅安,625014) 2(中國食品發(fā)酵工業(yè)研究院,北京,100015)

    啤酒花,桑科草屬多年生攀援草本植物,雌雄異株,是除大麥之外啤酒釀造的主要原料之一,被稱之為“啤酒之魂”、“綠色黃金”[1]。其主要功能成分是酒花樹脂、酒花油和多酚物質(zhì)。這些物質(zhì)賦予啤酒以特有的苦味與香味[2]。此外,酒花樹脂還具有防腐的能力,可以延長啤酒的保質(zhì)期,而多酚物質(zhì)中的單寧則具有澄清麥汁的作用[3]。

    2014年,全球的酒花產(chǎn)量在96 000 t左右[4],其中國產(chǎn)啤酒花產(chǎn)量達到了12 500 t,占到了13%[5]。我國的啤酒花主要分布在甘肅、新疆兩省,甘肅種植面積最大,且甘肅省河西走廊的暖溫帶干旱氣候有助于優(yōu)良啤酒花的培育。啤酒花的品種以及添加工藝的不同會使啤酒形成不同的苦味與風(fēng)味特征[6],例如Chinook和Cascade酒花能夠賦予啤酒樹脂和柑橘類水果風(fēng)味[7]。此外,啤酒花品種對啤酒的質(zhì)量也會產(chǎn)生影響,聶聰[8]等人的研究表明,香型酒花的品種是決定啤酒香味質(zhì)量的關(guān)鍵,在釀造過程中應(yīng)多用苦香兼優(yōu)型、香型和免煮沸酒花制品。

    盡管人們已經(jīng)認識到酒花品種對啤酒質(zhì)量起著重要作用,但一直以來,酒花的品種鑒定是一個難題。這主要是因為啤酒花品種鑒別通常使用傳統(tǒng)方法,即從形態(tài)上加以區(qū)別,包括啤酒花的顏色、形態(tài)及主要成分[9]。但由于市場需求和工藝的改進,供應(yīng)商提供的酒花都是經(jīng)過粉碎后制成的顆粒酒花制品,無法使用傳統(tǒng)的方法加以鑒別。為此分子水平的鑒定方法,例如種子貯藏蛋白或同工酶電泳等經(jīng)典的物種鑒定方法被開發(fā)出來。但以上方法無法滿足物種鑒定所需的效率和精確度[10]。而基于第一、二代DNA分子標記技術(shù)建立起來的鑒定方法,比如限制性片段長度多態(tài)性(restrictionfragment length polymorphism,RFLP)、隨機擴增片段長度多態(tài)性(amplified fragment length polymorphism,AFLP)[11-13]和微衛(wèi)星標記(simple sequence repeats,SSRS)[11,14-15]雖然相對于蛋白水平的鑒定具有一定優(yōu)勢,但這些方法都是基于核酸片段的多少和片段大小來完成物種的鑒別,因此對于親緣關(guān)系相近的兩個品種存在判斷上的誤差,且無法完成混雜或人為摻雜的樣品進行檢測。

    作為第3代DNA分子標記技術(shù)的SNP(單核苷酸多態(tài)性)的出現(xiàn)為酒花品種的定性和定量鑒定提供了更為可靠的手段。有研究表明,SNP將會是一種高效、準確的品種鑒定工具。PITRA[16]對178個酒花品種進行基因測序,分析后共獲得了17 128個SNP位點。HENNING[17]等對121個酒花品種進行測序后得到了1 006個SNP位點,最終確定了7個可以區(qū)分121個酒花品種的SNP位點。YAMAUCHI[18]通過對酒花品種轉(zhuǎn)錄組進行分析,最終得到能分開16個酒花品種的SNP組合。以上研究雖然在尋找可用于酒花品種鑒定的SNP組合的工作上取得了一些進步,但并沒有建立一套系統(tǒng)的、可靠的酒花品種鑒定方法。而且,以上研究中存在SNP真實性驗證的可靠性低、樣品代表性差以及無法對混合樣品定性定量測試等缺點。針對以上問題,本研究提出了一種利用最新的SNP分子標記技術(shù)與KASP基因分型檢測技術(shù)相結(jié)合[19],對混合的商業(yè)啤酒花顆粒進行純度檢測的技術(shù)。該技術(shù)可以滿足啤酒企業(yè)對原料的質(zhì)量監(jiān)測的要求,同時可為啤酒企業(yè)對原料質(zhì)量的把控提供有效的方法。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    馬可波羅、Saaz、Tradition、Magnum、Aurora、Galenq、Centinnia啤酒花樣品由中國食品發(fā)酵工業(yè)研究院收集。預(yù)混樣品是由Tradition啤酒花與Magnum啤酒花按照不同的質(zhì)量百分比進行混合,混合比例為0%、2%、5%、10%、20%、40%、50%、100%,并標記為T1~T8。某啤酒廠送檢的2份不同批次的Saaz商業(yè)啤酒花樣品,標記為樣品A與樣品B。

