翟秋紅,余林玲,孫彥
(天津大學(xué)化工學(xué)院系統(tǒng)生物工程教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津 300072)
反離子對(duì)部分電荷中和的聚乙烯亞胺接枝介質(zhì)的蛋白質(zhì)色譜行為的影響
翟秋紅,余林玲,孫彥
(天津大學(xué)化工學(xué)院系統(tǒng)生物工程教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津 300072)
前期研究表明部分電荷中和的聚乙烯亞胺接枝瓊脂糖介質(zhì)FF-PEI-R440具有較高靜態(tài)吸附容量和快速傳質(zhì)速率。本文選取硫氰酸根離子、氯離子、磷酸氫根離子以及硫酸根離子這4種反離子,在離子強(qiáng)度為0.03、0.06 mol·L-1下,研究其對(duì)FF-PEI-R440吸附與洗脫行為的影響。結(jié)果表明:在兩種離子強(qiáng)度下,飽和吸附容量的增加順序均為在低離子強(qiáng)度下,除SCN-外,反離子種類對(duì)傳質(zhì)速率和動(dòng)態(tài)結(jié)合容量沒有顯著影響;在高離子強(qiáng)度下,傳質(zhì)速率的增加順序?yàn)槎鴦?dòng)態(tài)結(jié)合容量的增加順序與飽和吸附容量序列一致;兩種離子強(qiáng)度下 Cl-均保持最高的動(dòng)態(tài)結(jié)合容量;反離子種類對(duì)蛋白質(zhì)洗脫行為沒有顯著影響。上述結(jié)果說明反離子主要影響FF-PEI-R440的吸附性能,而不影響洗脫,且流動(dòng)相中選擇Cl-為反離子最利于FF-PEI-R440的實(shí)際柱色譜操作。
離子交換色譜;聚合物接枝;反離子;吸附平衡;動(dòng)力學(xué);動(dòng)態(tài)結(jié)合容量;線性梯度洗脫
離子交換色譜(IEC)因其具有處理量大、分辨率高、對(duì)生物活性物質(zhì)友好等優(yōu)勢(shì),已被廣泛應(yīng)用于蛋白類藥物的分離純化[1-3]。為了提升IEC介質(zhì)的吸附性能,研究者開發(fā)了聚合物接枝介質(zhì),它具有較高吸附容量和快速傳質(zhì)的優(yōu)勢(shì)[4-6]。
本課題組在前期工作中設(shè)計(jì)合成了一系列不同離子交換容量(IC,即接枝密度)的聚乙烯亞胺(PEI)接枝瓊脂糖介質(zhì),并系統(tǒng)研究了其對(duì)牛血清蛋白(BSA)和γ-球蛋白的吸附行為[7-9],結(jié)果表明當(dāng)介質(zhì)的IC達(dá)到臨界離子交換容量(cIC)時(shí)(分別為約 600 mmol·L-1和約 460 mmol·L-1),其對(duì)蛋白質(zhì)的靜態(tài)吸附容量和傳質(zhì)速率都出現(xiàn)大幅度提升。這是由于當(dāng) IC>cIC時(shí),吸附位點(diǎn)拓展為三維空間有利于蛋白質(zhì)吸附,從而增大了靜態(tài)吸附容量;鏈間距縮短,靈活的相鄰鏈可以通過擺動(dòng)而接觸,吸附在PEI鏈上的蛋白可以在介質(zhì)孔入口和孔內(nèi)部化學(xué)勢(shì)梯度以及由吸附相蛋白介導(dǎo)的相鄰柔性鏈之間相互作用的推動(dòng)下從一條鏈傳遞到相鄰的另一條鏈上,即在吸附相發(fā)生“鏈傳遞”作用,促進(jìn)孔內(nèi)傳質(zhì)[10-11]。另外,在較寬的鹽濃度范圍內(nèi),該介質(zhì)仍能保持較好的吸附性能。
為了進(jìn)一步研究接枝鏈電荷密度對(duì)傳質(zhì)速率的影響,本課題組利用乙酸鈉修飾PEI接枝瓊脂糖介質(zhì)FF-PEI-L740(IC>cIC),通過部分中和PEI接枝鏈的正電荷,形成一系列具有不同接枝鏈電荷密度的介質(zhì)[12]。研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)接枝鏈的電荷密度降低到一定值時(shí),即 FF-PEI-R440(R440,即介質(zhì)經(jīng)中和修飾后剩余的離子交換容量為440 mmol·L-1),介質(zhì)吸附容量基本不變但吸附速率可提升3倍(表1)。這是源于接枝鏈的電荷密度降低后,蛋白分子與離子交換基團(tuán)之間的結(jié)合強(qiáng)度減弱,促使“鏈傳遞”更容易發(fā)生[12]。此外,F(xiàn)F-PEI-R440在 0~50 mmol·L-1的鹽濃度范圍內(nèi)仍具有較高的吸附容量和傳質(zhì)速率,且在30~150 cm·h-1的流速條件下保持較高的動(dòng)態(tài)吸附容量。同時(shí),由于該介質(zhì)對(duì)離子強(qiáng)度較敏感,蛋白質(zhì)可在較低離子強(qiáng)度下實(shí)現(xiàn)洗脫,其生物活性不易被破壞。因此,F(xiàn)F-PEI-R440是一種兼具優(yōu)良吸附和洗脫性能的色譜介質(zhì),可應(yīng)用于高流速下蛋白的快速吸附與洗脫,從而有利于保持蛋白分子活性。
表1 3種吸附劑在20 mmol·L-1 Tris-HCl,pH 8.0緩沖液中對(duì)BSA的吸附與傳質(zhì)參數(shù)Table 1 Langmuir parameters and effective diffusivities of BSA adsorption on different resins at 20 mmol·L-1 Tris-HCl,pH 8.0[12,17]
