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    結(jié)合分支雜交鏈?zhǔn)椒磻?yīng)與增強(qiáng)拉曼的DNA傳感器

    2017-10-19 03:46:59尤進(jìn)茂
    化學(xué)傳感器 2017年2期
    關(guān)鍵詞:樹(shù)枝狀泳道拉曼

    張 有,夏 蓮,尤進(jìn)茂*,任 銳

    (1.曲阜師范大學(xué)化學(xué)與化工學(xué)院,山東省生命有機(jī)分析重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,山東曲阜273165)(2.臨沂大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,山東省腫瘤標(biāo)志物檢測(cè)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,山東臨沂276000)

    結(jié)合分支雜交鏈?zhǔn)椒磻?yīng)與增強(qiáng)拉曼的DNA傳感器

    張 有1,夏 蓮1,尤進(jìn)茂1*,任 銳2*

    (1.曲阜師范大學(xué)化學(xué)與化工學(xué)院,山東省生命有機(jī)分析重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,山東曲阜273165)(2.臨沂大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,山東省腫瘤標(biāo)志物檢測(cè)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,山東臨沂276000)

    該研究建立了一種高靈敏度、高特異性的DNA檢測(cè)方法,結(jié)合了分支雜交鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(B-HCR)與表面增強(qiáng)拉曼散射(SERS)兩種技術(shù),為實(shí)現(xiàn)這種結(jié)合,設(shè)計(jì)讓靶DNA充當(dāng)樹(shù)枝狀DNA大分子和SERS增強(qiáng)基底的銜接單元;基于經(jīng)典的雜交鏈?zhǔn)椒磻?yīng)而設(shè)計(jì)分支雜交鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(B-HCR),還充當(dāng)了樹(shù)枝狀DNA大分子和SERS的接頭。結(jié)合了B-HCR與SERS兩種方式的優(yōu)點(diǎn),B-HCR使得在自組裝中的每一輪生長(zhǎng)都組裝上更多的分支,從而實(shí)現(xiàn)拉曼活性基團(tuán)的聚集;并結(jié)合SERS技術(shù),增強(qiáng)放大信號(hào),從而提高了靈敏度;而DNA雜交反應(yīng)的序列特異性保證了整個(gè)方法對(duì)于給定靶DNA的特異性。所報(bào)道的方法具備較高的靈敏度,還證明了足夠的特異性來(lái)區(qū)分具有相似序列的DNA。

    DNA;分支雜交鏈?zhǔn)椒磻?yīng);表面增強(qiáng)拉曼散射;6’-羧基-x-羅丹明(ROX)

    Abstract:In this study,an assay for the detection of DNA of low abundance was established.The assay was constructed by combining of Branching Hybridization Chain Reaction(B-HCR)and Surface-Enhanced Raman Scattering(SERS).The target DNA was designed to serve as a linker between the B-HCR and SERS.The advantages of the B-HCR and SERS were combined.B-HCR provides more branching in each round of growth of the assembly,thus leading to the mass aggregation of the Raman-active tags;thus both amplification (through B-HCR)and enhancement(through SERS)were applied on the signal,bringing about desirable sensitivity;also,specificity was provided,through the sequence-specificity of DNA hybridization in the capturing of the target DNA on the SERS matrix,and the triggering of the B-HCR.Desirable sensitivity was achieved,and required specificity against DNA inputs with similar sequences was testified.

    Key words:DNA;hybridization chain reaction;surface-enhanced raman scattering;6-carboxy-x-rhodamine

    0 引言

    低含量DNA的檢測(cè),在生物化學(xué)研究、醫(yī)學(xué)研究、病原體檢測(cè)以及診斷中具有重大意義。這就要求開(kāi)發(fā)簡(jiǎn)單、快速、高靈敏度和高選擇性的DNA分析方法。生物化學(xué)傳感器中的DNA傳感器可以分為靶標(biāo)識(shí)別、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)以及放大信號(hào)產(chǎn)生等幾部分,其中靶標(biāo)識(shí)別部分承擔(dān)分析方法的特異性,信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和放大部分通常對(duì)微量靶標(biāo)產(chǎn)生的微小信號(hào)進(jìn)行放大處理,承擔(dān)分析方法的靈敏度;而產(chǎn)生的信號(hào)將作為分析方法的讀數(shù)輸出。近年來(lái),設(shè)計(jì)簡(jiǎn)單、易于操作的雜交鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(HCR)是新興的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和放大方法,因此得到了廣泛關(guān)注和使用。

