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    環(huán)糊精葡萄糖基轉(zhuǎn)移酶在天然產(chǎn)物糖基化修飾中的應(yīng)用

    2022-05-10 12:21:30張國寧馮婧嫻楊穎博陳萬生肖瑩
    生物技術(shù)通報 2022年3期
    關(guān)鍵詞:糖基環(huán)糊精糖基化

    張國寧 馮婧嫻 楊穎博 陳萬生,3 肖瑩

    (1. 上海中醫(yī)藥大學(xué)中藥研究所中藥資源與生物技術(shù)中心,上海 201203;2. 上海圖鋒醫(yī)藥科技有限公司,上海 201203;3. 海軍軍醫(yī)大學(xué)附屬長征醫(yī)院醫(yī)療保障中心,上海 200003)

    環(huán)糊精(CDs)是一種具有親水外部和疏水中心腔的環(huán)狀低聚糖,由6-100個左右的葡萄糖單元組成,由于環(huán)糊精分子具有獨(dú)特的疏水空腔結(jié)構(gòu),能包含疏水性客體分子,從而改變客體分子的溶解度、穩(wěn)定性等物理化學(xué)性質(zhì),因此在醫(yī)藥、農(nóng)業(yè)、食品、紡織、環(huán)保、化妝品、生物技術(shù)和分析化學(xué)等領(lǐng)域具有廣泛的應(yīng)用[1-2],而可催化淀粉或多糖中α-1, 4鍵斷裂并環(huán)化形成CDs的環(huán)糊精葡萄糖基轉(zhuǎn) 移 酶(cyclodextrin glycosyltransferase,CGTase,EC 2.4.1.19)受到廣泛關(guān)注。CGTase可以催化4種不同的反應(yīng)類型,包括環(huán)化反應(yīng)、耦合反應(yīng)、歧化反應(yīng)和水解反應(yīng)。其中CGTase特有的環(huán)化反應(yīng)主要應(yīng)用于環(huán)糊精的制備[3],而利用歧化反應(yīng)和偶合反應(yīng)的轉(zhuǎn)糖基作用改造天然產(chǎn)物的性質(zhì)的研究近年來顯現(xiàn)出良好的應(yīng)用前景。本文結(jié)合CGTase的來源、蛋白結(jié)構(gòu)及功能等,重點(diǎn)對近年來CGTase在天然產(chǎn)物糖基化修飾中的應(yīng)用進(jìn)行綜述及展望。

    1 CGTase的來源

    大多數(shù)CGTase是一種細(xì)菌胞外酶,自從第一個CGTase基因在浸麻芽孢桿菌(Bacillus macerans)中被鑒定[4],到目前為止已經(jīng)發(fā)現(xiàn)了多種細(xì)菌來源的CGTase,包括芽孢桿菌(Bacillus)、類芽孢桿菌(Paenibacillus)、克雷伯氏菌(Klebsiella)、熱厭氧菌(Thermoanaerobacterium)、 短 桿 菌(Bacillus brevis)和放線菌(Actinomycetes)[5-6]等。古菌和真菌也能產(chǎn)生CGTase[7-8]。產(chǎn)生CGTase的微生物主要存在于湖水、土壤、溫泉、面粉業(yè)廢水和腐爛的土豆中[9],特殊環(huán)境可以篩選具有特殊性能的CGTase,如從溫泉環(huán)境中分離出產(chǎn)熱穩(wěn)定CGTase的極熱厭氧古生菌菌株B1001[10],極大地拓展了CGTase的應(yīng)用范圍。