由于離子交換作用的實(shí)質(zhì)即為反離子與蛋白質(zhì)競爭結(jié)合于介質(zhì)表面的離子交換配基,因而反離子的性質(zhì)必然會(huì)影響蛋白質(zhì)在離子交換色譜介質(zhì)上的吸附與洗脫行為[13-15]。本課題組已研究了反離子對(duì) PEI接枝介質(zhì) FF-PEI-L680(IC>cIC,L680,即接枝鏈電荷密度高的介質(zhì)的離子交換容量)吸附與洗脫行為的影響,結(jié)果表明,與介質(zhì)親和性強(qiáng)的反離子由于更易于將蛋白質(zhì)置換,因此會(huì)促進(jìn)蛋白質(zhì)在鏈間的傳質(zhì)(即發(fā)生“鏈傳遞”作用),加快傳質(zhì)并有利于蛋白洗脫[16]。FF-PEI-R440與FF-PEI-L680相比,前者接枝鏈中的部分氨基參與反應(yīng),接枝鏈的電荷密度降低到一定程度[17],配基結(jié)構(gòu)和電荷分布差異如圖1所示,蛋白與離子交換基團(tuán)間的結(jié)合強(qiáng)度減弱,同時(shí)接枝鏈間作用也發(fā)生改變,因而反離子對(duì)“鏈傳遞”作用的影響可能不同,其對(duì)吸附與洗脫行為的影響需要進(jìn)一步研究。
以FF-PEI-R440為研究對(duì)象,選取4種具有不同尺寸、帶電量和水化能力的反離子:硫氰酸根、氯離子、磷酸氫根和硫酸根,以牛血清蛋白為模型蛋白,系統(tǒng)研究反離子對(duì)吸附平衡、吸附動(dòng)力學(xué)、動(dòng)態(tài)結(jié)合容量和線性梯度洗脫的影響,并與FF-PEI-L680做比較,以期揭示反離子在IEC過程中的作用并優(yōu)化FF-PEI-R440的吸附與洗脫條件。
圖1 不同介質(zhì)的配基結(jié)構(gòu)和電荷分布差異Fig.1 Scheme of ligand chemistry and charge distribution of different resins
牛血清白蛋白(BSA,Mw66.4 kD, 96%)購置于Sigma-Aldrich(St. Louis, USA),根據(jù)其消光系數(shù)EmM(280 nm) =45.5[18]計(jì)算濃度。FF-PEI-R440來源于本課題組前期工作(對(duì)FF-PEI-L740減電荷修飾)[12],其吸附參數(shù)見表1。另外,由于FF-PEI-R440的出發(fā)介質(zhì)FF-PEI-L740與FF-PEI-L680吸附性能相似(表1)[10,17],兩者在本文被視為同種介質(zhì),用于與 FF-PEI-R440比較。氯化鈉(NaCl)、硫酸鈉(Na2SO4)、硫氰酸鈉(NaSCN)、二甲基亞砜(DMSO)購置于天津市江天化工科技開發(fā)公司。磷酸二氫鈉(NaH2PO4)、磷酸氫二鈉(Na2HPO4)、三羥甲基氨基甲烷(Tris)購置于上海生工生物工程有限公司。試劑均為分析純,且直接使用未經(jīng)進(jìn)一步提純。由于25℃時(shí)磷酸的三級(jí)解離常數(shù)分別為2.16、7.21和12.32[19],在pH為8的添加磷酸鹽的緩沖液中主要陰離子為HPO42-,因此本文以HPO4
2-代表磷酸鹽緩沖液中反離子,不考慮H2PO4-。4 種反離子的性質(zhì)參見表2[16,20]。
表2 反離子的基本性質(zhì)Table 2 Properties of counterions used in this work[16,20]
針對(duì)反離子影響的研究均在相同離子強(qiáng)度(0.03或0.06 mol·L-1)下進(jìn)行,離子強(qiáng)度(I)通過式(1)計(jì)算
式中,ci為緩沖液中某離子的摩爾濃度,mol·L-1;Zi為該離子的電荷數(shù);ITris-HCl為 20 mmol·L-1Tris-HCl,pH 8.0 緩沖液的離子強(qiáng)度,0.01 mol·L-1。即所有平衡緩沖液均以 20 mmol·L-1Tris-HCl,pH 8.0為基礎(chǔ),加入不同種類的鈉鹽而制得。利用電導(dǎo)率檢測(cè)器測(cè)得的不同反離子緩沖液的電導(dǎo)率如表3所示。
表3 不同反離子緩沖液的電導(dǎo)率Table 3 Conductivity of buffer with different counterions
吸附等溫線通過間歇搖瓶法測(cè)定[7]:將用平衡緩沖液預(yù)平衡后的介質(zhì)置于25 ml錐形瓶中,加入5 ml用同樣緩沖液配制的BSA溶液(濃度為0.1~5 mg·ml-1)。將其置于 25℃水浴,在 170 r·min-1振蕩24 h,取出后4000 r·min-1離心5 min,測(cè)定上清中的蛋白濃度。根據(jù)物料衡算計(jì)算介質(zhì)吸附密度。利用Langmuir方程擬合吸附等溫線
式中,qm為飽和吸附容量,mg·ml-1;Kd為解離常數(shù),mg·ml-1;q為平衡時(shí)固相蛋白濃度(介質(zhì)吸附密度),mg·ml-1;c為平衡時(shí)液相蛋白濃度,mg·ml-1。