    Taq酶、dNTP、10×loading buffer購自大連寶生物技術(shù)有限公司;PCR引物合成由上海生工生物工程股份有限公司完成;KASP引物,上海艾吉析科技有限公司;Qiagen DNeasy Plant Mini Kit(50)植物基因組高效提取試劑盒購自德國凱杰生物公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    Veriti 96 Well Thermal Cycler、Qubit 3.0,北京Thermo Fisher Scientific有限公司;ABI7500實時熒光定量PCR儀,美國ABI公司。

    1.3 方法

    1.3.1 啤酒花基因組的提取

    稱取啤酒花樣品20 mg,加液氮研磨。研磨后的樣品轉(zhuǎn)移至2 mL effendorf管中,按QIAGEN DNeasy Plant Mini Kit(50)DNA提取試劑盒步驟提取啤酒花基因組DNA。利用0.8%瓊脂糖TAE凝膠電泳和Nanodrop核酸檢測儀對提取到的酒花樣品基因組進行檢測。

    1.3.2 SNP位點的篩選

    從DDBJ數(shù)據(jù)庫(http://www.ddbj.nig.ac.jp/)上查找并下載啤酒花基因組信息(登錄號:PRJDB3233)。同時,結(jié)合本研究測序的7個酒花樣品基因組信息(本實驗室前期研究結(jié)果,未發(fā)表)完成SNP位點的篩選。然后,使用premier 5.0軟件在SNP位點前后200 bp處設(shè)計引物,用來擴增對應(yīng)帶有SNP位點的DNA片段,引物由北京生工生物公司合成。PCR反應(yīng)體系為25 μL:包括10×loading buffer 2.5 μL;dNTP 2 μL;上游引物 1 μL;下游引物 1 μL;基因組DNA 1 μL;Taq酶 0.2 μL;ddH2O 17.3 μL。 PCR反應(yīng)條件:95 ℃ 5 min ;95 ℃變性30 s, 52~60 ℃退火30 s, 72 ℃延伸30 s, 35個循環(huán);72 ℃,7 min。擴增產(chǎn)物使用0.8%瓊脂糖TAE凝膠電泳檢測。PCR擴增產(chǎn)物的測序由北京生工生物完成,測序結(jié)果使用MegAlign軟件進行比對。篩選并統(tǒng)計多態(tài)性良好的SNP位點信息,以及7個啤酒花品種在位點上的基因型,用來建立區(qū)分圖。

    1.3.3 預(yù)混樣品的檢測

    根據(jù)篩選出來的SNP位點信息合成KASP引物。同時,提取T1~T8預(yù)混樣品的基因組DNA作為反應(yīng)模板,使用篩選得到的8個SNP位點的KASP引物在ABI7500實時定量PCR儀器上進行檢測。反應(yīng)體系為:DNA 1 μL ,2×master mix 5 μL, 雙蒸水 4 μL, primer mix 0.14 μL。KASP反應(yīng)條件按照使用說明進行設(shè)置,反應(yīng)條件的設(shè)置以及結(jié)果的讀取均在7500 Software v2.3.軟件上進行。

