蘇麗艷,田愛(ài)梅,陶貴榮,李 蒙
(西安文理學(xué)院 生物與環(huán)境工程學(xué)院,陜西 西安 710065)
鈣調(diào)蛋白(CaM)是生物細(xì)胞內(nèi)一種結(jié)構(gòu)保守型很強(qiáng)的調(diào)控蛋白,也是研究得最多的Ca2+受體蛋白,其原型是由148個(gè)氨基酸組成的小分子酸性蛋白(17 kDa),具有專一性結(jié)合鈣離子的EF hand結(jié)構(gòu)域[1]。CaM只有在結(jié)合Ca2+后形成Ca2+/CaM復(fù)合物才有生物活性[2]。Ca2+/CaM復(fù)合物發(fā)揮生物活性的機(jī)制主要有2種,一種是該復(fù)合物直接與下游靶蛋白相互作用,另一種是通過(guò)活化依賴Ca2+/CaM復(fù)合物的蛋白激酶起作用[2-3]。
鈣調(diào)蛋白在植物體內(nèi)參與多種生理活動(dòng)的調(diào)節(jié),如參與激素反應(yīng)[4]、調(diào)節(jié)基因表達(dá)[5]、參與調(diào)節(jié)植物發(fā)育[6]、參與植物對(duì)許多脅迫信號(hào)的轉(zhuǎn)導(dǎo)等[7-9]。目前,已經(jīng)從小麥、大豆、玉米、煙草、香蕉、臍橙等多種植物中克隆了CaM基因,目前對(duì)CaM基因在響應(yīng)脅迫信號(hào)中的功能有了初步的了解,例如擬南芥的AtCaM基因與冷脅迫信號(hào)的轉(zhuǎn)導(dǎo)有關(guān)[10-11];另有研究表明,調(diào)控植物耐鹽性相關(guān)的蛋白均受到Ca2+/CaM復(fù)合物的調(diào)控[12-13];在香蕉中,CaM被證明參與香蕉幼苗對(duì)干旱、低溫等的逆境調(diào)控過(guò)程[14]。
蘋果(Malusdomestica)是我國(guó)的主要果品,也是世界上種植最廣、產(chǎn)量最多的水果。市場(chǎng)供應(yīng)的蘋果多以儲(chǔ)藏果為主,蘋果從采后包裝、運(yùn)輸、貯藏到消費(fèi)者手的整個(gè)過(guò)程中都不可避免地受到擠壓、振動(dòng)、碰撞等導(dǎo)致的損傷、高溫和低氧的儲(chǔ)藏環(huán)境等逆境脅迫因素的影響,從而極易發(fā)生病害和腐爛。因此,了解蘋果釆后響應(yīng)逆境脅迫的生理機(jī)制,篩選關(guān)鍵響應(yīng)因子,對(duì)開(kāi)展蘋果抗逆品種改良有重要的指導(dǎo)意義。
周倩[15]已通過(guò)RACE技術(shù)獲得MdCaM全長(zhǎng)(GenBank登錄號(hào)為HM369505),并證明MdCaM是秦冠蘋果抗褐斑病關(guān)鍵調(diào)控基因。然而,關(guān)于MdCaM在蘋果釆后逆境脅迫下的表達(dá)模式及功能尚不清楚。本研究根據(jù)MdCaM全長(zhǎng)cDNA序列設(shè)計(jì)特異性引物,克隆了MdCaM基因。利用MEGA 5.0 軟件將蘋果MdCaM與其他物種的鈣調(diào)蛋白氨基酸序列進(jìn)行了聚類分析。同時(shí),采用熒光定量PCR技術(shù)分析了MdCaM在蘋果釆后非生物脅迫(損傷、低氧、高溫)下的表達(dá)情況,明確該基因在逆境脅迫下的表達(dá)模式,旨在為進(jìn)一步分析MdCaM蛋白在響應(yīng)逆境脅迫中的功能,為將來(lái)開(kāi)展蘋果抗逆品種改良提供基因儲(chǔ)備,為提高蘋果釆后對(duì)外界脅迫環(huán)境的適應(yīng)能力的研究奠定基礎(chǔ)。
試驗(yàn)用植物材料均采自陜西省銅川市蘋果示范種植基地6年生紅富士蘋果樹(shù)。采后當(dāng)天運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室,用蒸餾水小心清洗且紗布擦干后,選取色澤一致、大小均勻(單果重約250 g)、無(wú)損傷病害果實(shí)進(jìn)行脅迫處理,處理后果實(shí)貯存于4 ℃,相對(duì)濕度為90%的無(wú)光照儲(chǔ)藏室中。
