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    不同酸堿性紫色土的硝化活性及微生物群落組成*

    2018-02-28 07:16:19曹彥強(qiáng)閆小娟羅紅燕賈仲君蔣先軍
    土壤學(xué)報(bào) 2018年1期
    關(guān)鍵詞:紫色土乙炔菌門

    曹彥強(qiáng) 閆小娟 羅紅燕 賈仲君 蔣先軍?

    (1 西南大學(xué)資源環(huán)境學(xué)院,重慶 400715)

    (2 土壤與農(nóng)業(yè)可持續(xù)發(fā)展國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室(中國(guó)科學(xué)院南京土壤研究所),南京 210008)

    微生物是土壤中最活躍的組成,在土壤C、N、S、P等養(yǎng)分循環(huán)中均起著重要作用[1]。硝化過(guò)程是全球N循環(huán)的關(guān)鍵環(huán)節(jié)之一,是指在好氧條件下銨態(tài)氮被氧化為硝態(tài)氮的過(guò)程,它是由微生物所驅(qū)動(dòng)的,分別由兩類化能自養(yǎng)微生物參與完成:首先是氨氧化微生物(Ammonia-oxidizing microorganisms,AOM)將氨氧化為亞硝態(tài)氮,再由亞硝酸氧化細(xì)菌(NOB)將亞硝態(tài)氧化為硝態(tài)氮,其中能將氨氧化為亞硝態(tài)氮的氨氧化微生物包括氨氧化細(xì)菌(AOB)和氨氧化古菌(AOA)[2-4]。但新發(fā)現(xiàn)的全程氨氧化細(xì)菌(Comammox)卻在逐漸改變?nèi)藗儗?duì)硝化作用的傳統(tǒng)認(rèn)知,它能夠?qū)@態(tài)氮直接氧化為硝態(tài)氮[5-8]。

    早期基于細(xì)胞的形狀和內(nèi)細(xì)胞膜的排列方式將氨氧化細(xì)菌分為不同的屬[9]。根據(jù)伯杰氏分類手冊(cè),氨氧化細(xì)菌分為亞硝化單胞菌屬(Nitrosomonas)、亞硝化球菌屬(Nitrosococcus)、亞硝化螺菌屬(Nitrosospira)、亞硝化葉菌屬(Nitrosolobus)和亞硝化弧菌屬(Nitrosoνibria)[9-10]。近年來(lái)基于16S rRNA基因序列同源性的比較為研究氨氧化細(xì)菌系統(tǒng)發(fā)育提供了新的工具,氨氧化細(xì)菌在系統(tǒng)發(fā)育角度由2類不同的菌屬組成,分別為變形菌門(Proteobacteria)的 β和γ 亞綱。已發(fā)現(xiàn)的土壤和淡水中的氨氧化細(xì)菌均屬于這兩個(gè)類群。其中β 亞綱的氨氧化細(xì)菌分為亞硝化單胞菌群(Nitrosomonas)和亞硝化螺菌群(Nitrosospira)兩個(gè)分支。Head等[11-12]在這一研究基礎(chǔ)上進(jìn)一步分析,亞硝化螺菌屬(Nitrosospira)、亞硝化葉菌屬(Nitrosolobus)和亞硝化弧菌屬(Nitrosoνibria)的基因序列同源性很好,將三者劃分為同一菌屬Nitrosospira。γ 亞綱單獨(dú)形成一個(gè)分枝亞硝化球菌屬(Nitrotscoccus)。因此現(xiàn)在基本按Nitrosococcus、Nitrosomonas和Nitrosospira分成三類。與氨氧化細(xì)菌不同,亞硝酸氧化細(xì)菌的系統(tǒng)發(fā)育則要復(fù)雜許多,根據(jù)細(xì)胞形態(tài)和16S rRNA基因序列的系統(tǒng)發(fā)育關(guān)系一般將NOB分為四個(gè)屬[13]:硝化桿菌屬(Nitrobacter)、硝化球菌屬(Nitrococcus)、硝化刺菌屬(Nitrospina)和屬于硝化螺菌門(Nitrospirae)的硝化螺菌屬(Nitrospira)。

    紫色土是土壤學(xué)科中具有特殊地位的土壤之一,主要分布在中國(guó)的亞熱帶地區(qū),以四川盆地為主,在我國(guó)農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中占有十分重要的地位。按照pH和碳酸鹽含量分為酸性、中性和石灰性紫色土[14]。土壤pH是影響土壤硝化作用的因素之一,不僅會(huì)對(duì)土壤硝化作用的進(jìn)程產(chǎn)生影響,而且還會(huì)對(duì)硝化微生物的數(shù)量和群落結(jié)構(gòu)產(chǎn)生影響[15]。