    2 CGTase蛋白結(jié)構(gòu)及催化機(jī)制

    2.1 CGTase蛋白結(jié)構(gòu)

    CGTase屬于α-淀粉酶家族,隸屬于糖基水解酶13家族,具有(α/β)8桶狀蛋白結(jié)構(gòu)[11]。1991年首個來自于環(huán)狀芽孢桿菌(Bacillus circulans)的CGTase晶體結(jié)構(gòu)被報道[12],為CGTase蛋白結(jié)構(gòu)解析奠定了基礎(chǔ)。目前已經(jīng)有許多CGTase結(jié)構(gòu)被報道,它們結(jié)構(gòu)均非常相似,都包含5個結(jié)構(gòu)域:A、B、C、D和E。與α-淀粉酶家族的結(jié)構(gòu)域(A、B和C)相比,CGTase包含兩個額外的D域和E域[13](圖1)。結(jié)構(gòu)域A包含8條α-螺旋和8條平行的β-折疊氨基酸,稱為(α/β)8桶狀催化域[14],被認(rèn)為是催化核心區(qū)域[4],關(guān)鍵催化殘基位于β鏈的c端。結(jié)構(gòu)域B是結(jié)構(gòu)域aβ-strand 3和α-helix3之間的突起環(huán),將 A 域分成 A1和 A2域[15](圖 1),B 域包含 44-133個氨基酸殘基,在底物結(jié)合中起重要作用[4]。Leemhuis等[16]在B域表面引入新的鹽橋顯著提高了圓環(huán)桿菌251 CGTase的穩(wěn)定性。C域有1個麥芽糖結(jié)合位點(diǎn),參與底物結(jié)合[4]。E域被認(rèn)為是一個原始的淀粉結(jié)合域[4],有2個麥芽糖結(jié)合位點(diǎn)(MBS),分別負(fù)責(zé)淀粉結(jié)合(MBS1)和引導(dǎo)底物進(jìn)入活性位點(diǎn)(MBS2),有文獻(xiàn)報道E域上MBS2受損(Tyr633Ala)會導(dǎo)致產(chǎn)物的非競爭性抑制顯著降低[17]。結(jié)構(gòu)域D的功能尚不明確,但有研究表明C和D域與E域的正確空間定位有關(guān)[18]。此外最近關(guān)于CGTase抗病研究發(fā)現(xiàn),結(jié)構(gòu)域D是CGTase水解活性的關(guān)鍵結(jié)構(gòu)域,結(jié)構(gòu)域A1和C是CGTase誘導(dǎo)植物抗病的關(guān)鍵結(jié)構(gòu)域[19]。

    圖1 CGTase蛋白結(jié)構(gòu)(PDB登錄碼:4JCL)Fig. 1 CGTase protein structure(PDB accession number:4JCL)

    目前關(guān)于CGTase的結(jié)構(gòu)改造研究主要聚焦于環(huán)糊精和L-抗壞血酸(AA)糖基化產(chǎn)物2-O-葡萄糖基-L-抗壞血酸(AA-2G)的定向合成制備。Li等[20]將環(huán)狀芽孢桿菌(Bacillus circulans)STB01的CGTase的鈣結(jié)合位點(diǎn)III(CaIII)氨基酸殘基Asp 577進(jìn)行定點(diǎn)突變提高了其對麥芽糖糊精的親和力和環(huán)化反應(yīng)的催化效率;同時研究較多的還有通過定點(diǎn)突變增加 CGTase對 α-環(huán)糊精[21]、β-環(huán)糊精[22]、γ-環(huán)糊精[23]的產(chǎn)物專屬性。Tao 等[24]對Bacillus stearothermophilus NO2的CGTase的9個殘基進(jìn)行迭代飽和誘變,增強(qiáng)了合成AA-2G的特異性,是迄今為止高產(chǎn)AA-2G的最優(yōu)策略;Han等[25]對Paenibacillus macerans的CGTase的6個亞位殘基(Y167,G179,G180和N193)進(jìn)行了迭代飽和誘變,通過提高CGTase對麥芽糖糊精的特異性,提升了AA-2G的產(chǎn)量。