本研究中所用的分子試劑,高保真聚合酶Ex-Taq酶、SYBR premix EX TagTM reagent 試劑盒均購(gòu)自TaKaRa公司;DNA 凝膠回收試劑購(gòu)自O(shè)mega Bio-tek公司;其他分子試劑及載體等均購(gòu)于生工生物工程(上海)技術(shù)服務(wù)有限公司。
1.2.1 損傷脅迫 將蘋果置于離地面60 cm的地方,使其自由落地跌落大理石地面,每個(gè)蘋果正反雙面各跌落一次,以未處理蘋果為對(duì)照,儲(chǔ)藏于溫度為4 ℃,相對(duì)濕度為90%~93%無(wú)光照儲(chǔ)藏室中。每組設(shè)3個(gè)生物樣本重復(fù),每次取9個(gè)蘋果用于樣品分析。分別于處理后0,1,6,12,24 h取材,將果實(shí)削成1 cm3左右小塊存于-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.2 高溫脅迫 將蘋果分別置于溫度為4,20,40 ℃,相對(duì)濕度為90%~93%無(wú)光照儲(chǔ)藏室內(nèi)。每組設(shè)3個(gè)生物樣本重復(fù),每次每個(gè)處理組取9個(gè)蘋果用于樣品分析,分別于處理后0,1,6,12,24 h取材,將果實(shí)削成1 cm3左右小塊存于-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.3 低氧脅迫 將蘋果儲(chǔ)藏于30 L的容器中,通入100%N2+0 O2和97%N2+3%O2。每組3個(gè)重復(fù),儲(chǔ)藏于4 ℃,相對(duì)濕度為90%~93%無(wú)光照儲(chǔ)藏室內(nèi)。每次每個(gè)處理組取9個(gè)蘋果用于樣品分析,分別于處理后0,1,6,12,24 h取材,將果實(shí)削成1 cm3左右小塊存于-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
采用CTAB法提取果實(shí)樣品的總RNA。利用M-MLV逆轉(zhuǎn)錄酶合成第一鏈cDNA,具體試驗(yàn)體系、方法和步驟見(jiàn)試劑盒說(shuō)明書(shū)。根據(jù)蘋果MdCaM基因序列全長(zhǎng),利用Primer 5.0設(shè)計(jì)引物(上海生工合成),MdCaM-F和MdCaM-R,序列見(jiàn)表1。以cDNA為模板擴(kuò)增MdCaM基因全長(zhǎng)。反應(yīng)體系為25 μL,程序?yàn)?4 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 40 s 共35個(gè)循環(huán);最后72 ℃延伸7 min。1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)后,DNA凝膠回收試劑盒回收目標(biāo)片段,連接pMD19-T載體進(jìn)行T/A克隆,DNA測(cè)序由上海生物工程有限公司完成。
以上述cDNA為模板,以NCBI上已經(jīng)登錄的MdActin(登錄號(hào):AB638619.1)為內(nèi)參,采用RT-PCR方法對(duì)其進(jìn)行表達(dá)分析。引物根據(jù)NCBI已經(jīng)登錄的MdActin和MdCaM序列設(shè)計(jì),分別為Q_MdActin-F、Q_MdActin-R;Q_MdCaM-F、Q_MdCaM-R,具體序列見(jiàn)表1。操作步驟按照SYBR premix EX TagTM reagent 試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。qPCR體系為10 μL,包括5 μL SYBR premix Ex Taq混合液,1 μL cDNA,引物各0.25 μL,ddH2O 3.5 μL。