    本實(shí)驗(yàn)選取采自重慶永川的酸性紫色土(pH=5.3)和中性紫色土(pH=7.2)以及四川鹽亭的石灰性紫色土(pH=8.5),采用穩(wěn)定性同位素標(biāo)記技術(shù)進(jìn)行培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)。通過(guò)Miseq測(cè)序揭示三種不同的紫色土中總微生物和硝化微生物群落的分布情況,為進(jìn)一步研究紫色土中的硝化作用提供理論基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 供試土壤

    酸性紫色土采自重慶永川(2 9°1 1′N ,105°47′E),海拔582 m;中性紫色土采自重慶永川(29°23′N ,105°59′E),海拔387 m,亞熱帶氣候,全年平均氣溫19.7℃,平均降水量1400 mm;石灰性紫色土采自四川鹽亭中國(guó)科學(xué)院成都山地所(N31°16′,E105°28′),海拔400~600 m,亞熱帶氣候,全年平均氣溫17.3℃,平均降水量826 mm。

    表1 三種紫色土的基本理化性質(zhì)Table 1 Basic physico-chemical properties of the three types of purple soils tested

    1.2 土壤樣品培養(yǎng)

    13CO2標(biāo)記處理,即13C-尿素處理。每周每個(gè)培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)加入178.6 μl的0.1 mol L-1的尿素溶液,使得每克干土中N的濃度達(dá)到 100 μg(將尿素溶液逐滴加入土壤,盡量均勻地加在培養(yǎng)瓶底部所有土壤表面)。加完尿素后密封培養(yǎng)瓶,隨后注入6.0 ml的13CO2,進(jìn)一步培養(yǎng)。

    12CO2對(duì)照處理,即12C-尿素處理。每周每個(gè)培養(yǎng)瓶中加入178.6 μl的0.1 mol L-1的尿素溶液,密封培養(yǎng)瓶,隨后注入6.0 ml的12CO2,進(jìn)一步培養(yǎng)。

    13CO2+C2H2對(duì)照處理,即13C-尿素加1 000 Pa C2H2抑制處理。每周每個(gè)培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)加入178.6 μl的0.1 mol L-1的尿素溶液,密封培養(yǎng)瓶,隨后注入6.0 ml的13CO2以及1.2 ml的C2H2,進(jìn)一步培養(yǎng)。

    培養(yǎng)8周后樣品采集,利用試劑盒提取土壤基因組總DNA,采用 FastDNA? SPIN Kit for Soil(MP Biomedicals公司)試劑盒進(jìn)行提取。

    1.3 總微生物量(16S rRNA)-Miseq 測(cè)序

    目的基因的擴(kuò)增及純化:(1)將提取的DNA樣品利用通用引物(515F/907R)擴(kuò)增。擴(kuò)增條件:94℃,5 min;32×(94℃,30s;54℃,30 s;72℃,45 s);72 ℃,10 min;在4℃下保存,進(jìn)行普通PCR擴(kuò)增,得到PCR產(chǎn)物。515F/907R引物對(duì)樣品微生物 DNA 的16S rRNA的 V4 區(qū)進(jìn)行擴(kuò)增。(2)獲得土壤DNA水平的16SrRNA基因擴(kuò)增產(chǎn)物后,將PCR 產(chǎn)物用2%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),切膠,利用Agarose Gel DNA Fragment Recovery Kit Ver. 2.0 試劑盒(Takara公司)純化,純化產(chǎn)物溶解于25 μl無(wú)菌超純?nèi)ルx子水。(3)純化后的PCR 產(chǎn)物通過(guò)1.2%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)純化效果,利用微量紫外分光光度計(jì)(NanoDrop ND-1000 UV-Vis)測(cè)定擴(kuò)增產(chǎn)物的濃度。

    Miseq文庫(kù)的構(gòu)建及測(cè)序:將不同樣品的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物等摩爾數(shù)混合后,進(jìn)行Miseq文庫(kù)構(gòu)建,進(jìn)行Miseq序列分析。測(cè)序在中國(guó)科學(xué)院南京土壤研究所分析測(cè)試中心完成。

