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    不同生態(tài)修復(fù)手段對硝態(tài)氮和銨態(tài)氮脫除機(jī)制的影響

    2017-09-06 03:44:50昱,王浩,2
    環(huán)境科技 2017年5期
    關(guān)鍵詞:伊樂藻沉水植物硝化

    王 昱,王 浩,2

    (1.江蘇省環(huán)境科學(xué)研究院 江蘇省環(huán)境工程重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 南京 210029;2.南京大學(xué)環(huán)境學(xué)院 污染控制與資源化研究國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 南京 210023)

    0 引言

    近年來,隨著社會經(jīng)濟(jì)快速發(fā)展及人口不斷增加,大量工農(nóng)業(yè)、漁業(yè)及生活污水進(jìn)入周圍水環(huán)境,其中富含的氮素營養(yǎng)鹽會導(dǎo)致水體富營養(yǎng)化,對地表水環(huán)境造成嚴(yán)重的破壞[1-3]。貢湖是太湖的重要組成部分之一,由于城市的快速擴(kuò)張,面臨著自凈能力下降、生態(tài)系統(tǒng)退化及生物多樣性降低等問題。親水河作為各水域水體流入貢湖前的主要緩沖河道,對攔截地表徑流中各類污染物質(zhì)進(jìn)入貢湖起到重要作用。河道水體氮素營養(yǎng)鹽的升高,會嚴(yán)重影響貢湖的生物多樣性及系統(tǒng)穩(wěn)定性。因此,采取合適方法降低河道氮素營養(yǎng)鹽濃度,具有重要的意義。

    目前,國內(nèi)外學(xué)者對植物及脫氮微生物的生態(tài)修復(fù)方法去除河道水體氮素營養(yǎng)鹽進(jìn)行了大量研究[4-6]。然而,以往的研究主要針對河道水體氮素脫除效果,并未對氮素去除過程的定量貢獻(xiàn)進(jìn)行研究,對不同生態(tài)修復(fù)手段下,反硝化過程及植物吸收降低水體硝態(tài)氮和銨態(tài)氮的機(jī)制研究尚不多見[7]。

    因此,研究通過運(yùn)用脫氮微生物(INCB)與伊樂藻(Elodea nuttallii)相結(jié)合的生態(tài)修復(fù)手段,通過室內(nèi)模擬實(shí)驗(yàn)分析添加INCB及種植沉水植物對河道反硝化速率及植物吸收的影響,探討不同生態(tài)修復(fù)手段對硝態(tài)氮和銨態(tài)氮的脫除機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)樣品采集

    實(shí)驗(yàn)樣品于 2015年4月在親水河(32°17′52″N,120°20′20″E)進(jìn)行采集,見圖1。 采用特制有機(jī)玻璃柱狀采泥器采集24根完整無擾動底泥柱,每柱保留泥樣約40 cm。同時(shí)采集原位上覆水及長勢良好伊樂藻樣品,于4 h內(nèi)送至實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行培養(yǎng)前處理。

    圖1 貢湖灣入湖河道-親水河采樣點(diǎn)地理位置示意

    1.2 室內(nèi)實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)

    將24根底泥柱樣分成平行的6排,每排柱樣使用4個不同的處理方式,分別為:A組,不做任何處理的裸泥組,僅作為對照;B組,僅添加60±1 g脫氮微生物INCB,INCB的制備與應(yīng)用已在相關(guān)研究中詳細(xì)描述[8];C組,植入5株長約10 cm長勢良好的伊樂藻;D組,添加INCB和沉水植物。保持室溫約20±1℃進(jìn)行為期6個月的室內(nèi)培養(yǎng),培養(yǎng)接受后,對相關(guān)理化數(shù)據(jù)及15N同位素豐度進(jìn)行測定。

    1.3 樣品測定指標(biāo)及方法

    1.3.1 水質(zhì)測定方法

    紫外分光光度法測定硝態(tài)氮;納氏試劑分光光度法測定氨態(tài)氮;過硫酸鉀氧化紫外分光光度法(日本島津UV-2450)測定TN;便攜式溶氧儀(YSI 550A)進(jìn)行測定溶解氧。

    1.3.2 同位素15N的添加

    經(jīng)過6個月的室內(nèi)培養(yǎng)后,系統(tǒng)內(nèi)生態(tài)系統(tǒng)趨于穩(wěn)定,向平行的3排泥柱分別加入同位素標(biāo)記的①Na15(NO3ω(15N)=99.16);②15NH4(Clω(15N)=99.11),使得每個處理組中的15NO3-和15NH4+濃度約為100 μmol/L,同位素添加后使用橡膠塞密封,在室溫下(20±1℃)進(jìn)行無頂空密閉靜態(tài)培養(yǎng)24 h,培養(yǎng)結(jié)束后進(jìn)行反硝化和植物吸收速率的測定。