反應(yīng)程序?yàn)椋?5 ℃變性3 min;然后,95 ℃ 20 s,54 ℃退火20 s,72 ℃延伸20 s,共40 次循環(huán);每次循環(huán)第3 步進(jìn)行熒光采集,最后退火至65 ℃,每隔30 s 上升0.5 ℃,至95 ℃變性1 min。qRT-PCR 反應(yīng)于Bio-RAD C1000TM Thermal Cycler 上進(jìn)行,使用CFX96TM 系統(tǒng)進(jìn)行熒光采集。cDNA標(biāo)樣和待測(cè)樣均設(shè)置3 次重復(fù)。試驗(yàn)結(jié)果用2-ΔΔCT法對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行定量分析[16]。
對(duì)紅富士蘋果的MdCaM基因全長(zhǎng)序列進(jìn)行克隆(圖1),將測(cè)序結(jié)果與已知MdCaM基因序列比對(duì),結(jié)果一致。MdCaM包含450 bp的開(kāi)放閱讀框,編碼150個(gè)氨基酸。根據(jù)在線軟件(http://www.expasy.org/tools/pi_tool.html)預(yù)測(cè)其分子量約為16.875 7 kDa,預(yù)測(cè)等電點(diǎn)(pI)為4.12。利用DNAman軟件將MdCaM與其他物種的CaM氨基酸序列進(jìn)行比對(duì)。結(jié)果顯示,MdCaM的蛋白序列與其他物種鈣調(diào)蛋白基因具有很高同源性,且具有2個(gè)鈣結(jié)合蛋白的保守結(jié)構(gòu)域EF-hand(圖2)。
根據(jù)編碼MdCaM的氨基酸序列并結(jié)合其他植物鈣調(diào)蛋白基因的編碼氨基酸序列,采用MEGA5.0構(gòu)建了系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)(圖3)。結(jié)果表明,MdCaM基因與芥藍(lán)和擬南芥的親緣關(guān)系最近。
1.DNA的PCR結(jié)果;M.分子量標(biāo)準(zhǔn)。
利用熒光定量PCR對(duì)MdCaM基因損傷脅迫后不同時(shí)間的相對(duì)表達(dá)量進(jìn)行分析,結(jié)果顯示:與對(duì)照組相比,MdCaM基因的相對(duì)表達(dá)量在損傷脅迫早期1,6,12 h均有顯著性提高,且在損傷處理6 h后達(dá)到峰值。損傷脅迫6 h后,對(duì)照組的相對(duì)表達(dá)量為1.1,而損傷組為5.7,約為對(duì)照組的5倍,12 h后表達(dá)量較脅迫早期(1,6 h)有所下降,但仍明顯高于同時(shí)期對(duì)照果,損傷處理24 h后MdCaM基因的相對(duì)表達(dá)量恢復(fù)正常水平(圖4)。
黑色下劃線為2個(gè)EF-hand保守結(jié)構(gòu)域。 Two conserved domain EF-hands were marked by black lines.
圖3 根據(jù)氨基酸序列聚類的植物鈣調(diào)蛋白基因進(jìn)化關(guān)系分析
如圖5所示,與低溫(4 ℃)相比,20,40 ℃儲(chǔ)藏1 h后,MdCaM相對(duì)表達(dá)量呈現(xiàn)明顯上調(diào),并隨著時(shí)間的延長(zhǎng)呈現(xiàn)上升趨勢(shì),12 h后達(dá)到峰值,隨后表達(dá)量呈下降趨勢(shì),但顯著高于同期對(duì)照組。
在無(wú)氧(0 O2)條件下,MdCaM在處理后1 h被迅速誘導(dǎo)呈上調(diào)表達(dá),對(duì)照組的相對(duì)表達(dá)量為1.1,而無(wú)氧組為3.2,約為對(duì)照組的3倍,6 h后迅速恢復(fù)正常水平;在低氧(3% O2)儲(chǔ)藏條件下,MdCaM仍呈現(xiàn)為上調(diào)表達(dá),但在處理后6 h達(dá)到最大值,12 h后恢復(fù)正常水平。在低氧(0 O2和3% O2)誘導(dǎo)12 h后,MdCaM表達(dá)量與對(duì)照組無(wú)顯著性差異(圖6)。
