新疆薰衣草多倍體誘導研究

廖晴，瑪爾哈巴·吾斯?jié)M，沙紅，高燕，龔松旺，廖志立

(1.新疆農(nóng)業(yè)科學院園藝作物研究所，烏魯木齊 830091；2.新疆霍城縣農(nóng)業(yè)技術(shù)推廣站，新疆霍城 835200)

?

新疆薰衣草多倍體誘導研究

廖晴1，瑪爾哈巴·吾斯?jié)M1，沙紅1，高燕1，龔松旺2，廖志立1

(1.新疆農(nóng)業(yè)科學院園藝作物研究所，烏魯木齊 830091；2.新疆霍城縣農(nóng)業(yè)技術(shù)推廣站，新疆霍城 835200)

【目的】通過對新疆薰衣草主栽品種C-197優(yōu)選優(yōu)株的組培苗進行多倍體植株誘導，并對誘導成功的多倍體植株進行快繁體系的建立，探討新疆薰衣草種質(zhì)資源創(chuàng)新技術(shù)的有效途徑，為新疆薰衣草產(chǎn)業(yè)提供種質(zhì)資源創(chuàng)新技術(shù)支撐?！痉椒ā坎捎眯陆挂虏軨-197優(yōu)選優(yōu)株的組培苗為材料，接種至多倍體誘導培養(yǎng)基 MS+1 mg/L 6-BA+2% DMSO(二甲基亞砜)+不同濃度的秋水仙素中,進行多倍體誘導，比較在不同濃度的秋水仙素中，處理不同時間產(chǎn)生多倍體的差異，確定適合誘導新疆薰衣草C-197多倍體秋水仙素的濃度及處理時間?！窘Y(jié)果】新疆薰衣草C-197優(yōu)選優(yōu)株的無菌苗，接種于MS+1 mg/L6-BA+2%二甲基亞砜+0.2%～0.4%秋水仙素的誘導培養(yǎng)基上處理48～72 h，均可使新疆薰衣草C-197的無菌苗產(chǎn)生多倍體。【結(jié)論】運用新疆薰衣草C-197多倍體誘導的試驗方法，可快速實現(xiàn)對新疆薰衣草多倍體植株的新品種選育，縮短育種周期，有效提高和推進新疆薰衣草優(yōu)質(zhì)種苗的培育速率及種質(zhì)創(chuàng)新。

新疆薰衣草C-197；秋水仙素；誘導；多倍體

0 引 言

【研究意義】薰衣草是新疆特色經(jīng)濟花卉之一。據(jù)統(tǒng)計，我國每年消耗薰衣草精油70 t左右，其中2/3是新疆生產(chǎn)的，目前我國對薰衣草精油的需求量以每年15%以上遞增。我國薰衣草雖有幾十年的栽培歷史，栽培技術(shù)已相對完善，但栽培品種卻嚴重退化混雜，生產(chǎn)量及質(zhì)量在逐年下降，因而對薰衣草種質(zhì)資源的創(chuàng)新已迫在眉睫。薰衣草是異花授粉植物，由于該群體的復雜異質(zhì)性，選擇優(yōu)良個體進行常規(guī)繁殖，優(yōu)良性狀是很難穩(wěn)定遺傳的。為了獲得性狀更優(yōu)異的新品種，對新疆主栽品種C-197進行多倍體育種，為薰衣草種質(zhì)創(chuàng)新奠定堅實的基礎(chǔ)?！厩叭搜芯窟M展】國外對薰衣草育種一直都很重視，除傳統(tǒng)的常規(guī)育種外，還積極地進行基因工程和多倍體育種研究。我國對薰衣草精油的提取工藝、薰衣草的栽培管理技術(shù)等，都有較深入的研究工作。但在薰衣草的育種技術(shù)研究及優(yōu)良品種的繁殖技術(shù)研究方面，開展的研究工作甚少[1-2]。尤其在新疆受經(jīng)濟條件的制約，育種及優(yōu)質(zhì)種苗生產(chǎn)嚴重滯后，極大地限制了精油生產(chǎn)的深層次發(fā)展?！颈狙芯壳腥朦c】目前對新疆薰衣草C-197進行優(yōu)選優(yōu)株的選擇并進行多倍體育種的研究未見報道。針對目前新疆薰衣草產(chǎn)業(yè)亟待解決的種質(zhì)混雜問題，通過生物技術(shù)手段，快速對提純的優(yōu)選優(yōu)株組培苗進行多倍體誘導，進而有效提高和推進新疆薰衣草優(yōu)質(zhì)種苗的培育速率及種質(zhì)創(chuàng)新?！緮M解決的關(guān)鍵問題】研究通過優(yōu)選優(yōu)株的組培快繁，提純薰衣草品種的種質(zhì)，在良好的種質(zhì)基礎(chǔ)上，通過誘導多倍體進行種質(zhì)創(chuàng)新，解決目前新疆薰衣草產(chǎn)業(yè)中栽培品種嚴重退化混雜，生產(chǎn)量及質(zhì)量在逐年下降的問題。

