滯育及不同蟲(chóng)態(tài)下亞洲玉米螟內(nèi)參基因的篩選

劉 寧，張統(tǒng)書(shū)，李忠洲，段立佳，李帥強(qiáng)，董 輝*，叢 斌*

滯育及不同蟲(chóng)態(tài)下亞洲玉米螟內(nèi)參基因的篩選

劉 寧1，張統(tǒng)書(shū)1，李忠洲2，段立佳1，李帥強(qiáng)1，董 輝1*，叢 斌1*

(1.沈陽(yáng)農(nóng)業(yè)大學(xué)植物保護(hù)學(xué)院，沈陽(yáng) 110161;2.撫順出入境檢驗(yàn)檢疫局，撫順113006)

篩選出滯育狀態(tài)下以及不同蟲(chóng)態(tài)下亞洲玉米螟Ostriniafurnacalis(Guenée)的實(shí)時(shí)熒光定量PCR(RT-qPCR)最穩(wěn)定內(nèi)參基因，本結(jié)果為研究不同蟲(chóng)態(tài)及滯育1個(gè)月，滯育2個(gè)月，滯育3個(gè)月和滯育4個(gè)月的亞洲玉米螟目的基因表達(dá)水平提供參考依據(jù)。本文以不同蟲(chóng)態(tài)及滯育狀態(tài)下的亞洲玉米螟為試驗(yàn)材料，應(yīng)用RT-qPCR技術(shù)檢測(cè)β-actin，18SrRNA，EF1-α和RPS3共4個(gè)候選內(nèi)參基因的表達(dá)穩(wěn)定性水平，結(jié)合geNorm，Normfinder，BestKeeper和RefFinder軟件分析各候選內(nèi)參基因在不同處理下的表達(dá)穩(wěn)定性。結(jié)果表明，在亞洲玉米螟不同蟲(chóng)態(tài)中，4個(gè)候選內(nèi)參基因的穩(wěn)定性大小排序?yàn)?8SrRNA>EF1-α>β-actin>RPS3；滯育1個(gè)月，滯育2個(gè)月，滯育3個(gè)月和滯育4個(gè)月的亞洲玉米螟，穩(wěn)定性大小排序?yàn)棣?actin>EF1-α>18SrRNA>RPS3。18SrRNA和β-actin可分別作為不同蟲(chóng)態(tài)和滯育狀態(tài)下的亞洲玉米螟基因表達(dá)水平分析試驗(yàn)中的內(nèi)參基因。

