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    轉(zhuǎn)運蛋白在背根神經(jīng)節(jié)參與調(diào)控神經(jīng)病理性疼痛的機制研究*

    2017-11-22 02:55:22馬冰潔劉曉明
    中國疼痛醫(yī)學(xué)雜志 2017年6期
    關(guān)鍵詞:水平

    馬冰潔 劉曉明 馬 柯

    (上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬新華醫(yī)院疼痛科,上海200092)

    ?論 著?

    轉(zhuǎn)運蛋白在背根神經(jīng)節(jié)參與調(diào)控神經(jīng)病理性疼痛的機制研究*

    馬冰潔 劉曉明 馬 柯△

    (上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬新華醫(yī)院疼痛科,上海200092)

    目的:探討背根神經(jīng)節(jié)(dorsal root ganglion, DRG)轉(zhuǎn)運蛋白(translocator protein, TSPO)對神經(jīng)病理性疼痛(neuropathic pain, NP)的影響及可能的作用機制。方法:雄性SD大鼠隨機分為3組:假手術(shù)組(Sham組)、對照組(SNI組)和給藥組(Ro組)。采用von-Frey絲測量大鼠50%機械刺激縮足閾值 (paw withdrawal threshold, PWT),在術(shù)后第7天、14天取DRG,采用免疫熒光及蛋白印跡技術(shù)檢測TSPO、腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子BDNF和蛋白激酶p-ERK。結(jié)果:①相較Sham組,SNI組DRG表達TSPO陽性細胞升高(D7:P< 0.05, D14:P< 0.01),TSPO在DRG與肽能和非肽能中小神經(jīng)元、有髓大神經(jīng)元和衛(wèi)星膠質(zhì)細胞均有共定位。②SNI組大鼠PWT術(shù)后相較Sham組明顯降低 (P< 0.01);Ro組大鼠鞘內(nèi)注射Ro5-4864后 PWT升高(D7:P< 0.01, D14:P< 0.05)、BDNF下調(diào)(P< 0.05)、p-ERK1(P< 0.01)和p-ERK2 (D7:P< 0.01, D14:P< 0.05)下降。結(jié)論:鞘內(nèi)注射TSPO配體 Ro5-4864可緩解NP大鼠的痛覺超敏,其在DRG的機制可能與抑制p-ERK、BDNF的活化有關(guān)。

    神經(jīng)病理性疼痛;轉(zhuǎn)運蛋白;腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子

    神經(jīng)病理性疼痛(neuropathic pain, NP)是由軀體感覺神經(jīng)系統(tǒng)的損傷和疾病而直接造成的疼痛。以自發(fā)性疼痛、痛覺過敏、痛覺超敏為主要臨床特征,不僅疼痛程度劇烈,且嚴(yán)重影響患者的生活質(zhì)量。對于NP,傳統(tǒng)的鎮(zhèn)痛藥物如非甾體、阿片類藥物治療效果差,其他如抗驚厥/癲癇以及抗抑郁/焦慮等藥物也都不能達到滿意療效[1]。

    轉(zhuǎn)運蛋白(translocator protein, TSPO)主要定位于線粒體外膜[2],在甾體合成相關(guān)的組織中高度表達,包括大腦和脊髓。在類固醇合成的細胞中,TSPO介導(dǎo)膽固醇從線粒體外膜向內(nèi)膜轉(zhuǎn)移,是類固醇激素及神經(jīng)甾體合成的限速步驟[3]。最近,TSPO被認為在一些神經(jīng)疾病中起關(guān)鍵作用,如腦損傷、阿爾茨海默病、炎癥性疼痛和NP。在神經(jīng)系統(tǒng)中,TSPO在神經(jīng)元和膠質(zhì)細胞中均有表達,不過其作用尚不清楚。我們以往的研究表明,NP中脊髓水平TSPO表達增加,其可能通過抑制依賴CXCL1-CXCR2的星形膠質(zhì)細胞-神經(jīng)元信號系統(tǒng)和中樞敏化,減輕痛敏[4]。不過,TSPO在其他部位的作用機制尚未探究。因此,本實驗擬采用保留性坐骨神經(jīng)損傷模型(spared nerve injury, SNI)觀察術(shù)后DRG中TSPO的表達變化規(guī)律,并觀察鞘內(nèi)給予TSPO受體激動劑對大鼠痛覺超敏的影響,旨在為治療神經(jīng)病理性疼痛提供理論依據(jù)。