    2.2 CGTase的催化機(jī)制

    CGTase主要催化4種反應(yīng)類型,包括3種轉(zhuǎn)糖基反應(yīng)(歧化反應(yīng)、環(huán)化反應(yīng)和偶合反應(yīng))及水解反應(yīng)。環(huán)化反應(yīng)是CGTase的特征反應(yīng),是一種分子內(nèi)轉(zhuǎn)糖基反應(yīng),原理是將直鏈麥芽低聚糖上非還原末端的O-4或C-4轉(zhuǎn)移到同一直鏈上還原末端的C-1或O-1上(圖2-A),形成6-8個糖基的環(huán)狀結(jié)構(gòu),分別對應(yīng)α-、β-和γ-環(huán)糊精;偶合反應(yīng)是環(huán)化反應(yīng)的逆反應(yīng),可以將環(huán)糊精的環(huán)打開,然后轉(zhuǎn)移到直鏈麥芽低聚糖上(圖2-B);歧化反應(yīng)是先把一個直鏈麥芽低聚糖切斷,然后將其中一段轉(zhuǎn)移到另外的直鏈?zhǔn)荏w上(圖2-C)[9]。與天然產(chǎn)物的糖基化相關(guān)的主要是偶合反應(yīng)和歧化反應(yīng),兩者均為分子間轉(zhuǎn)糖基反應(yīng),例如通過CGTase將AA糖基化合成AA-2G。水解反應(yīng)則是將直鏈淀粉分子切斷,然后兩段均轉(zhuǎn)移到水分子上(圖2-D),有報道利用CGTase水解真菌細(xì)胞壁β-1, 4糖苷鍵(幾丁質(zhì))的功能,增強(qiáng)了棉花植物抵御真菌大麗輪枝菌導(dǎo)致的黃萎病的抗病能力[19]。需要指出的是,在以CGTase為催化酶進(jìn)行糖基化反應(yīng)的過程中,若以直鏈麥芽糖為糖供體,轉(zhuǎn)糖基反應(yīng)主要是以歧化反應(yīng)為主[25-26],若以環(huán)糊精為糖供體時,轉(zhuǎn)糖基反應(yīng)以歧化反應(yīng)和偶合反應(yīng)為主[26],而水解反應(yīng)微弱,在反應(yīng)前期或后期均會發(fā)生。

    圖2 CGTase催化4種反應(yīng)類型Fig. 2 CGTase catalyzes four types of reactions

    α-淀粉酶轉(zhuǎn)糖苷化催化機(jī)理于1953年由美國科學(xué)家Koshland首次提出[27],稱為雙取代機(jī)制。α-淀粉酶家族中的CGTase有7個最保守的氨基酸殘基聚集在(α/β)8桶狀蛋白結(jié)構(gòu)表面底物結(jié)合口袋的底部,位于催化位點(diǎn)的中心[27],其中Asp229、Glu257和Asp328是絕對保守的3個關(guān)鍵氨基酸殘基。在雙取代反應(yīng)中,Glu257是質(zhì)子供體,Asp229是一般的堿基或親核試劑,而Asp328參與底物結(jié)合,可能對Glu257的pKa升高有重要作用[28]。具體催化過程如圖3所示:第一步,由Glu257提供質(zhì)子,CGTase在底物淀粉上裂解一個α-1, 4糖苷鍵,并與Asp229形成一個共價的β-1, 4糖基酶中間體;第二步,中間體的共價鍵裂解,受體被Glu257所激活,隨后攻擊共價連接的中間產(chǎn)物α-1, 4糖苷鍵并形成新的產(chǎn)物[29]。受體可以是水、另一個糖基的4-OH基團(tuán)(4位的羥基)或其它化合物的羥基基團(tuán)。此外,CGTase的環(huán)化反應(yīng)除了與轉(zhuǎn)糖基反應(yīng)原理相似外,還有其它的氨基酸殘基參與了中間產(chǎn)物的環(huán)化,使得其還原末端與非還原末端的4-OH基團(tuán)形成共價鍵而形成環(huán)糊精。

    圖3 CGTase催化機(jī)制示意圖Fig. 3 Schematic diagram of the catalytic mechanism of CGTase

    3 CGTase在天然產(chǎn)物糖基化修飾中的應(yīng)用

    轉(zhuǎn)糖基化是將糖基從供體轉(zhuǎn)移到受體的過程。與化學(xué)合成相比,通過酶促反應(yīng)進(jìn)行糖基化修飾具有反應(yīng)步驟簡單、空間位阻低、區(qū)域?qū)R恍愿?、副產(chǎn)物少、后處理簡單、生產(chǎn)成本低、反應(yīng)條件溫和及環(huán)境友好等優(yōu)點(diǎn)[9]。通過CGTase的轉(zhuǎn)糖基功能催化天然產(chǎn)物底物合成糖基化產(chǎn)物,可有效改善天然產(chǎn)物的原有性質(zhì),包括提高水溶性、增強(qiáng)生物活性、改善口感、提高穩(wěn)定性等(圖4),目前已經(jīng)廣泛應(yīng)用于食品、制藥、化妝品等各個領(lǐng)域,展現(xiàn)出良好的應(yīng)用前景。