亞洲玉米螟；內(nèi)參基因；RT-qPCR；18SrRNA；β-actin

實(shí)時(shí)熒光定量逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(real-time quantitative reverse transcription-PCR，RT-qPCR)是一種檢測(cè)mRNA表達(dá)豐度的可靠技術(shù)，該技術(shù)憑借其高靈敏度，運(yùn)算精度與適用范圍廣等特點(diǎn)而被廣泛應(yīng)用(Iktenetal., 2016；Normannetal., 2016)。然而，RNA的產(chǎn)量，完整性及其質(zhì)量，酶的活性和PCR擴(kuò)增效率等方面的差異性變化均可對(duì)目的基因特異性表達(dá)的真實(shí)CT值造成影響(崔淼等，2014；Yangetal., 2016)。因此，進(jìn)行RT-qPCR試驗(yàn)時(shí)選擇較為穩(wěn)定表達(dá)的管家基因作為內(nèi)參基因?qū)δ康幕虮磉_(dá)量進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化與校正是至關(guān)重要的(Lordetal., 2010；Silvaetal., 2016)。在很多研究中，參與基本細(xì)胞流過(guò)程的傳統(tǒng)管家基因通常作為內(nèi)參基因，例如肌動(dòng)蛋白(Actin)、微管蛋白(Tubulin)、延伸因子(EF1-a)和3-磷酸甘油醛脫氫酶(GAPDH)等(王佳等，2014；潘暢等，2016)。一個(gè)理想的內(nèi)參基因在不同試驗(yàn)條件下，不同組織類型和各發(fā)育階段中均穩(wěn)定表達(dá)(Lietal., 2016; Youetal., 2016)。然而，大量研究結(jié)果表明，這些被廣泛使用的管家基因在不同試驗(yàn)條件下，其表達(dá)量具有顯著差異性(Sunetal., 2016；Wrzesińskaetal., 2016)。故選擇內(nèi)參基因時(shí)，需要對(duì)其進(jìn)行嚴(yán)格的分析與評(píng)估(Wieczoreketal., 2013)。近幾年來(lái)，geNorm(Vandesompeleetal., 2002)，BestKeeper(Pfaffletal., 2004)，NormFinder(Andersenetal., 2004)和RefFinder(Xieetal., 2011)軟件廣泛應(yīng)用于內(nèi)參基因的篩選與評(píng)估分析中(肖翠等，2012)。geNorm對(duì)所有內(nèi)參基因進(jìn)行表達(dá)穩(wěn)定性評(píng)估(M值)，其中M<1.5的內(nèi)參基因被認(rèn)為較穩(wěn)定(Ongetal., 2016)。NormFinder與geNorm工作原理相同，根據(jù)穩(wěn)定度篩選出最優(yōu)的一個(gè)內(nèi)參基因。BestKeeper在變異分析的基礎(chǔ)之上對(duì)內(nèi)參基因進(jìn)行穩(wěn)定性評(píng)估，標(biāo)準(zhǔn)誤(SD)或者變異系數(shù)(CV)越小，則認(rèn)為該基因穩(wěn)定性越強(qiáng)。RefFinder是一個(gè)在線綜合分析軟件，整合了geNorm，BestKeeper，NormFinder和Delta CT方法，計(jì)算出穩(wěn)定性等級(jí)的平均值，穩(wěn)定性平均等級(jí)指數(shù)越小越穩(wěn)定。近來(lái)，國(guó)內(nèi)外研究學(xué)者均用上述分析方法對(duì)多種昆蟲(chóng)的內(nèi)參基因穩(wěn)定性進(jìn)行評(píng)估與篩選(陳芳等，2014)，例如二斑葉螨Tetranychusurticae(周興隆等，2015)，絲光綠蠅Luciliasericata(Bagnalletal., 2010)，褐飛虱Nilaparvatalugens(Yuanetal., 2014)，棉鈴蟲(chóng)Helicoverpaarmigera(Zhangetal., 2015)等。

亞洲玉米螟是我國(guó)玉米種植上的常發(fā)性害蟲(chóng)，以老熟幼蟲(chóng)形態(tài)滯育越冬，在翌年作為蟲(chóng)源造成嚴(yán)重危害。結(jié)合分子、基因等研究方法，探索亞洲玉米螟發(fā)生發(fā)展機(jī)制具有良好的研究前景，利用RT-qPCR技術(shù)對(duì)亞洲玉米螟基因表達(dá)(郭建青，2013；陳鵬等，2014)分析研究已有報(bào)道，但對(duì)內(nèi)參基因的篩選仍未空白。為確保目的基因表達(dá)水平的準(zhǔn)確性，需引入內(nèi)參基因作為參照。本研究選取了不同蟲(chóng)態(tài)(卵、幼蟲(chóng)、蛹和成蟲(chóng))及不同滯育狀態(tài)下(滯育1個(gè)月，滯育2個(gè)月，滯育3個(gè)月和滯育4個(gè)月)的亞洲玉米螟共8份試驗(yàn)材料，利用RT-qPCR技術(shù)檢測(cè)了β-actin，18SrRNA，EF1-α和RPS3共4個(gè)內(nèi)參基因在不同蟲(chóng)態(tài)以及不同滯育狀態(tài)下的亞洲玉米螟中表達(dá)水平，并應(yīng)用geNorm，Normfinder，BestKeeper和RefFinder軟件分析了各候選內(nèi)參基因的表達(dá)穩(wěn)定性，篩選出最適的內(nèi)參基因，在亞洲玉米螟后續(xù)的相關(guān)基因表達(dá)的研究中，為其選擇合適的內(nèi)參基因提供參考依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料

1.1.1 供試蟲(chóng)源

不同滯育狀態(tài)下試蟲(chóng)：于2016年10月至2017年1月期間滯育1個(gè)月，滯育2個(gè)月，滯育3個(gè)月和滯育4個(gè)月的亞洲玉米螟，從沈陽(yáng)農(nóng)業(yè)大學(xué)試驗(yàn)田剖桿采集，每次試驗(yàn)選擇3頭大小一致的幼蟲(chóng)，用于分析不同滯育狀態(tài)下候選內(nèi)參基因的穩(wěn)定性(3次生物學(xué)重復(fù))。