    方 法

    1. 實驗動物及分組

    成年雄性SD大鼠,體重180~200 g,由新華醫(yī)院動物房提供。動物用隨機數(shù)字表法隨機分為三組,包括假手術(shù)組(Sham組):暴露但不結(jié)扎坐骨神經(jīng),術(shù)后第三天鞘內(nèi)注射溶劑;對照組(SNI組):行SNI術(shù),術(shù)后第三天鞘內(nèi)注射溶劑;給藥組(Ro組):行SNI術(shù),術(shù)后第三天鞘內(nèi)注射TSPO受體激動劑Ro5-4864。每組均在術(shù)后第7天和術(shù)后第14天處死動物并取材,每個時間點6只大鼠,其中3只用于蛋白印跡檢測,3只用于免疫熒光檢測。

    2. 主要試劑

    TSPO受體激動劑Ro5-4864 (7-Chloro-5-(4-chlorophenyl)-1,3-Dihydro-1-Methyl-2H-1,4-Benzodiazepin-2-one)用二甲基亞砜(DMSO)溶解,Ro5-4864和DMSO均購買于美國Sigma Aldrich 公司。Ro5-4864溶于20%DMSO,Ro組在SNI術(shù)后第三天鞘內(nèi)注射 2 μg(濃度為 0.5 μg/μl, 體積 4 μl),SNI組和Sham組給予同等劑量的20%DMSO。

    3. SNI模型的建立

    根據(jù)文獻中描述的方法[5],對大鼠采用10%水合氯醛400 mg/kg腹腔注射麻醉,將大鼠右側(cè)臥位,四肢固定于手術(shù)臺板上,在大鼠左側(cè)后肢上緣切開皮膚并鈍性分離肌肉,暴露坐骨神經(jīng)主干及其分支:脛神經(jīng)、腓總神經(jīng)和腓腸神經(jīng)。用5-0絲線緊緊結(jié)扎并剪斷脛神經(jīng)和腓總神經(jīng),剪去2 ~4 mm殘余神經(jīng)末端,保留腓腸神經(jīng)。操作過程中盡量避免腓腸神經(jīng)受到損傷和牽拉。依次縫合肌肉和皮膚。Sham組僅暴露坐骨神經(jīng)及其三個分支,不給予結(jié)扎和剪斷,其余步驟同SNI模型。

    4. 行為學(xué)分析

    采用Chaplan等人報道的Up-Down方法[6],在術(shù)前(D0)、術(shù)后第三天(D3)、術(shù)后第7天(D7)、術(shù)后第14天(D14)早晨9:00測定大鼠的50%機械刺激縮足閾值(paw withdrawal threshold, PWT)。將大鼠置于棕色不透光塑料籠架(20 cm×15 cm×15 cm)內(nèi)約30 min,待大鼠安靜后,采用Von Frey纖維絲根據(jù)折力大小對大鼠左后肢足底部外側(cè)皮膚進行機械性刺激,每次刺激持續(xù)6~8 s。首先用力度為2.0 g的纖維絲開始測試,測試時纖維絲微彎曲,在大鼠足底保持6~8 s,若出現(xiàn)快速縮足或舔足行為記為陽性反應(yīng)。若出現(xiàn)陽性反應(yīng),則選用相鄰刺激強度遞減的纖維絲繼續(xù)刺激;反之,若出現(xiàn)陰性反應(yīng),則選擇相鄰遞增的纖維絲給予刺激,如此反復(fù)。每次刺激間隔時間為30 s左右。根據(jù)Chaplan等人描述的方法[6]計算50%PWT。