    1.4 數(shù)據(jù)處理

    M i s e q測(cè)序得到的結(jié)果采用R D P o n l i n e analysis、 Mothur 等軟件及方法分析。采用Excel 2010和SPSS 13對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。利用Origin 8.5軟件作圖。

    2 結(jié) 果

    2.1 三種紫色土各處理的凈硝化速率

    經(jīng)過(guò)56 d的培養(yǎng)后,三種紫色土各處理的凈硝化速率如圖1所示。酸性紫色土12CO2、13CO2+C2H2和13CO2處理的凈硝化速率依次為:0.036、0.012、0.027 mg kg-1d-1,酸性紫色土未發(fā)生明顯的硝化作用。中性紫色土的凈硝化速率為:8.373、0.199、8.123 mg kg-1d-1,石灰性紫色土的凈硝化速率為:10.233、0.573、9.676 mg kg-1d-1。在pH較高的中性和石灰性土壤中發(fā)生了明顯的硝化作用。

    圖1 3種不同pH紫色土的硝化作用Fig. 1 Net nitrification rates in the three purple soils with differentpH

    2.2 三種紫色土各處理門水平群落組成

    三種紫色土各處理樣品中微生物類群占土壤微生物總量的比例如圖2所示。三種紫色土中均檢測(cè)到了變形菌門(Proteobacteria)、酸桿菌門(Acidobacteria)、厚壁菌門(Firmicutes)、綠彎菌門(Chloroflexi)、放線菌門(Actinobacteria)、擬桿菌(Bacteroidetes)、浮霉菌門(Planctomycetes)和芽單胞菌門(Gemmatimonadetes)等。但其相對(duì)豐度在三種紫色土各處理樣品中存在較大差異。豐度低于1%的微生物合并為Other。

    酸性紫色土培養(yǎng)初期(S0)Proteobacteria占微生物總量的32.5%。加入尿素經(jīng)過(guò)56 d培養(yǎng)13C處理(S56-13C)和乙炔抑制處理(S56-C2H2)后Proteobacteria占微生物總量的比例分別為25.8%和23.9%,均有一定程度的下降。中性紫色土中加入尿素經(jīng)過(guò)56d培養(yǎng)13C處理(Z56-13C)和乙炔抑制處理(Z56-C2H2)后Proteobacteria占微生物總量的32.8%和27.5%,相比于培養(yǎng)初期的28.6%,乙炔處理抑制了Proteobacteria的增長(zhǎng)。石灰性紫色土中加入尿素經(jīng)過(guò)56d培養(yǎng)13C處理(J56-13C)和乙炔抑制處理(J56-C2H2)后Proteobacteria占微生物總量的比例分別為29.2%和30.7%。中性紫色土和石灰性紫色土中硝化螺旋菌門(Nitrospirae)的比例大于酸性紫色土。

    圖2 三種紫色土各處理樣品土壤微生物門水平分類比例Fig. 2 Proportions of soil microbes by phylum in the three purple soils with different pH

    2.3 三種紫色土各處理硝化細(xì)菌群落組成

    在所有序列中挑出屬于AOB和NOB的序列,三種紫色土各處理AOB和NOB占總序列的比例如圖3。

    酸性、中性和石灰性紫色土培養(yǎng)初期(S0、Z0和J0)AOB分別占總序列的0.032%、0.193%和0.0 4 2%,N O B分別占總序列的0.0 3 8%、0.769%和0.649%。加入尿素經(jīng)過(guò)56d培養(yǎng)13C處理(S56-13C、Z56-13C和J56-13C)AOB分別占總序列的0.034%、0.298%和0.324%,NOB分別占0.038%、1.111%和1.324%。加入尿素經(jīng)過(guò)56d培養(yǎng)乙炔抑制處理(S56-C2H2、Z56-C2H2和J 5 6-C2H2)A O B分別占總序列的0.0 3 8%、0.067%和0.036%,NOB分別占0.084%、0.88%和1.012%。酸性紫色土加入尿素經(jīng)過(guò)56 d培養(yǎng)13C處理和乙炔抑制處理的NOB和AOB比例均無(wú)明顯變化。中性紫色土經(jīng)過(guò)培養(yǎng)NOB比例分別增長(zhǎng)了1.4倍和1.1倍;AOB比例分別增長(zhǎng)了1.5倍和0.34倍。石灰性紫色土經(jīng)過(guò)培養(yǎng)NOB比例分別增長(zhǎng)了2.1倍和1.5倍;AOB分別增長(zhǎng)了7倍和0.86倍。NOB/AOB的值在三種紫色土各處理中最高可達(dá)到13。