不同蟲(chóng)態(tài)試蟲(chóng)：沈陽(yáng)農(nóng)業(yè)大學(xué)植物保護(hù)學(xué)院實(shí)驗(yàn)室內(nèi)飼養(yǎng)，溫度為26℃±1℃，相對(duì)濕度為75%±5%，光周期為16 L∶8 D。分別收集亞洲玉米螟卵(產(chǎn)卵后12 h)、幼蟲(chóng)(5th)、蛹(化蛹后1 d)及成蟲(chóng)(羽化后3 d)用于分析不同蟲(chóng)態(tài)候選內(nèi)參基因的穩(wěn)定性(3次生物學(xué)重復(fù))。

1.2 試驗(yàn)方法

1.2.1 亞洲玉米螟總RNA的提取及檢測(cè)

按照Trizol說(shuō)明書(shū)提取各個(gè)處理的亞洲玉米螟總RNA。利用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)總RNA完整性，并用Thermo公司的核酸蛋白檢測(cè)儀NanoDrop2000檢測(cè)總RNA濃度與純度(所有樣本RNA均滿足條件：A260/230>2.0，2.0>A280/260>1.8)。參照PrimeScriptTMRT reagent Kit with gDNA Eraser(Perfect Real Time)試劑盒說(shuō)明反轉(zhuǎn)錄合成cDNA第一鏈。

1.2.2 亞洲玉米螟候選內(nèi)參基因表達(dá)引物設(shè)計(jì)

根據(jù)Gene bank(http:∥www.ncbi.nlm.nih.gov/)數(shù)據(jù)庫(kù)內(nèi)亞洲玉米螟相關(guān)信息，篩選出4個(gè)候選內(nèi)參基因β-actin(KT366041.1)，18SrRNA(GU205787.1)，EF1-α(KC966937.1)，RPS3(EU275206.2)。通過(guò)Primer Premier 5.0軟件設(shè)了計(jì)實(shí)時(shí)熒光定量PCR(Quantitative Real-Time PCR，RT-qPCR)特異性引物，引物均由上海生物工程有限公司合成(表1)。

表1 RT-qPCR引物序列Table 1 Primer pairs used for PCR

1.2.3 候選內(nèi)參基因的表達(dá)量檢測(cè)

利用實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)，采用SYBR GreenⅡ染料法，在Bio-Rad CFX96 PCR儀上進(jìn)行擴(kuò)增、熔解曲線的分析，總反應(yīng)體系20 μL，包括2×SYBR Premix Ex TaqⅡ10 μL，上下游引物各0.8 μL，去除RNA酶ddH2O 7.6 μL，cDNA模板0.8 μL。每個(gè)反應(yīng)設(shè)3個(gè)復(fù)孔，擴(kuò)增程序采用兩步法：95℃預(yù)變性30 s；然后95℃變性10 s，60℃退火延伸40 s，共40個(gè)循環(huán)。

1.2.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制

將cDNA原液依次稀釋5、52、53、54、55、56倍作為模板。按照1.2.4反映體系及程序進(jìn)行RT-qPCR反應(yīng)。并根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線對(duì)各引物的擴(kuò)增效率進(jìn)行分析。

1.2.5 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

利用軟件geNorm(Vandesompeleetal., 2002)，BestKeeper(Pfaffletal., 2004)，Normfinder(Andersenetal., 2004)軟件及在線軟件RefFinder評(píng)估與分析亞洲玉米螟各候選內(nèi)參基因表達(dá)穩(wěn)定性。

2 結(jié)果與分析

2.1 亞洲玉米螟內(nèi)參基因引物特異性驗(yàn)證

以亞洲玉米螟cDNA為模板進(jìn)行普通PCR擴(kuò)增，所得擴(kuò)增產(chǎn)物長(zhǎng)度與預(yù)期一致。進(jìn)一步對(duì)4個(gè)內(nèi)參基因進(jìn)行RT-qPCR反應(yīng)，所有內(nèi)參基因的溶解曲線均為單一峰，表明引物無(wú)非特異性擴(kuò)增現(xiàn)象，故RT-qPCR的結(jié)果真實(shí)可靠。