    1.3.3 反硝化速率的測定

    使用注射器采集各處理組上覆水,溢流收集到密封良好的采集管中,加入約0.5 mL質(zhì)量濃度為500 g/L的ZnCl2溶液,用以抑制管中微生物活性,恒溫保存樣品,使用膜接口質(zhì)譜儀(Prisma QMS200f)對反應(yīng)體系中溶解性氣體28N2(14N14N),29N2(14N15N),30N2(15N15N)的濃度進(jìn)行測定。反硝化速率計(jì)算公式如下[9-10]:

    式中:r29和r30分別為同位素氮?dú)?9N2及30N2的產(chǎn)生速率;D15為利用15N的反硝化速率;D14為利用14N的反硝化速率;Dw為非耦合硝化反硝化速率;Dn為耦合硝化反硝化速率;Dtotal為總反硝化速率;δ為室內(nèi)模擬實(shí)驗(yàn)柱中15N豐度,X代表NO3-或NH4+,a代表添加同位素前,b代表添加同位素后。

    1.3.4 植物吸收速率測定

    采集實(shí)驗(yàn)柱中伊樂藻樣品,洗凈表面泥土后,于80℃烘箱中烘至恒重,使用研缽將干燥后的伊樂藻樣品研磨成均勻粉末后過0.15 mm篩,于1/10 000天平稱取定量植物粉末樣品,使用同位素比質(zhì)譜儀和在線元素分析儀 (Europa Scientific Integra,Crewe,UK)對樣品15N豐度及氮素百分比進(jìn)行測定。植物吸收速率計(jì)算公式如下[11]:

    式中:δ15N(water,time=ambient)為添加植物前水體中15N;δ15N(water,time=0)為添加植物后即刻水體中15N;δ15N(veg,time=ambient)為添加植物前植物中15N;δ15N(veg,time=t)為培養(yǎng)結(jié)束后植物中15N;ω(TN(veg))為植物中總氮,g/kg;Biomass(veg)為實(shí)驗(yàn)柱中伊樂藻總生物量,g/m2。

    1.3.5 數(shù)據(jù)分析方法

    使用Excel數(shù)據(jù)包對實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行歸納;采用Origin 8.6進(jìn)行圖形繪制;數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)采用SPSS 13.0進(jìn)行分析;采用單向方差分析(ANOVA)來區(qū)別不同處理組樣品間的差異;在不同組間的顯著性差異水平設(shè)置為P<0.05。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 氧侵蝕深度測定結(jié)果分析

    通過對泥水界面底泥溶解氧侵蝕深度的研究發(fā)現(xiàn),4個不同的處理組間存在顯著性差異(P<0.05)。C,D這2組(種植伊樂藻)溶解氧侵蝕深度約30 mm,而A,B這 2組(未種植伊樂藻)中溶解氧侵蝕深度僅約14 mm,見圖2。由于植物根部釋氧,C組和D組中氧侵蝕深度得到增加,在根系周圍底泥一定范圍內(nèi)形成好氧-缺氧微環(huán)境,還導(dǎo)致根區(qū)底泥氧化還原電位的變化[12],提升了氮素轉(zhuǎn)化效率。

    圖2 不同處理組中底泥溶解氧侵蝕深度

    2.2 反硝化速率測定結(jié)果分析

    15NO3-和15NH4+添加后經(jīng)過24 h靜態(tài)培養(yǎng),不同處理組中反硝化速率見圖3(a:添加15NO3-;b:添加15NH4+),各處理組間反硝化速率存在顯著差異(P<0.05)。相較于其他3個處理組,在添加15NO3-和15NH4+的處理組中,C組總反硝化速率均最低,分別為82.01和49.65 μmol/(m2·h); 添加INCB的D組具有最高的反硝化速率,分別為 258.6 和 156.49 μmol/(m2·h);同時(shí),添加了INCB的處理組(B組和D組)反硝化速率顯著高于未添加INCB的處理組(P<0.05),INCB中富含大量脫氮微生物在系統(tǒng)中得到釋放,增加氮循環(huán)菌數(shù)量,促進(jìn)氮素向氮?dú)獾霓D(zhuǎn)化,提高系統(tǒng)內(nèi)的反硝化速率[13]。