    5. 蛋白免疫印跡分析

    腹腔注射10%水合氯醛400 mg/kg深度麻醉后,放血處死大鼠,咬骨鉗分離椎板后,迅速取出L4、L5DRG,液氮速凍后放入-80℃保存。各樣本稱取等量組織標(biāo)本后,按比例加入細胞裂解液和蛋白酶抑制劑,然后進行組織勻漿,12000 r/min 4℃離心15 min,取上清,BCA法測定蛋白濃度。將40 μg/well總蛋白加入SDS上樣緩沖液,100℃變性10 min,采用12%十二烷基硫酸鈉一聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate -poly-acrylamide gel electrop horesis, SDS-PAGE),蛋白轉(zhuǎn)至PVDF膜,轉(zhuǎn)膜時恒流300 mA,時間70 min。5%脫脂奶粉室溫封閉2 h,抗TSPO抗體(兔源,1:1 000, Santa Cruz Biotechnology, 美國),抗BDNF抗體(兔源,1:1 000, Sigma Aldrich, 美國),抗p-ERK抗體(兔源,1:1 000, 將 Cell Signaling Technology, 美國),抗ACTIN抗體(小鼠源,1:1 000,碧云天,中國)4℃搖床孵育過夜。TBST緩沖液沖洗10 min×3次,辣根過氧化物酶標(biāo)二抗室溫孵育1 h,TBST緩沖液沖洗10 min×3次,ECL顯色曝光。目標(biāo)蛋白與內(nèi)參的灰度比值表示目的蛋白的相對表達量。

    6.免疫熒光檢測

    分別于SNI術(shù)后第7天和第14天取材,腹腔注射10%水合氯醛400 mg/kg深度麻醉后,開胸經(jīng)左心室注射磷酸緩沖液(PBS)至流出液無色,灌注4%多聚甲醛固定組織后,取出L4、L5DRG,采用4%多聚甲醛后固定12 h,30%蔗糖脫水12 h至沉底,包埋制作冰凍切片,厚度10μm。切片經(jīng)10%驢血清加0.3% Triton X-100封閉破膜1 h,抗TSPO抗體(兔源,1:100, Santa Cruz Biotechnology,美國),抗NF200抗體(小鼠源, 1:1 000, Sigma Aldrich, 美國),抗CGRP抗體(小鼠源, 1:1 000,Sigma Aldrich, 美國),IB4(1:200, invitrogen, 美國)4℃ 孵育過夜。PBS緩沖液沖洗10 min×3次,熒光標(biāo)記二抗室溫孵育1 h,PBS緩沖液沖洗10 min×3次,滴加抗熒光淬滅劑 (購自碧云天,中國),封片,熒光顯微鏡下掃描拍照。

    7. 統(tǒng)計學(xué)分析

    采用SPSS 19.0統(tǒng)計軟件進行統(tǒng)計學(xué)分析,計量資料數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±SD)表示。采用重復(fù)測量的方差分析比較各組機械痛閾值;TSPO,BDNF, p-ERK蛋白表達水平同一時間點組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD法。為了分析免疫熒光,我們從每只大鼠DRG中隨機選取6片,每組每個時間點三只動物。DRG上矩形內(nèi)的圖像用強度值來分析,Image J進行計算。每片的背景強度均被扣除。P< 0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    結(jié) 果

    1. SNI導(dǎo)致NP并且誘導(dǎo)DRG中TSPO表達上調(diào)

    行為學(xué)測量分別于SNI術(shù)前(D0)、術(shù)后第3天(D3)、第7天(D7)和第14天(D14)進行。SNI組在術(shù)后第3天直至本實驗觀察的術(shù)后第14天,其PWT顯著降低,與sham組相比具有統(tǒng)計學(xué)意義(P< 0.01, 見圖1A)。我們用免疫熒光的方法檢測DRG中TSPO的表達,結(jié)果表明,sham組大鼠DRG中TSPO表達量較低,SNI術(shù)后第7天、第14天 TSPO表達量均上調(diào)(見圖1B),與蛋白印跡結(jié)果一致(見圖3B)。

    為了檢測TSPO的細胞定位,我們做了TSPO和不同神經(jīng)細胞標(biāo)志物的共染,結(jié)果表明,TSPO與NF200、IB4、CGRP和S-100均有共定位,其中在NF200(大神經(jīng)元)中分布最多,占47%(見圖2)。