2.2 亞洲玉米螟內(nèi)參基因的CT值分析

比較不同蟲(chóng)態(tài)及滯育狀態(tài)下亞洲玉米螟4個(gè)內(nèi)參基因的CT值，它們的表達(dá)水平均存在一定的變化(圖1)，該結(jié)果說(shuō)明，不同蟲(chóng)態(tài)及不同滯育狀態(tài)可能影響這些候選內(nèi)參基因的表達(dá)量。不同蟲(chóng)態(tài)的亞洲玉米螟四個(gè)候選內(nèi)參基因β-actin、18SrRNA、RPS3和EF1-α的CT值變化范圍分別為22.11-25.95、12.11-16.46、22.44-28.51和30.35-33.39，EF1-α的CT值變異程度最小(ΔCT=3.04；CV=0.030)，RPS3的CT值變異程度最大(ΔCT=6.03；CV=0.081)(圖1 A)；不同滯育狀態(tài)下的亞洲玉米螟中4個(gè)候選內(nèi)參基因β-actin、18SrRNA、RPS3和EF1-α的Ct值變化范圍分別為26.03-26.80、15.41-16.33、24.59-28.63和31.18-33.18，β-actin的CT值變異程度最小(ΔCT=0.77；CV=0.011)，RPS3的Ct值變異程度最大(ΔCT=2.00；CV=0.067)(圖1 B)。

圖1 不同蟲(chóng)態(tài)(A)及滯育狀態(tài)下(B)亞洲玉米螟4個(gè)候選內(nèi)參基因CT值的比較 Fig.1 CT values of four candidate reference genes in different stages (A) and different diapause stages,i.e.,collected from October to January (B) of Ostrina furnacalis

2.3 候選內(nèi)參基因的穩(wěn)定性評(píng)估

2.3.1 geNorm軟件評(píng)估結(jié)果

應(yīng)用genorm軟件評(píng)估4個(gè)候選內(nèi)參基因β-actin、18SrRNA、RPS3和EF1-α的表達(dá)穩(wěn)定度M值，并由大到小進(jìn)行排序，亞洲玉米螟不同蟲(chóng)態(tài)為RPS3(1.201)>EF1-α(0.993)>β-actin(0.974)>18SrRNA(0.875)(圖2 A)；不同滯育狀態(tài)的亞洲玉米螟為RPS3(1.572)>18SrRNA(1.244)>β-actin(1.010)>EF1-α(0.966)(圖2 B)，該結(jié)果表明，18SrRNA在不同蟲(chóng)態(tài)中表達(dá)最穩(wěn)定，EF1-α在不同滯育狀態(tài)下表達(dá)最穩(wěn)定。

圖2 應(yīng)用geNorm軟件分析不同蟲(chóng)態(tài)(A)及不同滯育狀態(tài)亞洲玉米螟(B)各內(nèi)參的表達(dá)穩(wěn)定度值(M)Fig.2 Expression stability values (M) of reference genes in different stages (A) and different diapause stages,i.e.,collected from October to January (B) of Ostrina furnacalis analyzed by geNorm

2.3.2 Normfinder軟件評(píng)估結(jié)果

應(yīng)用Normfinder軟件評(píng)估4個(gè)候選內(nèi)參基因β-actin、18SrRNA、RPS3和EF1-α的表達(dá)穩(wěn)定度，候選內(nèi)參基因在亞洲不同蟲(chóng)態(tài)玉米螟中的穩(wěn)定度排序?yàn)椋?8SrRNA(0.348)>β-actin(0.423)>EF1-α(0.489)>RPS3(0.569)；不同滯育狀態(tài)的亞洲玉米螟為：EF1-α(0.177)>β-actin(0.379)>18SrRNA(0.581)>RPS3(0.782)。在不同蟲(chóng)態(tài)中，18SrRNA表達(dá)最穩(wěn)定，在不同月份下，EF1-a為最優(yōu)內(nèi)參基因，與geNorm軟件分析結(jié)果一致(表2)。

2.3.3 BestKeeper軟件評(píng)估結(jié)果

應(yīng)用BestKeeper軟件評(píng)估4個(gè)候選內(nèi)參基因結(jié)果顯示SD值(表3)，亞洲玉米螟不同蟲(chóng)態(tài)，EF1-α<β-actin<18SrRNA