    圖3 三種紫色土各處理AOB和NOB占總微生物的百分比Fig. 3 Relative abundance of AOB and NOB in the three purple soils with different pH

    三種紫色土各處理下AOB和NOB序列在屬水平百分比如圖4,其中硝化螺菌屬(Nitrospira)和硝化球菌屬(Nitrococcus)屬于NOB,亞硝化單胞菌屬(Nitrosomonas)和亞硝化螺菌屬(Nitrosospira)屬于AOB。三種紫色土各處理AOB主要以Nitrosospira為主,NOB主要以Nitrospira為主。

    酸性、中性和石灰性紫色土培養(yǎng)初期(S0、Z0和J0)AOB分別占52.5%、21.3%和7.6%,NOB分別占47.5%、78.7%和92.4%,酸性、中性和石灰性紫色土加入尿素培養(yǎng)56 d13C處理(S56-13C、Z56-13C和J56-13C)AOB分別占46.4%、21.1%和17.5%,NOB分別占53.6%、78.8%和82.5%。酸性、中性和石灰性紫色土加入尿素培養(yǎng)56d乙炔抑制處理(S56-C2H2、Z56-C2H2和J56-C2H2)AOB分別占33.8%、7.5%和15.5%,NOB分別占66.2%、92.5%和84.5%。經(jīng)過(guò)56d培養(yǎng)13C處理后,酸性紫色土AOB所占比例下降幅度較大,中性紫色土有較小幅度的下降,石灰性紫色土所占比例增加。經(jīng)過(guò)56d培養(yǎng)乙炔抑制處理后,酸性紫色土、中性紫色土AOB所占比例均有較大幅度下降,NOB所占比例變化情況相反。而石灰性紫色土AOB所占比例有較小幅度的增長(zhǎng),NOB所占比例有所下降。

    圖4 三種紫色土各處理AOB和NOB在屬水平所占的百分比Fig. 4 Relative abundance of AOB and NOB at the level of genera in the three purple soilswith different pH

    3 討 論

    實(shí)驗(yàn)室模擬試驗(yàn)與田間試驗(yàn)結(jié)果均表明:硝化作用在一定的范圍內(nèi)隨著 pH 的升高而增強(qiáng)[16-20]。本次試驗(yàn)的結(jié)果表明,pH8.5的石灰性紫色土和pH7.2的中性紫色土中發(fā)生了強(qiáng)烈的硝化作用,而pH5.3的酸性紫色土中硝化作用則較為微弱。隨著pH的升高,紫色土中的硝化作用也有著明顯的增強(qiáng)。

    本研究中,在乙炔抑制處理下的紫色土中幾乎未發(fā)生硝化作用,而未加乙炔的處理有明顯的硝化作用,表明三種不同pH紫色土中的硝化作用類型均以自養(yǎng)硝化作用為主。乙炔是一種常用的自養(yǎng)硝化抑制劑,在很多情況下較低的乙炔濃度可以抑制土壤的自養(yǎng)硝化作用[21]。土壤中的自養(yǎng)硝化微生物利用硝化作用產(chǎn)生的能量同化 CO2自養(yǎng)生長(zhǎng)。

    三種紫色土中均檢測(cè)到了變形菌門(Proteobacteria)、酸桿菌門(Acidobacteria)、厚壁菌門(Firmicutes)、綠彎菌門(Chloroflexi)、放線菌(Actinobacteria)、擬桿菌門(Bacteroidetes)和芽單胞菌門(Gemmatimonadetes),但其占比在三種紫色土中存在著顯著的差異。不同的土壤條件,例如pH,會(huì)影響微生物和硝化微生物的分布情況[22-23]。中性紫色土和石灰性紫色土各處理中硝化螺旋菌門(Nitrospirae)百分比大于酸性紫色土各理。

    AOB隸屬于Proteobacteria,在三種紫色土中均檢驗(yàn)到了較高的占比。但酸性紫色土中的硝化作用遠(yuǎn)小于中性紫色土和石灰性紫色土,表明在酸性紫色土的硝化作用中AOB并不起主導(dǎo)作用[24-25]。加入尿素經(jīng)過(guò)56 d培養(yǎng)13C處理后石灰性紫色土中AOB占總微生物的百分比的增長(zhǎng)倍數(shù)遠(yuǎn)大于中性紫色土和石灰性紫色土,乙炔抑制處理后則均有不同程度的下降。