1 材料與方法

1.1 材 料

試驗以新疆薰衣草主栽品種C-197的優(yōu)選優(yōu)株的組培苗為試材。

1.2 方 法

1.2.1 多倍體誘導

用新疆薰衣草C-197優(yōu)選優(yōu)株的組培苗，剪取粗細均勻且?guī)蓚€莖節(jié)的莖段，接種至多倍體誘導培養(yǎng)基 MS+1 mg/L 6-BA+2% DMSO(二甲基亞砜)+不同濃度的秋水仙素(0.01%、0.05%、0.1%、0.2%、0.3%、0.4%、0.5%)中，每個處理接45個莖段， 處理不同時間(24、48、72 h)后，轉(zhuǎn)接到MS+1 mg/L 6-BA+0.3 mg/LIBA繼代培養(yǎng)基上，每天光照12 h，光照強度為1 600～2 000 lx,培養(yǎng)溫度24～28℃。

1.2.2 多倍體純化

培養(yǎng)25 d后，再轉(zhuǎn)接在MS+1 mg/L 6-BA+0.3 mg/LIBA繼代培養(yǎng)基上，如此反復培養(yǎng)多次，培養(yǎng)純合體，去除嵌合體，得到純化的多倍體苗。從中選擇變異明顯的穩(wěn)定植株進行鑒定。

1.2.3 多倍體鑒定

1.2.3.1 外部形態(tài)觀測

形態(tài)學變化是多倍體最直觀的鑒定方法[3-4]。多倍體植物的外部形態(tài)特征與二倍體相比往往表現(xiàn)出生長勢強，植株更加強健，葉片大而厚、葉表皺縮粗糙、顏色變深等，根據(jù)以上特征對處理后變異的植株進行初步篩選。葉片大小、厚度及莖粗可用游標卡尺測量，葉綠素含量是用SPAD-502型葉綠素測定儀，在植株上均勻地取3片葉，測定其葉綠素含量的平均值。

1.2.3.2 葉片氣孔觀測

摘取葉片肥大具有顯著多倍體植株葉片特征的葉片下表皮進行制片，在顯微鏡下觀察測量氣孔的大小，以氣孔的顯著增大與否及氣孔密度是否顯著減小作為進一步篩選鑒定多倍體的指標[5]。

1.2.3.3 流式細胞儀鑒定

以誘導存活的薰衣草各處理的純化多倍體組培苗為材料，切取50 mg嫩葉置培養(yǎng)皿中，加入萃取裂解緩沖液(15 mmol/ Tris-HCl，pH 7.5，80 mmol/L KCl，20 mmol/L NaCl，20 mmol/L EDTA-Na-2，15 mmol/L巰基乙醇0.05 (V/V )TritonX-100)，快速切碎并使碎片完全浸于萃取液中，避光靜置萃取2～5 min，200目尼龍網(wǎng)過濾，離心(1 000 r/min)漂洗3次，制備的細胞核懸浮液離心后棄上清液，獲得單細胞懸浮液[6-7]。用流式細胞儀測試該樣品倍性的 DNA含量峰值圖，以正常植株作對照，將對照出現(xiàn)峰值的地方作為基準，檢測變異株，觀察其出現(xiàn)峰值的地方偏移程度。