2.3.4 綜合評(píng)估結(jié)果

綜合上述3種軟件及在線軟件RefFinder的評(píng)估結(jié)果表明，不同蟲(chóng)態(tài)中選擇18SrRNA為最優(yōu)內(nèi)參基因(表4)，不同月份滯育下選擇β-actin為最優(yōu)內(nèi)參基因(表5)。

表2 應(yīng)用NormFinder軟件分析亞洲玉米螟內(nèi)參基因的表達(dá)穩(wěn)定性Table 2 Expression stability of reference genes of Ostrinia furnacalis by NormFinder

3 結(jié)論與討論

亞洲玉米螟Ostriniafurnacalis(Guenée)做為玉米上的主要害蟲(chóng)，多年來(lái)一直有大量報(bào)道，RT-qPCR技術(shù)在亞洲玉米螟目的基因表達(dá)分析研究中得到了廣泛應(yīng)用(郭建青，2013；陳鵬等，2014)。為了明確亞洲玉米螟目的基因的表達(dá)水平，必須引入內(nèi)參基因?qū)δ康幕蜻M(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化，由于，目的基因表達(dá)量會(huì)受內(nèi)外界的多種因素影響，如RNA完整性及反轉(zhuǎn)錄效率等(Pfaffletal., 2004；Wrzesińskaetal., 2016)。也有研究表明，在柑橘大實(shí)蠅中，RPL32在不同發(fā)育階段和不同溫度處理中表達(dá)最穩(wěn)定，在不同溫度下和一個(gè)γ輻射處理下理想表達(dá)的基因是GAPDH，G6PDH和RPL32(Lüetal., 2014)；β-actin在感染細(xì)菌的蜜蜂中表達(dá)穩(wěn)定，而在感染真菌的赤擬谷盜中不穩(wěn)定表達(dá)(Lordetal., 2010)；β-actin和18SrRNA在蝗蟲(chóng)發(fā)育階段中穩(wěn)定表達(dá)，然而，在抵低壓缺氧條件下表達(dá)水平發(fā)生改變(Zhaoetal., 2012)。周曉慧(2014)研究表明，在碦西茄干旱和鹽脅迫條件下EF1-α和GAPDH表達(dá)穩(wěn)定性最好，TUA和18SrRNA在碦西茄不同組織中表達(dá)最穩(wěn)定。因此篩選出在特定試驗(yàn)條件下表達(dá)穩(wěn)定性好的內(nèi)參基因是非常關(guān)鍵的。

表3 應(yīng)用BestKeeper軟件分析亞洲玉米螟內(nèi)參基因的表達(dá)穩(wěn)定性Table 3 Expression stability of reference genes of Ostrinia furnacalis by BsetKeeper

表4 4個(gè)候選內(nèi)參基因不同蟲(chóng)態(tài)的穩(wěn)定性等級(jí)排序Table 4 Overall stability rank of four candidate reference genes of different stages

表5 4個(gè)內(nèi)參基因不同滯育狀態(tài)的表達(dá)穩(wěn)定性Table 5 Overall stability rank of four candidate reference genes of different diapause stages

在本試驗(yàn)中，選擇了4個(gè)亞洲玉米螟候選內(nèi)參基因。根據(jù)geNorm、NormFinder、BestKeeper及RefFinder軟件綜合評(píng)估了4個(gè)候選內(nèi)參基因的穩(wěn)定性。在不同蟲(chóng)態(tài)的亞洲玉米螟試驗(yàn)中，4個(gè)候選內(nèi)參基因穩(wěn)定性等級(jí)綜合排名為，18SrRNA(rank=1.32)>EF1-α(rank=1.73)>β-actin(rank=2.21)>RPS3(rank=4.00)，18SrRNA是表達(dá)穩(wěn)定性最好的基因，其次是EF1-α，RPS3被認(rèn)為穩(wěn)定性最差。然而，geNorm和Normfinder軟件分析均顯示18SrRNA是表達(dá)穩(wěn)定性最好的基因，M值最小，BestKeeper分析表明EF1-α的SD=0.83<1，其它3個(gè)候選內(nèi)參基因的SD值均大于1，EF1-α穩(wěn)定性最好。在不同滯育狀態(tài)下的亞洲玉米螟試驗(yàn)中，4個(gè)候選內(nèi)參基因穩(wěn)定性等級(jí)綜合排名為β-actin(rank=1.41)>EF1-α(rank=1.73)>18SrRNA(rank=2.06)>RPS3(rank=4.00)，β-actin表達(dá)穩(wěn)定性最好，18SrRNA和EF1-α穩(wěn)定性次之，RPS3最不穩(wěn)定。然而，geNorm和Normfinder軟件分析均顯示EF1-α表達(dá)最穩(wěn)定，M值最小，BestKeeper軟件分析僅RPS3的SD值大于1，其余3個(gè)候選內(nèi)參基因SD值均小于1，但β-actin的SD值最小，表達(dá)最穩(wěn)定。geNorm與NormFinder程序算法需要將數(shù)據(jù)CT值轉(zhuǎn)化為Q=2ΔCT值方法，然而B(niǎo)estKeeper軟件直接輸入CT值進(jìn)行計(jì)算分析。3種軟件分析結(jié)果之間的差異可能是由于應(yīng)用不同數(shù)據(jù)分析導(dǎo)致。因此，本文研究結(jié)果需要通過(guò)RefFinder軟件進(jìn)行綜合評(píng)估，從而得到綜合排名指數(shù)，排名指數(shù)越小，說(shuō)明該基因越穩(wěn)定。