    三種紫色土各處理AOB主要以Nitrosospira為主,NOB主要以Nitrospira為主,這表明在硝酸鹽氧化過(guò)程中Nitrosospira的活性高于Nitrosomonas,Nitrospira的活性要高于Nitrococcus。Nitrosomonas在高濃度銨環(huán)境下存在,而Nitrosospira在自然環(huán)境中經(jīng)常被發(fā)現(xiàn),Nitrospira對(duì)亞硝酸鹽的親和力較高[26-28]。NOB的相對(duì)量要大于AOB。在測(cè)序結(jié)果中,門水平未找到氨氧化古菌,因此在文中并沒(méi)有進(jìn)行作圖。經(jīng)典的硝化作用過(guò)程由兩個(gè)步驟完成:氨氧化細(xì)菌(AOB)和氨氧化古菌(AOA)先將氨氧化成亞硝酸鹽,然后亞硝酸氧化細(xì)菌(NOB)將亞硝酸鹽氧化成硝酸鹽。氨氧化微生物(AOM)將銨氧化成亞硝酸鹽產(chǎn)生 6 個(gè)電子,較亞硝酸氧化細(xì)菌(NOB)將亞硝酸氧化成硝酸鹽產(chǎn)生的電子量多3倍,由于氨氧化微生物(AOM)代謝時(shí)氨單加氧酶活化銨需要2個(gè)電子,因此氨氧化微生物(AOM)轉(zhuǎn)化每單位氮真正釋放的能量?jī)H較亞硝酸鹽氧化細(xì)菌(NOB)釋放的多2倍。這意味著理論上環(huán)境中 AOM /NOB 的數(shù)量比是2[29-32]。但本次試驗(yàn)中檢驗(yàn)到的紫色土中的NOB的相對(duì)量要大于AOB。最近有研究表明,Nitrospira屬中的一類能夠進(jìn)行全程硝化作用[5-6],即能將氨直接氧化為硝酸鹽。本次試驗(yàn)中NOB/AOB的值在三種紫色土各處理中最高可達(dá)到13,這意味著全程氨氧化細(xì)菌(Comammox)可能在紫色土硝化中占據(jù)重要貢獻(xiàn)[5,33]。從熱力學(xué)的角度來(lái)看,在細(xì)菌群落中AOB的數(shù)量應(yīng)該較NOB要多,但很多試驗(yàn)得出的結(jié)論卻與之相反[33-34]。相比于分步的硝化作用,全程硝化作用會(huì)產(chǎn)生出更高的能量,進(jìn)行全程硝化作用的硝化微生物應(yīng)該更適宜生長(zhǎng)。許多已經(jīng)發(fā)表的宏基因組數(shù)據(jù)表明能進(jìn)行全程硝化作用的Nitrospira廣泛分布于土壤、淡水生態(tài)系統(tǒng)、污水處理廠和飲用水處理系統(tǒng)中[5-8]。因此我們需要有更多的工作來(lái)評(píng)估各種硝化微生物在土壤硝化作用中的貢獻(xiàn)。通過(guò)對(duì)此次試驗(yàn)中13C標(biāo)記結(jié)果的后續(xù)探究,我們也可以進(jìn)一步了解各種硝化微生物到底是否在土壤的硝化過(guò)程中發(fā)揮了作用,如果被標(biāo)記,則證明此類硝化微生物在土壤進(jìn)行的自養(yǎng)硝化過(guò)程中起了作用。

    4 結(jié) 論

    pH較高的中性紫色土(pH=7.2)和石灰性紫色土(pH=8.5)中發(fā)生了強(qiáng)烈的硝化作用,而酸性紫色土(pH=5.3)中未進(jìn)行明顯的硝化作用,并且硝化作用類型均以自養(yǎng)硝化為主。三種紫色土中均存在著變形菌門(Proteobacteria)、酸桿菌門(Acidobacteria)、厚壁菌門(Firmicutes)、綠彎菌門(Chloroflexi)、放線菌門(Actinobacteria)、擬桿菌門(Bacteroidetes)和芽單胞菌門(Gemmatimonadetes),其中Proteobacteria在三種紫色土中均大約占有20%的比例。中性紫色土和石灰性紫色土各處理中硝化螺旋菌門(Nitrospirae)的百分比大于酸性紫色土各處理。三種紫色土中AOB主要以亞硝化螺菌屬(Nitrosospira)為主,NOB主要以硝化螺菌屬(Nitrospira)為主,且NOB的相對(duì)量大于AOB。

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