2 結(jié)果與分析

2.1 秋水仙素對材料的誘導

采用不同濃度秋水仙素及不同時間處理的薰衣草莖段，研究表明，變異率隨著處理時間和濃度的變化而變化，處理時間越短，秋水仙素濃度越低，加倍率越低；處理時間延長，秋水仙素濃度增加，加倍率隨之增加，但材料的死亡率也更高。0.2%～0.3%的秋水仙素處理48～72 h產(chǎn)生變異的效果較好,而0.2%的秋水仙素處理48 h誘變頻率高達60%，0.5%秋水仙素處理死亡率過高，藥害明顯，低于0.05%誘變頻率幾乎為零。用0.2%的秋水仙素處理48 h的薰衣草莖段的變異率最高。因此，該條件下的誘導效果最好。表1

2.2 多倍體的穩(wěn)定

用秋水仙素誘導的多倍體中有純合體和嵌合體。由于嵌合體產(chǎn)生的變異細胞生活力較弱、分裂速度慢，而正常二倍體細胞生活力強、分裂快，嵌合體如果不經(jīng)過分離穩(wěn)定則會產(chǎn)生回復突變，最后變成正常的二倍體。試驗選取變異明顯的植株，切段后轉(zhuǎn)接在MS+1 mg/L 6-BA+0.3 mg/LIBA繼代培養(yǎng)基上，如此反復培養(yǎng)多次，培養(yǎng)純合體，可得到純化的多倍體苗。從中選擇變異明顯的穩(wěn)定植株進行鑒定，經(jīng)檢測多倍體植株表現(xiàn)出高度的穩(wěn)定性。

表1 秋水仙堿的不同濃度和不同處理時間誘導四倍體植株變化

Table 1 Effect of colchicine at different concentration and different long time on tetraploid induction

秋水仙素濃度(%)Colchicinesconcentration處理時間(h)Treatingtime處理株數(shù)Numberoftreatedplants死亡數(shù)Numberofdeadplants死亡率(%)Deathrate變異數(shù)Numberofvariation變異率(%)Variationrate0 01244872151515001006 670000000 05244872151515021013 336 67001006 670 124487215151501206 6713 33020013 3300 22448721515151126 676 6713 3329713 336046 670 324487215151503402026 6727713 3346 6746 670 424487215151538132053 3386 673522033 3313 330 5244872151515915156010010050033 3300

2.3 多倍體的鑒定

以新疆薰衣草C-197的優(yōu)選優(yōu)株的組培苗的葉片、莖尖、植株為對照，進行檢測。

2.3.1 外部形態(tài)觀測

在相同的培養(yǎng)條件下，對薰衣草C-197誘導的多倍體植株與對照植株進行外部形態(tài)觀察比較，差異表現(xiàn)為：經(jīng)秋水仙素處理獲得的薰衣草多倍體出現(xiàn)葉片增大、肥厚，顏色深綠，植株粗壯，植株的生長速度明顯增快；研究表明，變異植株葉片及植株明顯大于對照植株。薰衣草多倍體葉片厚度、寬度、長度分別是二倍體的157.14%、173.93%、131.38%，莖粗、葉綠素含量分別是二倍體的213.21%、182.01%；方差分析結(jié)果表明，四倍體與二倍體葉片厚度、長度和寬度、莖粗及葉綠素含量均達到極顯著差異，因此，用葉片的大小、莖粗及葉綠素含量可作為鑒別多倍體與二倍體的重要指標。表2，圖1，圖2

2.3.2 氣孔鑒定

取植株形態(tài)有變化的植株與對照植株的葉表皮，用光學顯微鏡觀察氣孔，研究表明，形態(tài)有變化的植株與對照植株相比，表皮氣孔直徑明顯增大且單位面積內(nèi)的氣孔數(shù)明顯減少 ，可確定變異植株為多倍體。圖3，圖4