    HCR的設(shè)計(jì)特征是引發(fā)自組裝,經(jīng)典HCR中,組裝元件是兩種發(fā)夾DNA,只有在引入引發(fā)鏈的情況下,才進(jìn)行自組裝反應(yīng)形成聚集產(chǎn)物。分支型HCR是Pierce等[1]首先報(bào)道的,是一種動(dòng)態(tài)DNA裝配方式[2],其中的DNA可以被引發(fā)而形成樹(shù)枝狀納米結(jié)構(gòu)。然而,其需要為每一代樹(shù)突生長(zhǎng)提供新的DNA,因此該方法不是自發(fā)的,與后來(lái)的非線(xiàn)性HCR過(guò)程尚有一定差距[3]。Chandran等[4]也報(bào)道了HCR的非線(xiàn)性DNA生長(zhǎng)方式,其理論上來(lái)說(shuō),其是通過(guò)使用雙環(huán)結(jié)構(gòu)的發(fā)夾DNA來(lái)觸發(fā),從而形成指數(shù)生長(zhǎng)的樹(shù)狀納米結(jié)構(gòu)。然而,設(shè)計(jì)的組裝過(guò)程涉及相對(duì)長(zhǎng)的DNA發(fā)夾莖的自發(fā)打開(kāi),在有限的速率內(nèi),這可能產(chǎn)生線(xiàn)性生長(zhǎng)過(guò)程而不是樹(shù)突生長(zhǎng)。其并沒(méi)有提供如組裝的納米結(jié)構(gòu)的形態(tài)或指數(shù)生長(zhǎng)動(dòng)力學(xué)的實(shí)體證據(jù)。到目前為止,構(gòu)建可行的非線(xiàn)性HCR系統(tǒng)的目標(biāo)仍然是難以捉摸的。

    雜交鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(HCR)的概念不僅僅限于線(xiàn)性DNA的聚合。它可以擴(kuò)展到更復(fù)雜的多DNA的裝配,其在觸發(fā)過(guò)程下可以組裝成其他分支甚至樹(shù)枝狀的納米結(jié)構(gòu),實(shí)現(xiàn)呈指數(shù)生長(zhǎng)的非線(xiàn)性雜交DNA系統(tǒng)。然而,盡管增加了序列設(shè)計(jì)的復(fù)雜性,控制系統(tǒng)的自發(fā)啟動(dòng)仍然是一個(gè)巨大的挑戰(zhàn)[5]。

    此研究提出一個(gè)符合動(dòng)力學(xué)控制的樹(shù)枝狀DNA生長(zhǎng)的非線(xiàn)性HCR系統(tǒng)。這一系統(tǒng)顯示出對(duì)于指數(shù)生長(zhǎng)動(dòng)力學(xué)的良好控制。表面增強(qiáng)拉曼散射(SERS)是作為一種新型的信號(hào)產(chǎn)生方法,近年來(lái)在生物分析化學(xué)中得到廣泛關(guān)注與應(yīng)用。所設(shè)計(jì)的方案中組裝成的樹(shù)枝大分子DNA結(jié)合表面增強(qiáng)拉曼散射技術(shù),其中帶有羅丹明信號(hào)的樹(shù)枝狀大分子DNA結(jié)合金薄膜基底,將產(chǎn)生很高的SERS響應(yīng),最終實(shí)現(xiàn)對(duì)靶DNA的靈敏度檢測(cè)以及高選擇性區(qū)分。

    1 設(shè)計(jì)原理

    B-HCR和SERS結(jié)合的檢測(cè)方法設(shè)計(jì)是由靶DNA作為紐帶,將B-HCR放大和SERS增強(qiáng)機(jī)制兩部分結(jié)合為一體,因而此檢測(cè)體系能夠同時(shí)享有兩部分的信號(hào)放大/增強(qiáng)效應(yīng),從而期望獲得較高的靈敏度(圖1)。

    兩部分銜接的具體方式為:構(gòu)建具備捕獲鏈的SERS增強(qiáng)基底,通過(guò)雜交的方式將靶DNA捕獲在其表面;其后,以靶DNA的暴露部分作為引發(fā)鏈,引發(fā)B-HCR的雜交組裝。B-HCR的組裝單元都是由拉曼活性基團(tuán)標(biāo)記的。其結(jié)果是,在SERS的基底上形成B-HCR組裝產(chǎn)物,其中聚集了大量拉曼活性基團(tuán)。SERS基底對(duì)上述拉曼活性基團(tuán)聚集體的特征拉曼散射進(jìn)行增強(qiáng),從而產(chǎn)生放大/增強(qiáng)的信號(hào),提供雙重的高靈敏度貢獻(xiàn)。