    1.3.4 實際樣品的真實性檢測

    分別稱取5 g的樣品A與樣品B,加液氮在研缽中充分研磨,分別將100 mg樣品轉(zhuǎn)移至2mL EP管中。基因組的提取參照1.3.1提取方法進行并檢測。此過程重復(fù)3次。樣品分別標記為A1、A2、A3與B1、B2、B3。根據(jù)路線區(qū)分圖選擇合適的SNP位點。利用相應(yīng)的KASP引物在ABI7500Real-time PCR儀器上進行檢測。檢測的條件以及結(jié)果的讀取均參照1.3.3進行。

    1.3.5 實際樣品的純度檢測

    本研究采用固定初始質(zhì)量比的方法對預(yù)混樣進行定量分析。根據(jù)真實性檢測結(jié)果,選取具有多態(tài)性檢測結(jié)果的SNP位點,以該位點2種不同基因的啤酒花標品DNA按照100%、95%、90%、80%、60%、40%、0%比例混合作為固定比例標準曲線。以提取的實際樣品基因組DNA為模板,用具有多態(tài)性的SNP位點對應(yīng)的KASP引物在ABI7500 Real-time PCR儀器上進行檢測,檢測的條件以及結(jié)果的讀取均參照1.3.3進行,結(jié)果重復(fù)讀取3次。統(tǒng)計結(jié)果中2種不同基因型的熒光信號值,通過SPSS軟件建立多元回歸方程,計算樣品純度。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 啤酒花DNA的提取

    研究中提取的啤酒花基因組經(jīng)0.8%瓊脂糖TAE凝膠電泳檢測后,條帶完整,沒有降解。且條帶大小處于所需目的片段范圍之內(nèi)。經(jīng)Qubit3.0定量檢測后,DNA質(zhì)量濃度均大于120 ng/μL,完全符合實驗所需的DNA濃度要求。

    2.2 SNP位點的篩選

    根據(jù)啤酒花基因組信息和生物信息學(xué)分析結(jié)果,共篩選出8個多態(tài)性較好的SNP位點。SNP位點所在片段的擴增使用的普通PCR引物見表1。篩選出來的多態(tài)性良好的SNP位點信息如表2所示(其中H07與H08位點位于同一擴增片段)。根據(jù)統(tǒng)計的不同啤酒花品種在SNP位點上的基因型,建立了7個啤酒花品種的SNP數(shù)據(jù)表(表3),同時建立區(qū)分路線圖(圖1)。

    表1 本研究使用的普通PCR引物

    表2 本研究所用的SNP標記

    表3 研究驗證并使用的啤酒花品種的SNP

    2.3 預(yù)混樣品的檢測

    通過以上8個SNP位點的檢測和篩選(結(jié)果見圖2),8個位點檢測結(jié)果都符合預(yù)混樣在位點的基因型,其中H03、H04、H06位點在T1~T8號預(yù)混樣品檢測過程中表現(xiàn)出良好的分型。從圖2可以看出,2%的預(yù)混樣在H03與H04號位點都被系統(tǒng)判定為雜合,在H06位點被系統(tǒng)判定為純合。因此,H06位點無法對2%以下的混合樣品進行正確的判斷。進一步的檢測結(jié)果表明,5%的預(yù)混樣品在3個SNP位點都被判定為雜合狀態(tài),說明該方法可以滿足對混雜比例>5%的啤酒花樣品進行檢測的要求。且圖中各比例混雜樣品的檢測結(jié)果是呈線性比例關(guān)系分布。