圖1 A為對照植株葉片，B 為變異植株葉片

Fig.1 A:control plant leaves,B: variation plant leaves

圖2 A為對照植株，B為變異植株

Fig.2 A:control plant,B:variation plant

表2 變異植株與對照植株外部形態(tài)及葉綠素含量比較

Table 2 External form of polyploid compared with diploid plant

樣品Sample葉Leaf(mm)厚 Thickness寬 Bladewidth長 Engthofleaf莖粗(mm)Stemdiameter葉綠素含量SPADChlorophyllcontent對照植株 Controlplant0 21Bb2 57Bb5 13Bb0 53Bb15 01Bb變異植株 Variationplant0 33Aa4 74Aa6 74Aa1 13Aa27 32Aa

注：表中數(shù)據(jù)后的大、小寫字母表示顯著水平為0.01和0.05

Note:The Large and owercase letters after the data mean that the significant level is 0.01 and 0.05

圖3 對照植株

Fig.3 Control plant

圖4 變異植株

Fig.4 Variation plant

2.3.3 流式細胞儀鑒定

以新疆薰衣草C-197的組培苗植株的葉片為對照,對變異株的新鮮幼嫩葉片進行細胞DNA含量測定，研究表明，對照植株葉片的DNA含量的主峰熒光強度為64(圖5)；變異植株(圖6)所示：植株的葉片DNA含量的主峰熒光強度為96，是對照植株的非整數(shù)倍，可確定為嵌合體，在用秋水仙素誘導多倍體時，這種非整數(shù)倍占大多數(shù)；而變異植株(圖7)所示：植株的葉片DNA含量的主峰熒光強度為128，為對照的兩倍，即可確定為純合的多倍體植株。圖5～7

圖5 對照植株DNA含量分布

Fig.5 The DNA content distribution of Control plants

圖6 變異植株DNA含量分布

Fig.6 The DNA content distribution of variation plants

圖7 變異植株DNA含量分布

Fig.7 The DNA content distribution of variation plants

3 討 論

薰衣草的良種繁育及種質(zhì)創(chuàng)新要通過良種篩選才得以實現(xiàn)，而良種篩選需要建立科學的篩選規(guī)程。在我國尚未建立薰衣草品種篩選體系和標準的情況下，研究通過對薰衣草主栽品種C-197的株型、花期、產(chǎn)花量等性狀進行調(diào)查，選擇出優(yōu)選優(yōu)株，并對優(yōu)選優(yōu)株進行組培快繁。在優(yōu)質(zhì)種苗快繁過程中，對C-197的優(yōu)選優(yōu)株進行了多倍體的誘導試驗。試驗結(jié)果表明：誘導薰衣草的秋水仙素濃度要適宜，不宜過低或過高，過低不能達到使植株產(chǎn)生變異的效果；過高會使植株產(chǎn)生生理性病害，同一濃度下處理的時間太短，對植株影響比較小，變異率也比較低；處理時間過長，也會對植株產(chǎn)生藥害，表現(xiàn)為植株干尖、植株褐化、死亡等癥狀，由此可見，影響誘導薰衣草多倍體的關(guān)鍵條件是秋水仙素濃度及處理時間。

用秋水仙素誘導的多倍體中嵌合體占的比例比較大。由于嵌合體產(chǎn)生的變異細胞生活力較弱、分裂速度慢，而正常二倍體細胞生活力強、分裂快，嵌合體如果不經(jīng)過分離穩(wěn)定則會產(chǎn)生回復突變，最后變成正常的二倍體。在分離的過程中，要不斷的去除那些變異小的及不能分化出正常植株的變異體，把變異大的，且能夠分化出正常植株的變異體進行繼代培養(yǎng)，一般培養(yǎng)5～6代以上，才能得到純化的多倍體植株。有關(guān)嵌合體(非整數(shù)倍體)在誘導中所占比例、什么樣的嵌合體更易于變?yōu)槎啾扼w(整數(shù)倍體)等問題還有待于今后繼續(xù)進行探究。