吸附動(dòng)力學(xué)通過間歇攪拌法測(cè)定[7]:將100 ml以平衡緩沖液配制的1 mg·ml-1BSA溶液置于100 ml三口圓底燒瓶中,25℃,280 r·min-1攪拌。蛋白質(zhì)溶液以20 ml·min-1的流速通過孔徑為2 μm的不銹鋼濾頭注入紫外(UV)檢測(cè)器并返回三口燒瓶,以實(shí)時(shí)檢測(cè)蛋白溶液濃度。將一定量用平衡緩沖液預(yù)平衡介質(zhì)加入三口燒瓶,并開始計(jì)時(shí),獲得液相蛋白質(zhì)的濃度隨時(shí)間變化的曲線。利用有效孔擴(kuò)散模型分析吸附動(dòng)力學(xué)數(shù)據(jù)[21],利用Matlab求解得到蛋白質(zhì)在介質(zhì)中的有效孔擴(kuò)散系數(shù)(De)。
動(dòng)態(tài)結(jié)合容量的測(cè)定采用迎頭分析法[17]:用重力沉降法將脫氣介質(zhì)注入 TricornTM(50×5 mm,I.D.)色譜柱,在?KTA purifierTM10色譜系統(tǒng)中經(jīng)1.5 ml·min-1(450 cm·h-1)的流速形成固定的床層。床層體積為1.04 ml±0.03 ml。平衡色譜柱15個(gè)柱體積(CV),待 UV信號(hào)穩(wěn)定后調(diào)零,上樣蛋白(2 mg·ml-1)至 50%穿透。最終以 10%穿透計(jì)算蛋白質(zhì)的動(dòng)態(tài)吸附容量(DBC)
式中,Vp為達(dá)到10%穿透的上樣體積,ml;Vh為系統(tǒng)死體積,ml;Vb為填充柱體積,ml;Cp為上樣蛋白濃度,mg·ml-1。流速恒定為 0.5 ml·min-1。
利用Liu等[16]所用方法進(jìn)行線性梯度洗脫,即平衡15CV后,上樣2.5 ml蛋白(2 mg·ml-1),再清洗 2CV,然后以線性梯度從I0(0.03或 0.06 mol·L-1)經(jīng) 10CV 至最終離子強(qiáng)度(IF=1.01 mol·L-1),再清洗 2CV,最后用 0.5 mol·L-1NaOH再生,流速恒定為0.5 ml·min-1。并根據(jù)洗脫峰和再生峰面積計(jì)算得出蛋白的回收率[22]。
不同反離子存在下,BSA在FF-PEI-R440上的吸附等溫線結(jié)果如圖2所示,通過Langmuir 吸附平衡方程擬合出的吸附容量和解離常數(shù)見表4。
從圖2和表4可以看出,對(duì)于每種反離子而言,當(dāng)離子強(qiáng)度增大時(shí),由于蛋白質(zhì)與離子交換基團(tuán)之間的靜電作用被屏蔽,F(xiàn)F-PEI-R440對(duì)BSA的飽和吸附容量均降低。同時(shí),反離子對(duì)飽和吸附容量有明顯的影響(變化幅度可達(dá)183%),且在低離子強(qiáng)度和高離子強(qiáng)度下呈現(xiàn)相同的序列,即qm由小到大的順序?yàn)镾CN- 圖2 BSA在FF-PEI-R440上的吸附等溫線Fig.2 Adsorption isotherms of BSA on FF-PEI-R440 in 20 mmol·L-1 Tris-HCl, pH 8.0 with different counterions 表4 BSA在FF-PEI-R440上的吸附平衡參數(shù)Table 4 Equilibrium parameters, qm and Kd (both in mg·ml-1), for BSA adsorption on FF-PEI-R440 in 20 mmol·L-1 Tris-HCl with different counterions/mol·L-1 2- 然而,SCN-存在時(shí),兩者的趨勢(shì)卻相反,即此時(shí)FF-PEI-R440的吸附容量最小,而FF-PEI-L680的吸附量最大。這可能是因?yàn)镕F-PEI-R440在制備過程中,PEI鏈內(nèi)的伯、仲胺的活性比較強(qiáng),大部分參與乙酸鈉的中和反應(yīng)而失去電荷[24-25],離子交換基團(tuán)多為剩余的叔胺基。而文獻(xiàn)報(bào)道離子交換基團(tuán)相比,后者與單一離子的靜電相互作用以及氫鍵結(jié)合力較弱,離子誘導(dǎo)極化和倫敦色散作用較強(qiáng),因而更容易結(jié)合較大的離子[14]。由于SCN-離子半徑較大極性強(qiáng),水化能力差[26],所以親和力強(qiáng),蛋白質(zhì)的吸附容量較低。離子交換基團(tuán)為叔胺基的介質(zhì)DEAE Sepharose FF也出現(xiàn)了類似的現(xiàn)象(由小到大的順序?yàn)榧碨CN-存在時(shí)的吸附容量最低[16]。 綜上所述,反離子顯著影響 FF-PEI-R440對(duì)BSA的靜態(tài)吸附行為,Cl-存在下吸附容量最高,SCN-存在時(shí)的吸附容量最低。 不同反離子存在下,F(xiàn)F-PEI-R440對(duì)BSA的吸附動(dòng)力學(xué)曲線如圖3所示。利用孔擴(kuò)散模型擬合得到的有效擴(kuò)散系數(shù)(De)與BSA在自由溶液中擴(kuò)散系數(shù)(D0=6.0×10-11m·s-2)的比值(De/D0),如圖4所示。 