    圖1 七個品種基于SNP區(qū)分路線圖Fig.1 Seven species differentiate route map based on SNP

    圖2 T1~T8樣品在8個 SNP位點檢測結(jié)果Fig.2 Results of T1~T8 samples at eight SNP maker

    2.4 實際樣品的真實性檢測

    根據(jù)酒花品種區(qū)分路線圖可知, H05與H02位點可以用來對樣品A與樣品B進行區(qū)分鑒定。樣品A的檢測結(jié)果如圖3、圖4所示。結(jié)果表明,樣品A基因型檢測結(jié)果與Sazz完全符合,表明樣品A為純度很高的Saaz啤酒花,純度大于95%。樣品B的檢測結(jié)果如圖5、圖6所示,其中H05的基因型檢測結(jié)果與Sazz標準品一致,而H02位點出現(xiàn)了雜合狀態(tài),表明樣品B是含有一定比例的混雜樣品。

    圖3 H05位點樣品A基因型檢測結(jié)果Fig.3 The qualitative detection result of Sample A at H05

    圖4 H02位點樣品A基因型檢測結(jié)果Fig.4 The qualitative detection result of Sample A at H02

    圖5 H05位點樣品B基因型檢測結(jié)果Fig.5 The qualitative detection result of Sample B at H05

    圖6 H02位點樣品B基因型檢測結(jié)果Fig.6 The qualitative detection result of Sample B at H02

    2.5 實際樣品的純度檢測

    根據(jù)真實性檢測的結(jié)果確認H02位點可以被用于混雜樣品B的純度檢測。同時使用Sazz與Tradition啤酒花標準品按照100%、95%、90%、80%、60%、40%、0%的比例混合作標準曲線,結(jié)果如圖7所示。圖7中黑色圈中的樣品為樣品B的檢測結(jié)果,可見檢測結(jié)果重復(fù)性很好。標準曲線的熒光信號值見表4。樣品B的3次重復(fù)檢測熒光值見表5。通過表4的熒光值數(shù)據(jù)建立多元回歸方程,得到一次多項式:Saaz酒花所占比例Y=-0.736+0.464×A+0.669×B(A代表T基因型熒光值,B代表G基因型熒光值),R值為0.939,模型擬合度高。說明該模型能很好的對檢測樣品的純度進行分析,過原點(陰性對照)做3個重復(fù)檢測結(jié)果平均值做連線并與固定標準曲線相交,計算出交點的兩種基因型熒光值,帶入Y=-0.736+0.464×A+0.669×B中,得到最終測定結(jié)果為42.28%±2.5%。

    圖7 H02位點樣品B純度檢測結(jié)果Fig.7 The quantitative detection of Hop using H02 SNP marker

    表4 H02位點固定曲線兩種基因型熒光信號值

    Table 4 Two genotypes fluorescence signal values of fixed proportion curve at H02

    基因型熒光值100%95%90%80%60%40%0%T3.71±0.023.04±0.022.76±0.022.32±0.021.50±0.010.90±0.01-0.31±0.01G0.18±0.010.34±0.020.50±0.010.65±0.020.90±0.021.00±0.021.40±0.01

    表5 H02位點樣品B檢測結(jié)果兩種基因型熒光信號值

    3 結(jié)論

    本研究開發(fā)了一套基于SNP分型技術(shù)對商業(yè)啤酒花顆粒進行定性定量檢測的方法,并篩選出8個可以區(qū)分7個啤酒花品種的SNP位點。并利用篩選的8個SNP標記可以準確地對7種商業(yè)啤酒花顆粒進行定性檢測。同時,確定了以固定質(zhì)量比例的方式對啤酒花顆粒進行定量檢測的方法,并對企業(yè)送檢樣品進行了檢測。結(jié)果表明,Sazz酒花樣品A純度大于95%,樣品B純度為42.28%±2.5%。本方法的建立為商業(yè)啤酒花顆粒品種的定性和定量檢測提供了全新的檢測方法。目前,關(guān)于啤酒花真實性檢測的報道還很少,且大多數(shù)的研究僅限于理論上利用SNP方法分析酒花品種上,還沒有建立一套實際可行的檢測方法。本研究開發(fā)了的檢測方法,既滿足了企業(yè)實際生產(chǎn)檢測的需要,同時也完善了啤酒花品種的SNP數(shù)據(jù)庫,為釀酒原料的品種鑒定提供了一條全新的思路。

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