本文研究結(jié)果表明，亞洲玉米螟不同蟲(chóng)態(tài)中，18SrRNA表達(dá)穩(wěn)定性最好，RPS3穩(wěn)定性最差；在不同滯育狀態(tài)下，β-actin表達(dá)穩(wěn)定性最好，RPS3穩(wěn)定性最差。這些結(jié)果依據(jù)上述3種不同軟件及在線軟件RefFinder綜合分析得到。因此，在亞洲玉米螟不同蟲(chóng)態(tài)試驗(yàn)中選擇18SrRNA作內(nèi)參基因；在不同滯育狀態(tài)下，可選擇β-actin作最適內(nèi)參基因。本研究結(jié)果可為亞洲玉米螟生長(zhǎng)發(fā)育及滯育等過(guò)程的分子機(jī)理研究提供參考依據(jù)。

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Selection of the reference genes inOstriniafurnacalis(Guenée) under diapause and different insect states

LIU Ning1, ZHANG Tong-Shu1, LI Zhong-Zhou2,DUAN Li-Jia1, LI Shuai-Qiang1, DONG Hui1*, CONG Bin1*

(College of Plant Protection, Shenyang Agricultural University, Shenyang 110161, China；2.Entering/Leaving Country Examination Quarantine Bareau of Funshun City,Fushun 113006,Liaoning Province, China)

Selecting the suitable reference genes inOstriniafurnacalis(Guenée) under different diapause stages and different stages, this result provides an accurate reference for future study of the different diapause stages, i.e., collected from October to January, and different stages ofOstriniafurnacalis(Guenée) in the experiment of the level of gene expression.In the study, by the method of RT-qPCR,Ostriniafurnacalis(Guenée) as experimental material, the mRNA levels of four candidate reference genes such asβ-actin, 18SrRNA,EF1-aandRPS3 were assessed; Three software-based approaches (geNorm, Normfinder and BestKeeper) and one web-based comprehensive tool (RefFinder) were used to analyze the expression stability of these genes under different treatments.According to the comprehensive rank of RefFinder, the expression stability of above four candidate reference genes were 18SrRNA>EF1-a>β-actin>RPS3 from different stages ofOstriniafurnacalis(Guenée); the expression stability of above four candidate reference genes wereβ-actin>EF1-a>18SrRNA>RPS3 from different diapause stages, i.e., collected from October to January ofOstriniafurnacalis(Guenée).18SrRNAandβ-actincan be respectively uesd as a reference gene for different stages and different diapause stages ofOstriniafurnacalis(Guenée) in the experiment of the level of gene expression.

Ostriniafurnacalis; reference genes; RT-qPCR; 18SrRNA;β-actin

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農(nóng)業(yè)部公益性行業(yè)科研專項(xiàng)(201303026)；國(guó)家重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃(2016YFD0300704)

劉寧，女，1991年生，遼寧人，碩士研究生，研究方向?yàn)楹οx(chóng)生物防治與昆蟲(chóng)分子生態(tài)學(xué)，E-mail：13940434836@139.com

*通訊作者Author for correspondence，E-mail: biocontrol@163.com; bin1956@163.com

Received: 2017-01-22；接受日期Accepted: 2017-03-19

Q963;S433.4

A

1674-0858(2017)03-0611-07