    圖4 CGTase的應(yīng)用Fig. 4 Application of CGTase[19]

    3.1 提高天然產(chǎn)物溶解度

    溶解度是化合物的重要化學(xué)特性,許多具有應(yīng)用價值的化合物因溶解度低而嚴(yán)重限制了其應(yīng)用。糖基化是增加化合物溶解度的重要方法,使用CGTase進(jìn)行糖基化修飾以改變化合物溶解度相關(guān)研究已有較多報道。如黃酮類化合物山奈酚-3-o-β-d-吡喃葡萄糖(astragalin,AS)具有抗氧化、抗腫瘤、抗人類免疫缺陷病毒(HIV)等生物活性,但因水溶性低限制了其應(yīng)用。Choung等[30]使用CGTase(Toruzyme)進(jìn)行糖基化修飾,糖苷產(chǎn)物G1-AS的溶解度提高了65倍;同理,白藜蘆醇具有抗炎、抗癌、免疫調(diào)節(jié)等生物活性,也因溶解度低影響其生物利用度,Marié等[31]使用來自于Thermoanaerobacter sp.的CGTase催化白藜蘆醇,其糖苷產(chǎn)物在水中的溶解度提高了65倍。表1列舉了近年來利用CGTase糖基化修飾提高天然產(chǎn)物溶解度的應(yīng)用實(shí)例。

    表1 CGTase糖基化修飾提高天然產(chǎn)物溶解度的應(yīng)用Table 1 Application of CGTase glycosylation modification to improve the solubility of natural products

    3.2 改善或增強(qiáng)天然產(chǎn)物生物活性

    許多天然化合物本身具有生物活性,其糖基化產(chǎn)物可以進(jìn)一步增強(qiáng)或者改善生物活性,擴(kuò)大應(yīng)用范圍。Huang等[41]使用地衣芽孢桿菌(Bacillus licheniformis)CGTase為催化劑,以α-環(huán)糊精為糖供體催化PU,其糖苷(PU-G)比PU具有更強(qiáng)的抗骨質(zhì)疏松活性;Choung等[30]以麥芽糖為供糖體,山奈酚-3-o-β-d-吡喃葡萄糖(AS)為受體,糖苷產(chǎn)物G1-AS抗炎活性與醛糖還原酶抑制活性顯著增強(qiáng);表2列舉了使用CGTase糖基化修飾以增強(qiáng)或改善天然產(chǎn)物生物活性的相關(guān)應(yīng)用。

    表2 CGTase糖基化修飾增強(qiáng)或改善天然產(chǎn)物生物活性的應(yīng)用Table 2 Application of CGTase glycosylation modification to improve the bioactivity of natural products

    3.3 改善化合物口感

    口感是天然產(chǎn)物在食品及醫(yī)藥應(yīng)用中一項(xiàng)重要的評價指標(biāo),糖基化可以有效改善某些天然產(chǎn)物的苦味。甜菊糖苷是從菊科植物甜葉菊Stevia Rebaudia的葉子中提取出來的一種糖苷,甜度為蔗糖的250-450倍,被譽(yù)為“世界第三糖源”,但是帶有一定程度的苦味[56]。Abelian等[57]使用來自于嗜溫(mesophilic)、嗜熱(alkaliphilic)、嗜堿(thermophilic)和嗜鹽(halophilic)桿菌的CGTase對甜菊糖苷進(jìn)行糖基化修飾,顯著降低了其苦味。Yu等[58]從甜菊種植土壤中分離到一株產(chǎn)CGTase的芽孢桿菌(Paenibacillus sp. cgmcc5316),以淀粉為糖基供體,將甜菊糖苷轉(zhuǎn)化為單糖基化甜菊糖苷,甜味提高了35.4%。Kim等[59]使用來源于B.stearothermophilus、B.macerans的CGTase催化人參皂苷Rb1、Rc、Re、Rg1,以糊精為供糖體,產(chǎn)物苦味明顯降低。表3列舉了使用CGTase糖基化修飾以改善天然產(chǎn)物口感的相關(guān)應(yīng)用。

    表3 CGTase糖基化修飾改善天然產(chǎn)物口感的應(yīng)用Table 3 Application of CGTase glycosylation modification to improve the taste of natural products