***.P<0.001;**.P<0.01; *.P<0.05。圖5-6同。***.P<0.001;**.P<0.01; *.P<0.05。The same as Fig.5-6.
圖5 高溫脅迫下MdCaM基因的表達(dá)情況Fig.5 Relative expression of MdCaM gene under high temperature stress
圖6 低氧脅迫下MdCaM基因的表達(dá)情況
植物抗逆是指植物抵抗干旱、水澇、低溫、高溫、鹽堿、病蟲(chóng)害等不良環(huán)境的能力。逆境可分為生物脅迫和非生物脅迫2種。其中,非生物脅迫條件下植物自身調(diào)節(jié)機(jī)制的研究越來(lái)越受到重視,已成為培育抗逆新品種的重要條件之一。損傷、高溫和低氧是蘋果儲(chǔ)藏過(guò)程中的主要非生物脅迫因子,是影響北方地區(qū)蘋果儲(chǔ)藏品質(zhì)的重要因素。
已有研究表明,CaM是植物體內(nèi)普遍存在的一類Ca2+結(jié)合蛋白,在植物響應(yīng)非生物脅迫過(guò)程中發(fā)揮著重要作用[17-22]。鈣調(diào)蛋白本身不具有催化活性,只要通過(guò)與其下游鈣調(diào)蛋白結(jié)合蛋白(CaMBP)結(jié)合調(diào)控細(xì)胞的生理功能,從而影響植物的生長(zhǎng)發(fā)育[23]。如毛白楊CaM通過(guò)提高G6PDHase、ATPase活性提高其幼苗在低溫條件下的存活率和抗凍性,從而證明CaM與植物的抗凍性相關(guān)[24]。因此,CaMBP的鑒定是研究CaM生理功能作用的重要手段。目前,已經(jīng)鑒定了一系列參與逆境脅迫反應(yīng)的CaMBP,如NAD激酶、一氧化氮合成酶、谷氨酸脫羧酶等[25]。研究證明,蘋果鈣調(diào)蛋白是抗褐斑病相關(guān)蛋白[15],關(guān)于其在蘋果響應(yīng)損傷、高溫和低氧等非生物脅迫中的功能尚無(wú)相關(guān)報(bào)道。
本研究結(jié)果表明,MdCaM對(duì)不同脅迫的響應(yīng)模式不同。損傷處理后,MdCaM迅速應(yīng)答,其相對(duì)表達(dá)量在處理后6 h達(dá)到峰值,約為為對(duì)照組的5倍,24 h后漸恢復(fù)正常水平;在20,40 ℃ 2個(gè)高溫逆境脅迫環(huán)境下,MdCaM均在脅迫早期被強(qiáng)烈誘導(dǎo),且在處理后12 h左右達(dá)到峰值,隨后表達(dá)水平小幅下調(diào),但仍然顯著高于對(duì)照組;MdCaM在無(wú)氧(0 O2)脅迫早期受到強(qiáng)烈誘導(dǎo),在處理后1 h達(dá)到峰值,約為對(duì)照組的3倍,與無(wú)氧脅迫相比,低氧環(huán)境下(3%O2)MdCaM相對(duì)表達(dá)量上調(diào)幅度較小,應(yīng)答較為遲緩,6 h后達(dá)到峰值,為對(duì)照組的2倍,后均恢復(fù)正常水平。從以上研究結(jié)果看,MdCaM基因受到損傷、高溫、低氧等脅迫條件誘導(dǎo),特別是在脅迫早期有明顯應(yīng)答。說(shuō)明蘋果MdCaM基因具有響應(yīng)損傷、高溫、低氧等非生物脅迫的能力,可能在適應(yīng)脅迫環(huán)境的早期發(fā)揮重要作用。本研究為進(jìn)一步利用現(xiàn)代分子生物學(xué)技術(shù)和植物遺傳育種方法揭示MdCaM的功能及其網(wǎng)絡(luò)調(diào)控機(jī)制奠定基礎(chǔ),為闡明蘋果釆后抗逆生理機(jī)制及進(jìn)一步利用該基因進(jìn)行抗性育種提供重要參考依據(jù)。然而,MdCaM響應(yīng)逆境脅迫的分子機(jī)制如何,有哪些下游靶蛋白參與其調(diào)控過(guò)程,其與下游靶蛋白相互作用的信號(hào)通路及調(diào)控網(wǎng)絡(luò)等問(wèn)題亟待進(jìn)一步深入研究。