    2. 鞘內(nèi)注射TSPO受體激動劑Ro5-4864減輕NP并影響DRG中TSPO的表達

    行為學(xué)表明,鞘內(nèi)注射Ro5-4864后,Ro組PWT在術(shù)后第7天、第14天均上升,與SNI組相比具有統(tǒng)計學(xué)意義 (D7:P< 0.01, D14:P< 0.05, 見圖3A)。蛋白印跡結(jié)果顯示,在術(shù)后第7天 Ro5-4864顯著增加了TSPO的表達量(P< 0.01);同時在術(shù)后第14天抑制了TSPO的表達(P< 0.05, 見圖3B)。

    3. 鞘內(nèi)注射Ro5-4864對DRG中BDNF、p-ERK的影響

    圖1 SNI引起大鼠觸誘發(fā)痛并上調(diào)DRG中TSPO的表達A:SNI術(shù)后大鼠PWT的變化,*P < 0.05,**P < 0.01;B:SNI術(shù)后DRG中TSPO的表達變化Fig.1 Spared nerve injury (SNI) induces mechanical allodynia and translocator protein (TSPO) upregulation in the DRGA: Paw mechanical withdraw threshold(PWT) after SNI. *P < 0.05, **P < 0.01, compared with sham group. B: TSPO expression in DRG after SNI.

    根據(jù)蛋白印跡結(jié)果,神經(jīng)損傷后BDNF表達水平較sham組升高(D7:P< 0.01),鞘內(nèi)注射Ro5-4864后,其表達下降(P< 0.05, 見圖4A)。同樣地,與Sham組相比,SNI術(shù)后上調(diào)p-ERK1 (P<0.01)、p-ERK2 (D7:P< 0.01, D14:P< 0.05),鞘內(nèi)注射 Ro5-4864后也降低了 p-ERK1 (P< 0.01)和p-ERK2 (D7:P< 0.01, D14:P< 0.05)的表達水平(見圖4B),與SNI組相比有統(tǒng)計學(xué)意義。

    討 論

    本研究發(fā)現(xiàn)SNI能引起大鼠DRG中TSPO、BDNF、p-ERK的表達升高,通過鞘內(nèi)注射TSPO受體激動劑可以降低大鼠的痛覺超敏現(xiàn)象,并能減少DRG中BDNF和P-ERK的表達。

    圖2 DRG中TSPO的分布免疫熒光共染表明TSPO和NF200(A)、IB4(B)、CGRP(C)和S-100(D)均有共定位。E為TSPO在DRG中各細胞分布的比例。Fig.2 Distribution of TSPO in the DRG(A-D) Double staining of immunofluorescence shows that TSPO is colocalized with NF200, IB4, CGRP and S-100.(E) Percentage of TSPO distribution in the DRG.

    圖3 鞘內(nèi)注射Ro5-4864減輕大鼠觸誘發(fā)痛并調(diào)節(jié)DRG中TSPO的表達A:鞘內(nèi)注射Ro5-4864對SNI大鼠PWT的影響;B:鞘內(nèi)注射Ro5-4864后 DRG中TSPO的表達變化。箭頭表示給藥時間。與Sham 組比較,*P < 0.05,**P < 0.01;與 SNI組比較,#P < 0.05,##P < 0.01.Fig.3 Intrathecal injection of Ro5-4864 alleviates mechanical allodynia and regulates TSPO expression in the DRGA: Effects of intrathecal injection of Ro5-4864 on PWT; B:TSPO expression in the DRG after intrathecal injection of Ro5-4864. Arrow indicates the time of intrathecal injection. *P < 0.05, **P < 0.01compared with sham group; #P < 0.05, ##P < 0.01 compared with SNI group.