    3.4 其他

    CGTase糖基化修飾除了提高天然產(chǎn)物的水溶性、增強(qiáng)生物活性、改善口感外,還具有其它多種應(yīng)用,包括提高穩(wěn)定性、調(diào)節(jié)粘度、降低毒性等,也可同時具有多方面的應(yīng)用。例如:L-抗壞血酸(維生素C)不穩(wěn)定,容易被氧化,在實(shí)際生產(chǎn)中可利用CGTase的轉(zhuǎn)糖基活性,將葡萄糖基連接在L-抗壞血酸的2號位C上,得到的維生素C衍生物AA-2G穩(wěn)定性顯著提高,水溶性和抗氧化活性增強(qiáng),在人體內(nèi)可發(fā)揮L-抗壞血酸的多種生理功能[64-65];使用來自于Thermoanaerobacter sp.的CGTase,以蔗糖為底物,淀粉為糖供體,合成的偶聯(lián)糖是一種非致齲甜味劑,也可用作粘度調(diào)節(jié)劑,且比其他還原糖混合物更穩(wěn)定[66]。此外,Moon等[67]以糊精為糖供體,使用來源于Thermoanaerobacter sp的CGTase催化人參皂苷F1,α-糖基化人參皂苷F1(G1-F1)顯示出比人參皂苷F1更高的溶解性、對人皮膚成纖維細(xì)胞(HDF)更低的細(xì)胞毒性、更高的酪氨酸酶活性和紫外線誘導(dǎo)的對基質(zhì)金屬蛋白酶-1(MMP-1)的抑制活性。隨著越來越多的CGTase發(fā)現(xiàn)以及蛋白質(zhì)工程對酶的改造,CGTase的糖基化應(yīng)用將更加廣泛。

    4 總結(jié)和展望

    盡管目前已獲得多種不同來源的CGTase,但催化效率高、穩(wěn)定性好、專屬性強(qiáng)的新型CGTase仍有待發(fā)現(xiàn),而基因組測序及生物信息學(xué)的進(jìn)步為新型CGTase的挖掘帶來了前所未有的機(jī)遇,CGTase的應(yīng)用范圍將隨之進(jìn)一步拓寬。當(dāng)前除了制備環(huán)糊精,CGTase工業(yè)化應(yīng)用主要集中在維生素C糖基化產(chǎn)物AA-2G的制備。通過蛋白質(zhì)工程的策略[68]對天然CGTase進(jìn)行改造,提高催化效率或?qū)μ腔w的特異選擇性等以提升AA-2G的產(chǎn)量是當(dāng)前研究的一個熱點(diǎn),極大地推進(jìn)了該應(yīng)用的工業(yè)化進(jìn)程[24-25,69]并將持續(xù)得到關(guān)注。

    利用CGTase對天然產(chǎn)物進(jìn)行糖基化修飾以提高穩(wěn)定性、增加生物活性、提高安全性等已取得較多研究成果,但是均僅限于實(shí)驗(yàn)室,與工業(yè)生產(chǎn)還有很大的距離。其重要原因之一是CGTase對特異底物和催化產(chǎn)物的選擇性均較低,應(yīng)用于工業(yè)化生產(chǎn)底物轉(zhuǎn)化率低,目標(biāo)產(chǎn)物的精準(zhǔn)合成難以實(shí)現(xiàn),副產(chǎn)物較多,生產(chǎn)成本較高。CGTase的底物雜泛性較高,單個CGTase可以同時催化幾種不同的底物,如來源于Thermoanaerobacter sp.的CGTase可以催化白藜蘆醇[31,51]、對苯二酚(HQ)[44]等 ;而多種不同來源的CGTase對某種底物也可能都具有催化活性[61,63];但同時也存在不同來源的 CGTase催化天然產(chǎn)物的底物特異性差異巨大的情況。因此,解析清楚CGTase底物特異性的催化機(jī)制是實(shí)現(xiàn)以CGTase作為催化元件的天然產(chǎn)物定向改造,推進(jìn)其工業(yè)化進(jìn)程的首要任務(wù)。在此基礎(chǔ)上可以充分調(diào)用或設(shè)計(jì)CGTase實(shí)現(xiàn)目標(biāo)產(chǎn)物的定向高效合成,將CGTase在天然產(chǎn)物糖基化修飾中的應(yīng)用推向深入和新高度。

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