由圖4可以看出,無論在低離子強(qiáng)度或高離子強(qiáng)度下,SCN-存在下的De/D0值都明顯低于其他3種反離子,其主要原因是 SCN-存在下的吸附容量最低,即可通過鏈傳遞作用傳遞的蛋白量最少(吸附相蛋白量少),“鏈傳遞”作用(一種特殊的表面擴(kuò)散過程)對(duì)孔內(nèi)傳質(zhì)的貢獻(xiàn)最低,故而De/D0值最小。 圖3 BSA在FF-PEI-R440上吸附動(dòng)力學(xué)曲線Fig.3 Uptake curves for 1 mg·ml-1 BSA on FF-PEI-R440 in 20 mmol·L-1 Tris-HCl, pH 8.0 with different counterions 上述反離子對(duì)FF-PEI-R440傳質(zhì)速率的影響結(jié)果與在 FF-PEI-L680得到的結(jié)果不同,在后者中De/D0值由小到大的順序?yàn)榧磁c介質(zhì)具有較高親和性的反離子會(huì)促進(jìn)“鏈傳遞”作用發(fā)生、加快傳質(zhì)[16,29]。造成這一差異的原因可能是FF-PEI-R440電荷密度低于 FF-PEI-L680,耐鹽性也較差[12],即前者的靜電相互作用更易被屏蔽,在反離子存在時(shí),反離子-蛋白-介質(zhì)間的作用均較弱,差別不明顯,所以反離子更大程度上是通過對(duì)蛋白吸附容量,而不是主要通過其與介質(zhì)間的親和強(qiáng)弱對(duì)“鏈傳遞”作用造成影響。 綜上所述,反離子顯著影響 FF-PEI-R440對(duì)BSA的傳遞速率,SCN-存在時(shí)傳質(zhì)速率最低。 在不同反離子存在下,F(xiàn)F-PEI-R440對(duì)BSA的動(dòng)態(tài)結(jié)合容量如圖5所示。 圖5 BSA在FF-PEI-R440柱上的動(dòng)態(tài)結(jié)合容量Fig.5 DBC values of BSA on FF-PEI-R440 column at I=0.03 mol·L-1 and I=0.06 mol·L-1 in 20 mmol·L-1 Tris-HCl, pH 8.0 with different counterions 眾所周知,DBC由吸附平衡與傳質(zhì)速率共同決定,且飽和結(jié)合容量是在相同緩沖液條件下 DBC能達(dá)到的理論最高值[30]。因而對(duì)于每種反離子而言,當(dāng)離子強(qiáng)度增大時(shí),qm和De/D0值均降低(表4和圖4),F(xiàn)F-PEI-R440對(duì)BSA的DBC值也均降低(圖5);且無論在低離子強(qiáng)度或高離子強(qiáng)度下,由于SCN-存在下的qm和De/D0值均明顯低于其他3種反離子,其DBC值也為最低。 由圖5可以看出,低離子強(qiáng)度時(shí)(I=0.03 mol·L-1),除 SCN-外,和Cl-3種反離子存在下的 DBC 十分接近(100 mg·ml-1±8 mg·ml-1),這與2.3節(jié)中De/D0值隨反離子的變化趨勢(shì)相同。這是由于此時(shí)離子強(qiáng)度低,F(xiàn)F-PEI-R440的飽和吸附容量均較高,DBC主要由傳質(zhì)速率決定。這與在FF-PEI-L680觀察得到的結(jié)果相同[16]。 而在高離子強(qiáng)度時(shí)(I=0.06 mol·L-1),DBC值由小到大的順序?yàn)榕c 2.2節(jié)中qm的增加順序相同。這是由于此時(shí)離子強(qiáng)度高,飽和吸附容量均有較大幅度降低,靜態(tài)吸附容量成為限制DBC的主要因素,因而DBC值的增加順序與qm的順序相同。 綜上所述,反離子顯著影響 FF-PEI-R440對(duì)BSA的柱上吸附行為,SCN-存在時(shí)動(dòng)態(tài)結(jié)合容量最低,Cl-存在時(shí)動(dòng)態(tài)結(jié)合容量最高(可達(dá) 106 mg·ml-1)。對(duì)于離子交換色譜而言,在上柱操作中,高流速下具有較高的動(dòng)態(tài)結(jié)合容量對(duì)蛋白的分離純化才有實(shí)際應(yīng)用意義[31],所以在使用 FF-PEI-R440介質(zhì)的色譜過程中可以選擇 Cl-作為反離子進(jìn)行吸附操作。 不同反離子存在下,BSA在FF-PEI-R440的線性洗脫色譜圖如圖6所示,從圖中可以看出4種反離子條件的下洗脫均獲得了單峰(由于SCN-對(duì)280 nm紫外有吸收,所以隨著鹽濃度增大,基線逐漸偏高,并非拖尾),計(jì)算得到的洗脫收率見表5。由表5可知,4種反離子在兩種離子強(qiáng)度下對(duì)BSA的洗脫收率均達(dá)到了95.6%±0.7%,即4種反離子均對(duì)BSA實(shí)現(xiàn)了良好的洗脫。 由圖6可以看出,無論在低離子強(qiáng)度或高離子強(qiáng)度下,4種反離子的種類對(duì)FF-PEI-R440的洗脫順序沒有顯著差別。這與在FF-PEI-L680上結(jié)果不同,即與介質(zhì)親和力較強(qiáng)的反離子會(huì)競爭蛋白吸附位點(diǎn)而優(yōu)先將蛋白洗脫下來[16]。