    圖4 各組大鼠DRG中BDNF、p-ERK表達量的變化A:鞘內(nèi)注射Ro5-4864后DRG中BDNF的表達變化;B:鞘內(nèi)注射Ro5-4864對DRG中p-ERK的影響。與Sham組比較,*P < 0.05,**P < 0.01;與 SNI組比較,#P < 0.05,##P < 0.01.Fig.4 Changes of BDNF and p-ERK expression in the DRG in all groupsA: BDNF expression in DRG after intrathecal injection of Ro5-4864; B: Effects of intrathecal injection of Ro5-4864 on phospho–extracellular signal-regulated kinase (p-ERK) activation in the DRG. *P < 0.05, **P < 0.01compared with sham group; #P < 0.05, ##P < 0.01 compared with SNI group.

    在以往的研究中,TSPO受體激動劑被證明在治療神經(jīng)精神類疾病和疼痛中有效[7,8],我們的實驗結(jié)果也表明,鞘內(nèi)注射TSPO受體激動劑后,明顯減輕了NP大鼠的痛覺超敏現(xiàn)象。本實驗采取鞘內(nèi)給藥的方法,故TSPO受體激動劑可能在脊髓和DRG中均發(fā)揮作用。在脊髓水平,TSPO受體激動劑可能通過調(diào)節(jié)類固醇激素的合成抑制NP[7];許多學(xué)者認為TSPO的表達上調(diào)是機體在應(yīng)激狀態(tài)下的內(nèi)源性保護反應(yīng),神經(jīng)損傷后脊髓背角TSPO表達增高,當(dāng)神經(jīng)恢復(fù)正常時,TSPO表達也降至正常水平[7];我們以往的研究也表明,在脊髓中TSPO受體激動劑抑制星形膠質(zhì)細胞活化,進一步抑制依賴CXCL1-CXCR2的星形膠質(zhì)細胞-神經(jīng)元信號系統(tǒng)和中樞敏化,減輕NP中的痛敏[4]。 生理狀態(tài)下,DRG中TSPO的表達水平不高,外周神經(jīng)損傷后其表達上調(diào)。本實驗中,當(dāng)外周神經(jīng)損傷后,DRG中TSPO表達水平上升,在給予TSPO受體激動劑后,隨著大鼠機械痛閾的上升,TSPO表達水平在術(shù)后第14天較對照組下調(diào)。在類固醇合成的細胞中,TSPO介導(dǎo)膽固醇從線粒體外膜向線粒體內(nèi)膜轉(zhuǎn)移,是類固醇激素及神經(jīng)甾體合成的限速步驟[3],許多類固醇激素具有鎮(zhèn)痛作用。例如,黃體酮代謝為5α-DHT和3α,5α-THP,在DRG中感覺神經(jīng)元的興奮性由3α,5α-THP的濃度調(diào)控,3α,5α-THP可通過T型鈣通道和GABAA產(chǎn)生鎮(zhèn)痛作用[9]。因此,DRG中TSPO可能通過調(diào)控類固醇激素來產(chǎn)生鎮(zhèn)痛作用。神經(jīng)損傷后TSPO表達上調(diào),給予Ro5-4864可有助于DRG中神經(jīng)元存活和神經(jīng)突的生長、促進外周神經(jīng)再生[10],但其是否和NP有關(guān)尚有待進一步研究。