    圖1 B-HCR與SERS檢測(cè)方法的流程示意圖Fig.1 Scheme of the assay that combined BHCR and SERS

    B-HCR部分依據(jù)文獻(xiàn)[6]設(shè)計(jì),各個(gè)組裝單元均為與靶DNA鏈序列匹配的DNA鏈或DNA鏈復(fù)合體。所有進(jìn)入最終B-HCR組裝體的組裝單元,均用拉曼活性基團(tuán)ROX(6’-羧基羅丹明)標(biāo)記。

    SERS增強(qiáng)基底則采用金薄膜與金納米粒子雜交組裝的方式構(gòu)建,其上留有捕獲鏈作為結(jié)合靶DNA的接口。為構(gòu)建SERS增強(qiáng)基底,準(zhǔn)備兩種部分互補(bǔ)的巰基修飾的DNA,分別記為DNAA1和DNA-A2。在玻璃支持的金薄膜上結(jié)合DNA鏈A1,同時(shí)制備20 nm左右的金納米顆粒,分為兩類(lèi),每一類(lèi)分別結(jié)合DNA鏈A1和A2。三者(結(jié)合A1的金薄膜、結(jié)合A1的金納米顆粒和結(jié)合A2的金納米顆粒)通過(guò)DNA雜交相互結(jié)合,形成富含金納米顆粒的聚集物,以起到增強(qiáng)拉曼散射信號(hào)的作用;同時(shí)留有的捕獲鏈可以捕獲靶DNA。

    2 實(shí)驗(yàn)部分

    2.1 主要儀器與試劑

    儀器:

    聚丙烯酰胺凝膠電泳儀(DYCZ-28C型)(北京六一儀器廠(chǎng));透射電子顯微鏡 (JEM-2100E型)(日本電子光學(xué)公司);拉曼激光顯微鏡(inVia)(英國(guó)Renishaw公司);紫外分光光度計(jì)(Cary 50 UV–Vis–NIR)(Varian)。

    試劑:

    氯金酸(上?;瘜W(xué)試劑公司);檸檬酸鈉(天津博迪化工股份有限公司)。

    所使用的DNA序列如表1所示。

    表1 BHCR-SERS檢測(cè)體系所用的DNA序列Tab.1 DNA sequences used in BHCR-SERS assay

    另外:實(shí)驗(yàn)所用的核酸均從上海生工合成,實(shí)驗(yàn)中所用的所有玻璃器具都經(jīng)過(guò)食人魚(yú)洗液浸泡洗滌,并用超純水沖洗并烘干使用。

    2.2 實(shí)驗(yàn)步驟

    2.2.1 表面增強(qiáng)拉曼散射(SERS)增強(qiáng)基底的構(gòu)建

    ①根據(jù)文獻(xiàn)[7],采用檸檬酸鈉還原氯金酸的方法制備納米金顆粒(AuNPs)。

    ②根據(jù)文獻(xiàn)[8],進(jìn)行納米金顆粒連接 SHDNA: 準(zhǔn)備 200 μL 的 SH-DNASH-DNA (1×10-6mol/L), 向其中加入 10 μL 的 TCEP(10mmol/L),保持37℃下震蕩反應(yīng)1h,活化DNA上的巰基,向其中加入納米金顆粒1mL和50μLpH為5.6的醋酸鹽緩沖液,保持37℃下避光震蕩反應(yīng)18h。

    ③制備金薄膜基底:A1(AuNPs-SH-DNA)與A2(AuNPs-SH-DNA)雜交)。

    ④探針準(zhǔn)備(A探針:A鏈與A封閉鏈雜交;B探針:B鏈與B封閉鏈雜交)。

    2.2.2 分支雜交鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(BHCR)組裝產(chǎn)物的制備

    分別向離心管中加入濃度為1.0×10-6mol/L的 A探針 25 μL與濃度為 1.0×10-6mol/L的B探針 50 μL,充分混勻, 加入 10 μL濃度為1.0×10-8mol/L的靶 DNA,加入 15 μL濃度為1.0×10-8mol/L的混合輔助鏈AB,然后保持37℃避光振蕩反應(yīng)2 h,反應(yīng)結(jié)束后把樣品進(jìn)行10000 r/min離心處理20 min,離心后的樣品用濃度為0.01 mol/L的PBS緩沖溶液洗滌三次,最后PBS緩沖液稀釋至30 μL備用。