    對于添加15NO3-和15NH4+的處理組,在A組中均具有最低的耦合反硝化速率,分別為52.8和25.1 μmol/(m2·h);而在D組,具有最高的耦合反硝化速率,分別為 177.3和 98.5 μmol/(m2·h)。 在處理組 D 中,由于INCB的添加,增加了系統(tǒng)中脫氮微生物豐度,植物的種植為微生物提供附著生長的表面,同時(shí),植物分泌有機(jī)物為脫氮微生物提供碳源,從而促進(jìn)了耦合反硝化作用[14-16]。添加15NO3-處理組中反硝化速率約是添加15NH4+的處理組1.5倍,結(jié)果說明模擬系統(tǒng)中微生物對NO3-的轉(zhuǎn)化率要高于NH4+,NH4+經(jīng)過硝化細(xì)菌的氧化變?yōu)閬喯跛猁}(NO2-)和硝酸鹽(NO3-),從而被反硝化微生物利用,生成N2或N2O,其被利用速率相較于15NO3-慢,從而導(dǎo)致添加15NO3-處理組具有更高的反硝化速率。

    圖3 不同處理組中反硝化速率

    2.3 植物吸收速率測定結(jié)果分析

    添加同位素15NO3-和15NH4+后,沉水植物伊樂藻對15N的吸收速率見圖4。其中,種植沉水植物的C和D組植物中15N可檢測豐度得到增加,伊樂藻對15NO3-的吸收速率分別為119.93和83.52 μg/(m2·h),對15NH4+的吸收速率分別為208.42和162.07μg/(m2·h)。

    不同處理組中伊樂藻對氮素的吸收速率不同,對于僅添加伊樂藻的處理組C,其植物吸收速率高于組D(伊樂藻+INCB),由于INCB的添加,脫氮微生物豐度得到增加,從而與伊樂藻形成氮素競爭[17],部分15N被微生物轉(zhuǎn)化為含氮素氣體而脫除[18]。對比添加15NO3-的處理組,添加15NH4+的處理組中伊樂藻大約是對15NO3-吸收速率的2倍,結(jié)果說明伊樂藻對銨態(tài)氮具有更高的吸收量[19],沉水植物伊樂藻中15N同位素的大量存積,說明硝態(tài)氮和銨態(tài)氮均可以被植物大量吸收,水生植物對氮素的吸收作用是河道系統(tǒng)脫氮的主要途徑之一。

    圖4 不同處理組植物吸收速率

    2.4 反硝化速率與植物吸收速率比較分析

    對反硝化速率與植物吸收速率進(jìn)行統(tǒng)一換算,對比見表1。

    表1 反硝化速率與植物吸收率比較μmol·m-2·h-1

    由表1可知,對于未添加沉水植物的處理組A和B,反硝化是主要脫氮過程;添加15NO3-的處理組中,組C 和D反硝化速率分別為82.01和258.6μmol/(m2·h),植物吸收速率分別為 1.90 和 1.33 μmol/(m2·h);對于添加15NH4+的處理組,組C和D反硝化速率分別為49.65 和 156.49 μmol/(m2·h),植物吸收速率分別為10.97 和 8.53 μmol/(m2·h)。 添加不同形態(tài)氮素的處理組中,反硝化速率脫氮速率均要高于植物吸收速率,沉水植物伊樂藻對反硝化的促進(jìn)作用要大于其對氮素的吸收作用。D組中由于INCB的加入,降低了植物吸收率,但氮素總體去除率仍大于只添加INCB和伊樂藻的處理組。結(jié)果表明,反硝化和植物吸收均能去除河道水體氮素,相較于植物吸收,微生物反硝化作用是更為主要的氮素脫除途徑[20]。

    3 結(jié)論

    (1)沉水植物伊樂藻的種植不僅通過自身吸收作用脫除水體氮素,還改變了泥水界面微環(huán)境,增加氧侵蝕深度,提供良好的好氧-缺氧生存環(huán)境,促進(jìn)微生物的反硝化脫氮過程。

    (2)通過添加INCB并種植伊樂藻,增加了微生物反硝化速率,在添加INCB和種植伊樂藻的處理組中反硝化速率及氮素脫除效率均為最高。

    (3)對比添加15NO3-的處理組,添加15NH4+的處理組中伊樂藻吸收速率大約是對15NO3-的2倍,而添加15NO3-處理組中反硝化速率約是添加15NH4+的處理組1.5倍,與植物吸收相比,反硝化脫氮是主要的脫氮方式。

    (4)室內(nèi)生態(tài)模擬實(shí)驗(yàn)結(jié)果說明,植物吸收和微生物反硝化作用均是水體氮素脫除的有效途徑,通過對INCB和植物的聯(lián)合應(yīng)用,可以提高水體氮素的去除速率,促進(jìn)河道水體凈化。

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