這一差異也主要是因?yàn)閮煞N介質(zhì)的電荷密度不同造成的,表面電荷密度低的FF-PEI-R440介質(zhì)在較低的離子強(qiáng)度下就可以將蛋白質(zhì)洗脫下來[12],蛋白質(zhì)洗脫對(duì)離子強(qiáng)度更敏感,而反離子對(duì)洗脫的影響較小。 表5 不同反離子條件下蛋白的洗脫回收率Table 5 Recoveries of BSA with different counterions on FF-PEI-R440 圖6 BSA在FF-PEI-R440上的梯度洗脫色譜圖Fig.6 Linear gradient elution chromatograms of BSA with different counterions on FF-PEI-R440 綜上所述,反離子對(duì)BSA在FF-PEI-R440柱上洗脫行為沒有顯著影響,且均能實(shí)現(xiàn)良好洗脫。所以,在使用FF-PEI-R440介質(zhì)進(jìn)行實(shí)際柱色譜操作中,吸附過程中可以選擇 Cl-作為反離子,而洗脫過程則無須更換反離子。 通過研究反離子對(duì)部分電荷中和且具有較高傳質(zhì)速率的PEI接枝瓊脂糖介質(zhì)FF-PEI-R440上蛋白吸附與洗脫行為的影響,并與其出發(fā)介質(zhì)FF-PEI-L680比較,結(jié)果表明:無論低離子強(qiáng)度或高離子強(qiáng)度下,BSA在FF-PEI-R440上的靜態(tài)吸附容量對(duì)反離子的種類比較敏感,qm的增加順序均為在低離子強(qiáng)度下,除SCN-外,反離子對(duì)傳質(zhì)速率和動(dòng)態(tài)結(jié)合容量沒有顯著影響;在高離子強(qiáng)度下,傳質(zhì)速率的增加順序?yàn)閯?dòng)態(tài)結(jié)合容量的增加順序?yàn)?;?種反離子對(duì)蛋白質(zhì)的洗脫順序沒有顯著影響。該結(jié)果與反離子對(duì)FF-PEI-L680介質(zhì)的影響不同,主要是由于離子交換基團(tuán)化學(xué)特性和基團(tuán)密度均不同造成的。在實(shí)際柱色譜操作中,使用FF-PEI-R440時(shí)流動(dòng)相宜選擇Cl-作為反離子以獲得較高的動(dòng)態(tài)結(jié)合容量,而對(duì)FF-PEI-L680,則需選擇上述研究結(jié)果將有助于為PEI接枝的瓊脂糖介質(zhì)的柱色譜操作選擇合適的反離子以提升對(duì)蛋白的吸附和洗脫效果,提高操作效率。 符 號(hào) 說 明 Cp——上樣蛋白濃度,mg·ml-1 c——蛋白質(zhì)溶液濃度,mg·ml-1 c0——蛋白質(zhì)溶液初始濃度,mg·ml-1 DBC——?jiǎng)討B(tài)結(jié)合容量,mg·ml-1 De——介質(zhì)內(nèi)蛋白質(zhì)有效擴(kuò)散系數(shù) D0——溶液中蛋白質(zhì)擴(kuò)散系數(shù) IC——離子交換容量,mmol·L-1 Kd——解離常數(shù),mg·ml-1 Mw——分子量 m——色譜介質(zhì)濕重,g q——蛋白質(zhì)吸附密度,mg·ml-1 qm——蛋白質(zhì)飽和吸附容量,mg·ml-1 Vb——填充柱體積,ml Vh——系統(tǒng)死體積,ml Vp——達(dá)到10%穿透蛋白的上樣體積,ml [1] RICCARDI E, WANG J C, LIAPIS A I. Modeling the construction of polymeric adsorbent media: effects of counter-ions on ligand immobilization and pore structure[J]. Journal of Chemical Physics,2014, 140(8): 3073-3083. [2] YU L L, ZHANG L, SUN Y. Protein behavior at surfaces: orientation,conformational transitions and transport[J]. Journal of Chromatography A, 2015, 1382: 118-134. [3] LENHOFF A M. Protein adsorption and transport in polymer-functionalized ion-exchangers[J]. Journal of Chromatography A, 2011, 1218(49): 8748-8759. [4] BASCONI J E, CARTA G, SHIRTS M R. Multiscale modeling of protein adsorption and transport in macroporous and polymer-grafted ion exchangers[J]. AIChE Journal, 2014, 60(11): 3888-3901. [5] TAO Y Y, CHEN N Y, CARTA G,et al. Modeling multicomponent adsorption of monoclonal antibody charge variants in cation exchange columns[J]. AIChE Journal, 2012, 58(8): 2503-2511. [6] 余林玲, 孫彥. 