    2.2.3 放大信號(hào)的測(cè)量

    取生物條碼化的金薄膜3~4 μL,均勻滴加到預(yù)處理過(guò)的金片表面,在室溫下孵育至少18 h形成穩(wěn)定的鍵合結(jié)構(gòu)。自發(fā)反應(yīng)4 h后,取2.5 μL樹(shù)枝狀合成產(chǎn)物滴加到金薄膜結(jié)構(gòu)的SERS基底上。室溫下靜置自然干燥約40 min,然后在拉曼顯微鏡上選取區(qū)域進(jìn)行拉曼信號(hào)檢測(cè)。

    3 結(jié)果與討論

    3.1 納米金顆粒的TEM表征

    圖2顯示的是AuNPs的透射電鏡 (TEM)表征結(jié)果,由圖可知,所制備的AuNPs分布均勻,大小約為20 nm。

    圖2 納米金顆粒的電鏡圖Fig.2 TEM image of the prepared gold nanoparticles

    3.2 納米金顆粒等紫外表征

    使用紫外分光光度計(jì)分別對(duì)AuNPs、AuNPs-SH-DNA、SH-DNA進(jìn)行紫外掃描,如圖3所示,SH-DNA的紫外吸收特征峰為260 nm左右處,AuNPs的特征峰為520 nm左右處,AuNPs-SHDNA的紫外可見(jiàn)吸收光譜在260 nm處有明顯特征吸收峰,且在520 nm處有明顯吸收峰,說(shuō)明SH-DNA成功的連接在AuNPs上。

    圖3 金納米顆粒及結(jié)合DNA后的紫外-可見(jiàn)吸收光譜圖a:金納米顆粒;b:巰基修飾的DNA;c:金納米顆粒與巰基修飾DNA的結(jié)合體Fig.3 UV-Vis spectra of the gold nanoparticles(AuNPs)and the complex of AuNP-DNA a:AuNPs;b:HS-modified DNA;c:complex of AuNPs and HS-modified DNA

    3.3 聚丙烯酰胺凝膠電泳(PAGE)表征

    用聚丙烯酰胺凝膠電泳成像(PAGE)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)表征。如圖4所示:泳道m(xù),marker;

    圖4 BHCR-SERS檢測(cè)方法的聚丙烯酰胺凝膠電泳驗(yàn)證Fig.4 Polyacrylamide gel electrophoresis(PAGE)characterization of the process of BHCR-SERS assay

    泳道A,DNA 產(chǎn)物(純化后);

    泳道B,靶DNA;

    泳道 C,A探針:2 μmol/L的 A底物與 2 μmol/L的A封閉鏈37℃雜交孵育2 h;

    泳道 D,B探針:2 μmol/L的 B底物與 2 μmol/L的B封閉鏈37℃雜交孵育2 h;

    泳道E,DNA產(chǎn)物(純化前)。

    對(duì)比泳道B (靶DNA)、C和D (兩種BHCR組裝部件),與首次組裝產(chǎn)物(泳道E),證實(shí)了分支雜交鏈?zhǔn)椒磻?yīng)組裝的發(fā)生,證據(jù)為產(chǎn)物中明顯出現(xiàn)了遷移率極低(位于電泳起點(diǎn)附近)的條帶,在作為原料的B、C和D泳道中均未出現(xiàn),證實(shí)了總分子量極高的組裝物的產(chǎn)生。對(duì)泳道E的產(chǎn)物進(jìn)行純化的結(jié)果為泳道A,顯示過(guò)量的探針以及副產(chǎn)物已全部純化去除,已成功合成了樹(shù)枝狀DNA組裝物。

    3.4 實(shí)驗(yàn)條件優(yōu)化:反應(yīng)體系時(shí)間的優(yōu)化

    準(zhǔn)備 A 探針各 25 μL(10-6mol/L)和 B 探針50 μL (10-6mol/L), 向其中加入 25 μL 靶 DNA(10-8 mol/L),將體系保持在37℃下孵育1 h至5 h。如圖5,SERS信號(hào)達(dá)到最大平衡處約為孵育3 h的時(shí)候。該時(shí)間即為反應(yīng)的最佳時(shí)間。

    圖5 反應(yīng)時(shí)間對(duì)BHCR-SERS檢測(cè)方法的響應(yīng)的影響Fig.5 Effect of reaction time on the responses of BHCRSERS assay

    3.5 拉曼信號(hào)放大實(shí)驗(yàn)