    在NP的發(fā)展過程中,DRG并非僅僅是在生理功能上被動支持連接外周和中樞神經(jīng)系統(tǒng),而是深深參與到NP的外周過程。外周神經(jīng)損傷后,DRG釋放一系列細胞因子:趨化素、生長因子、白介素、干擾素、TNF-α,早期、晚期基因發(fā)生改變,ATP產(chǎn)生變化,鈉、鉀、鈣離子通道和離子流改變,導(dǎo)致DRG神經(jīng)元超興奮;衛(wèi)星膠質(zhì)細胞的激活可進一步影響脊髓背角神經(jīng)元,導(dǎo)致中樞敏化和慢性疼痛[11]。外周神經(jīng)損傷后,DRG中BDNF mRNA和蛋白水平上升,在術(shù)后第一天其mRNA水平最高,隨后下降,至術(shù)后第14天,依然高于正常水平[12]。BDNF在DRG神經(jīng)元中合成,順行運輸?shù)郊顾璧闹袠猩窠?jīng)末梢。在脊髓背角,BDNF通過調(diào)節(jié)神經(jīng)遞質(zhì)促進中樞敏化導(dǎo)致NP[13];另一方面,BDNF可激活星形膠質(zhì)細胞和小膠質(zhì)細胞調(diào)節(jié)NP[14]。直接注射外源性BDNF可以引起機械觸誘發(fā)痛。神經(jīng)損傷后DRG中增加的BDNF可能通過TrR B受體降低BK通道活性,使初級傳入神經(jīng)元超興奮,增加脊髓的傷害性信息傳入,導(dǎo)致NP[15]。TSPO可以調(diào)節(jié)類固醇激素的合成,在糖尿病周圍神經(jīng)病變大鼠中,給予TSPO受體激動劑可提高烯醇酮(PREG)、黃體酮(PROG)等類固醇激素的水平,起到神經(jīng)保護的作用[16]。大腦損傷后BDNF水平上升,經(jīng)過類固醇激素黃體酮(PROG)治療,其Pro-BDNF和成熟BDNF水平均下降[17];也有研究發(fā)現(xiàn),脊髓損傷后BDNF水平下降,給予PROG治療后BDNF水平上升[18]。在我們的研究中,SNI術(shù)后BDNF水平上升,鞘內(nèi)注射TSPO受體激動劑后,其水平降低。因此,我們推測,在DRG 中,TSPO受體激動劑可能通過調(diào)節(jié)類固醇激素的合成來平衡BDNF的水平。在外周炎癥和NP模型中,ERK活化是DRG神經(jīng)元細胞體內(nèi)BDNF上調(diào)的原因[19]。而且,在NP模型中,DRG內(nèi)ERK磷酸化導(dǎo)致受損神經(jīng)元中NPY水平上調(diào),DRG中的NPY可以改變神經(jīng)元的興奮性,調(diào)節(jié)疼痛[19]。在CCD模型中,CCD通過活化ERK抑制A型快速失活鉀通道,引起DRG神經(jīng)元興奮[20]。在本實驗中,給予TSPO受體激動劑后,p-ERK和BDNF水平下調(diào),TSPO可能通過其下調(diào)進一步影響NP。

    總之,TSPO參與NP的調(diào)控,TSPO受體激動劑或許為治療NP提供一種新的思路。

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    THE INVOLVEMENT OF TRANSLOCATOR PROTEIN IN THE DORSAL ROOT GANGLION IN NEUROPATHIC PAIN *

    MA Bing-Jie1, LIU Xiao-Ming1, MA Ke1△
    (1Department of Pain Management, Xinhua Hospital, Shanghai Jiaotong University School of Medicine,Shanghai 200092, China)

    Objective:To investigate the role of translocator protein (TSPO) in the dorsal root ganglion (DRG)in neuropathic pain and to explore the possible mechanism.Methods:All male Sprague-Dawley rats were randomly assigned into 3 groups: the Sham group, the control group (SNI group) and the treatment group (Ro group). Vonfrey fi laments were used to measure the 50% paw withdrawal thresholds (PWT). The expression of TSPO, BDNF and p-ERK in the DRG was detected by western blot and immuno fl uorescence.Results:① Compared with the Sham group, the expression of TSPO was increased in the SNI group (D7:P< 0.05,D14:P< 0.01). The TSPO signals were colocalized with IB4, CGRP, NF-200 positive neurons and S-100 positive glial cells. ② The PWT of SNI rats was signi fi cantly decreased compared with the sham group (P<0.01), which was reversed by intrathecal injection of ligand of TSPO (Ro5-4864) (D7:P< 0.01, D14:P<0.05). Furthermore, the expression of BDNF (P< 0.05), p-ERK1 (P< 0.01) and p-ERK2 (D7:P< 0.01, D14:P< 0.05) was declined in the Ro group.Conclusion:A single intrathecal injection of TSPO agonist Ro5-4864 attenuated mechanical allodynia in neuropathic pain. The mechanisms may be partly attributed to the inhibition of p-ERK and BDNF expression in the DRG.

    Neuropathic pain; TSPO; BDNF

    10.3969/j.issn.1006-9852.2017.06.004

    國家自然基金(81371246);江蘇省博士后科研基金(1302019B)

    △通訊作者 marke72@163.com

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