接枝聚合物配基的蛋白質(zhì)吸附層析[J]. 化工學(xué)報(bào),2016, 67(1): 140-151.YU L L, SUN Y. Adsorptive protein chromatography with grafted polymeric ligands[J]. CIESC Journal, 2016, 67(1): 140-151. [7] YU L L, TAO S P, DONG X Y,et al. Protein adsorption to poly(ethylenimine)-modified Sepharose FF (Ⅰ): A critical ionic capacity for drastically enhanced capacity and uptake kinetics[J].Journal of Chromatography A, 2013, 1305(1): 76-84. [8] HONG Y, LIU N, WEI W,et al. Protein adsorption to poly(ethylenimine)-modified Sepharose FF (Ⅲ): Comparison between different proteins[J]. Journal of Chromatography A, 2014,1342(4): 30-36. [9] YU L L, SUN Y. Protein adsorption to poly(ethylenimine)-modified Sepharose FF (Ⅱ): Effect of ionic strength[J]. Journal of Chromatography A, 2013, 1305(1): 85-93. [10] TAO Y, PEREZ-ALMODOVAR E X, CARTA G,et al. Adsorption kinetics of deamidated antibody variants on macroporous and dextran-grafted cation exchangers (Ⅲ): Microscopic studies[J].Journal of Chromatography A, 2011, 1218(44): 8027-8035. [11] PEREZ-ALMODOVAR E X, WU Y G, CARTA G. Multicomponent adsorption of monoclonal antibodies on macroporous and polymer grafted cation exchangers[J]. Journal of Chromatography A, 2012,1264(22): 48-56. [12] ZHAO Y Y, DONG X Y, YU L L,et al. Protein adsorption to poly(ethylenimine)-modified Sepharose FF (Ⅵ): Partial charge neutralization drastically increases uptake rate[J]. Journal of Chromatography A, 2015, 1427: 102-110. [13] ST?HLBERG J. Retention models for ions in chromatography 1[J].Journal of Chromatography A, 1999, 855(1): 3-55. [14] FRITZ J S. Factors affecting selectivity in ion chromatography[J].Journal of Chromatography A, 2005, 1085(1): 8-17. [15] TUGCU N, SONG M, BRENEMAN C M,et al. Prediction of the effect of mobile-phase salt type on protein retention and selectivity in anion exchange systems[J]. Analytical Chemistry, 2003, 75(14):3563-3572. [16] LIU N, YU L L, SUN Y. Protein adsorption to poly(ethylenimine)-modified Sepharose FF (Ⅴ): Complicated effects of counterions[J]. Journal of Chromatography A, 2015, 1404: 44-50. [17] LIU N, WANG Z Y, LIU X G,et al. Characterization of novel mixed-mode protein adsorbents fabricated from benzoyl-modified polyethyleneimine-grafted Sepharose[J]. Journal of Chromatography A, 2014, 1372: 157-165. [18] YONG J L, NOTIDES A C, TSAY Y G,et