    使用靶DNA鏈引發(fā)整個(gè)自組裝體系,反應(yīng)時(shí)間為3 h,其中靶 DNA濃度分別為a)1.0×10-12mol/L,b)5.0×10-12mol/L,c)1.0×10-11mol/L,d)5.0×10-11mol/L,e)1.0×10-10mol/L,f)5.0×10-10mol/L,g)1.0×10-9mol/L,h)5.0×10-9mol/L,i)1.0×10-8mol/L。如圖6、圖7,根據(jù)在1499 cm-1位置(減去空白響應(yīng)后)的SERS響應(yīng)與靶DNA的濃度之間繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)。在1.0×10-12mol/L到10-8mol/L的范圍內(nèi),回歸方程為ΔI=1.60 lgc+19.61,根據(jù)3σ規(guī)則,檢測(cè)限(LOD)確定為 5.6×10-13mol/L。

    3.6 選擇性實(shí)驗(yàn)

    研究了靶DNA以及幾種錯(cuò)配的DNA(長(zhǎng)度和序列相近),使用完整反應(yīng)體系,從而探討了選擇性實(shí)驗(yàn)。如圖8可知:靶DNA引發(fā)的樹(shù)枝狀DNA合成有很強(qiáng)的SERS響應(yīng),而其他幾種錯(cuò)配的DNA無(wú)法引發(fā)自組裝反應(yīng)生成樹(shù)枝狀DNA,SERS響應(yīng)很低,因此實(shí)驗(yàn)對(duì)于相似序列有較強(qiáng)的選擇能力。

    圖6 BHCR-SERS檢測(cè)方法的原始響應(yīng)曲線(xiàn)Fig.6 The SERS response curves of the BHCR-SERS assay

    圖7 BHCR-SERS檢測(cè)方法的工作曲線(xiàn)Fig.7 The Calibration Curve of the BHCR-SERS assay

    圖8 BHCR-SERS檢測(cè)方法檢測(cè)DNA的選擇性a)空白響應(yīng);b)-d)錯(cuò)配DNA b-d(序列見(jiàn)表1)Fig.8 Selectivity of the BHCR-SERS assay against the controlsa)blank;b)-d)mismatched DNA b-d (Sequences shown in Table 1)

    4 結(jié)論

    總而言之,該研究建立了一種高靈敏度、高特異性的DNA檢測(cè)方法,結(jié)合了分支雜交鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(B-HCR)與表面增強(qiáng)拉曼散射(SERS)兩種技術(shù),為實(shí)現(xiàn)這種結(jié)合,設(shè)計(jì)讓靶DNA充當(dāng)樹(shù)枝狀DNA大分子和SERS增強(qiáng)基底的銜接單元;該項(xiàng)研究中,基于經(jīng)典的雜交鏈?zhǔn)椒磻?yīng)而設(shè)計(jì)分支雜交鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(B-HCR),還充當(dāng)了樹(shù)枝狀DNA大分子和SERS的接頭。結(jié)合了B-HCR與SERS兩種方式的優(yōu)點(diǎn),靶DNA用于引發(fā)兩探針自組裝成樹(shù)枝大分子DNA,使得兩探針自組裝成樹(shù)枝狀DNA大分子,使納米結(jié)構(gòu)的鏈支化組裝生長(zhǎng)和指數(shù)地增加信號(hào)強(qiáng)度。還充當(dāng)了分支雜交鏈?zhǔn)椒磻?yīng)和表面增強(qiáng)拉曼散射增強(qiáng)的接頭。B-HCR使得在自組裝中的每一輪生長(zhǎng)都組裝上更多的分支,從而實(shí)現(xiàn)拉曼活性基團(tuán)的聚集;并結(jié)合SERS技術(shù),增強(qiáng)放大信號(hào),從而提高了靈敏度;而DNA雜交反應(yīng)的序列特異性保證了整個(gè)方法對(duì)于給定靶DNA的特異性。該方法具備較高的靈敏度,檢測(cè)限達(dá)到5.6×10-13mol/L,還證明了足夠的特異性來(lái)區(qū)分具有相似序列的DNA。

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    DNA sensor that combined branching hybridization chain reaction and enhanced raman scattering

    Zhang You1,Xia Lian1,You Jin-mao1*,Ren Rui2*
    (1.Key Laboratory of Life-Organic Analysis of Shandong Province,Qufu Normal University,Qufu 273165,China)(2.Shandong Province Key Laboratory of Detection Technology for Tumor Makers,School of Chemistry and Chemical Engineering,Linyi University,Linyi 276000,China)

    *通信聯(lián)系人,E-mail:(尤進(jìn)茂)jmyou6304@163.com;(任銳)greeneese@163.com,15653976530

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