al. Coumestrol,NBD-norhexestrol, and dansyl-norhexestrol, fluorescent probes of estrogen-binding proteins[J]. Biochemistry, 1977, 16(13): 2896-2901. [19] ?MIECHOWSKI M. Theoretical calculation of pKas of phosphoric(Ⅴ) acid in the polarisable continuum and cluster-continuum models[J]. Journal of Molecular Structure, 2009, s924/925/926: 170-174. [20] MARCUS Y. Thermodynamics of solvation of ions (Ⅴ): Gibbs free energy of hydration at 298. 15 K[J]. Journal of the Chemical Society Faraday Transactions, 1991, 87(18): 2995-2999. [21] CARTA G, UBIERA A R, PABST T M. Protein mass transfer kinetics in ion exchange media: measurements and interpretations[J].Chemical Engineering & Technology, 2005, 28(11): 1252-1264. [22] LI M, LI Y Y, YU L L,et al. Characterization of poly (allylamine) as a polymeric ligand for ion-exchange protein chromatography[J].Journal of Chromatography A, 2017, 1486: 103-109. [23] ANGELO J M, CVETKOVIC A, GANTIER R,et al.Characterization of cross-linked cellulosic ion-exchange adsorbents(Ⅰ): Structural properties[J]. Journal of Chromatography A, 2013,1319(18): 46-56. [24] TIONG W H C, DAMODARAN G, NAIK H,et al. Enhancing amine terminals in an amine-deprived collagen matrix[J]. Langmuir, 2008,24(20): 11752-11761. [25] MADISON S A, CARNALI J O. pH Optimization of amidationviacarbodiimides[J]. Industrial & Engineering Chemistry Research, 2013,52(38): 13547-13555. [26] CACACE M G, LANDAU E M, RAMSDEN J J. The Hofmeister series: salt and solvent effects on interfacial phenomena[J]. Quarterly Reviews of Biophysics, 1997, 30(3): 241-277. [27] PEREZ-ALMODOVAR E X, GLATZ B, CARTA G. Counterion effects on protein adsorption equilibrium and kinetics in polymer-grafted cation exchangers[J]. Journal of Chromatography A,2012, 1253(1253): 83-93. [28] STONE M C, TAO Y, CARTA G. Protein adsorption and transport in agarose and dextran-grafted agarose media for ion exchange chromatography: effect of ionic strength and protein characteristics[J].Journal of Chromatography A, 2009, 1216(20): 4465-4474. [29] HU X, DO D D, YU Q. Effects of supporting and buffer electrolytes (NaCl, CH3COOH and NH4OH) on the diffusion of BSA in porous media[J]. Chemical Engineering Science, 1992,47(1): 151-164. [30] MüLLER E. Properties and characterization of high capacity resins for biochromatography[J]. Chemical Engineering & Technology,2005, 28(11): 1295-1305. [31] FRANKE A, FORRER N, BUTTé A,et al. Role of the ligand density in cation exchange materials for the purification of proteins[J].Journal of Chromatography A, 2010, 1217(15): 2216-2225. date:2017-04-10. YU Linling, yulinling@tju.edu.cn supported by the National Natural Science Foundation of China (21406160, 21236005, 21621004). Effect of counterions on protein adsorption to partial neutralization poly(ethylenimine)-grafted Sepharose FF ZHAI Qiuhong, YU Linling, SUN Yan The partially neutralized poly(ethylenimine)-grafted Sepharose FF, FF-PEI-R440, exhibited higher protein capacity and faster uptake rate than its starting resin FF-PEI-L740. In this work, the influence of counterions on protein adsorption onto and elution from the FF-PEI-R440 resin was investigated with sodium salts of SCN-, Cl-,at ionic strengths of 0.03 mol·L-1and 0.06 mol·L-1. It was found that the static adsorption equilibrium of FF-PEI-R440 was significantly influenced by the counterions, and the adsorption capacity increased in the order ofat the two ionic strengths. At the low ionic strength,the counterions had no significant effect on the uptake rate and dynamic binding capacity except for SCN-. At high ionic strength, the uptake rate increased in the order ofDynamic binding capacity increased in the order ofthe same of the order of adsorption capacity. The dynamic binding capacity kept the highest values when Cl-existed at the two ionic strengths. Protein elution was little affected by counterions. The results indicated that the adsorption performance of FF-PEI-R440 was affected by counterions and the Cl-was the most favorable couterion for column operation. ion exchange chromatography; polymer grafting; counterion; adsorption equilibrium; kinetics;dynamic binding capacity; linear gradient elution TQ 033 A 0438—1157(2017)11—4178—08 10.11949/j.issn.0438-1157.20170360 2017-04-10收到初稿,2017-07-11收到修改稿。 聯(lián)系人:余林玲。 翟秋紅(1991—),女,碩士研究生。 國家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(21406160,21236005,21621004)。2.2 吸附動(dòng)力學(xué)
2.3 動(dòng)態(tài)結(jié)合容量
2.4 線性梯度洗脫
3 結(jié) 論
(Department of Biochemical Engineering and Key Laboratory of Systems Bioengineering of Ministry of Education,School of Chemical Engineering and Technology,Tianjin University,Tianjin300072,China)