多倍體的鑒定可從植株的外部形態(tài)、葉片表皮氣孔的大小、密度及葉綠素含量來判定[3-12]，經(jīng)秋水仙素處理獲得的薰衣草多倍體出現(xiàn)葉片增大、肥厚，顏色深綠，植株粗壯，植株生長速度明顯增快的特征。因此，葉片的大小、莖粗及葉綠素含量等可作為鑒別多倍體與二倍體的重要指標。在誘導薰衣草多倍體的過程中，尤其是在多倍體組培植株的純化操作中，運用外部形態(tài)、葉片表皮氣孔的大小、密度及葉綠素含量來判斷多倍體或采用流式細胞儀對多倍體植株進行快速鑒定更為簡單、方便和快捷。在實際工作中，無需先去進行染色體鑒定該植株是幾倍體，只要知道是已加倍的植株，就可以先進行新品種的篩選，待該植株已被選擇為新品種，再進行染色體鑒定的倍性確認。這樣既能減少工作量，又能節(jié)省工作過程中大量的人力、物力及時間投入，更高效地選育出新的品種，再利用組培快繁技術(shù)提高變異植株的繁殖速率，不僅可縮短多倍體育種年限，而且可使新品種在短時期內(nèi)迅速的運用于生產(chǎn)。

4 結(jié) 論

用0.2%～0.4%的秋水仙素對新疆薰衣草C-197的組培苗進行誘導處理48～72 h，均可使新疆薰衣草C-197的組培苗產(chǎn)生多倍體，0.2%的秋水仙素處理48 h誘變頻率高達60%，但許多誘導出的多倍體并非都是正常的多倍體植株，而有相當部分是嵌合體(非整數(shù)倍體)，所以要進行多次反復的繼代，使誘導出的多倍體植株純化后，再通過觀測組培苗外部形態(tài)及氣孔大小、氣孔密度、或用流式細胞儀等方法進行初期的倍性鑒定，待選育的多倍體植株已被選擇為新品種時，再進行染色體鑒定的倍性確認。該試驗方法可更高效地選育出新的品種，并且利用組培快繁技術(shù)提高變異植株的繁殖速率，不僅可縮短多倍體育種年限，而且可使新品種在短時期內(nèi)迅速的應(yīng)用于生產(chǎn)，進而可有效提高和推進新疆薰衣草優(yōu)質(zhì)種苗的培育速率及種質(zhì)創(chuàng)新。

References)

[1] 江明，夏凱國，易清元.薰衣草的育種研究進展[J].香料香精化妝品，2009，8(4)：30-32.

JIANG Ming, XJA Kai-guo, YI Qing-yuan.(2009).The Study on Development of Breeding of Lavender [J].FlavorFragranceCosmetics,(4):30-32. (in Chinese)

[2] 鄧平平，羅樂，張啟翔. 植物組培與多倍體育種相結(jié)合的研究進展[J]. 北方園藝，2009，(5)：111-113.

DENG Ping-ping, LUO Le, ZHANG Qi-xiang.(2009).The Research of the Domestic Plant Tissue Culture in Connection with the Polyploid Breeding [J].NorthernHorticulture, (5):111-113. (in Chinese)

[3]楊輝，緱輝，周滌，等.彩色馬蹄蓮不同品種多倍體誘導研究初探[J].云南農(nóng)業(yè)大學學報，2014，29(2):229-234.

YANG Hui, GOU Hui, ZHUO Di, et al.(2014). Studies on Polyploid Induction of Different Varieties of the Colored Zantedeschia Hybrid[J]．JournalofYunnanAgriculturalUniversity,29(2):229-234 .(in Chinese)

[4] 陳柏君, 高山林, 卞云云. 黃芩組織培養(yǎng)同源四倍體的誘導[J]. 植物資源與環(huán)境學報，2000, 9(1):9-11.

CHEN Bai-jun, GAO Shan-lin, BIAN Yun-yun. (2000).The induction of autotetraploid of Scutellaria baicalensis Georgi by tissue culture[J].JournalofPlantResourcesandEnvironment, , 9(1):9-11. (in Chinese).

[5] 楊莉，韋美麗，黃天衛(wèi)，等. 用氣孔保衛(wèi)細胞葉綠體鑒定三七多倍體方法初探[J]. 現(xiàn)代中藥研究與實踐，2015, 29 (3)：15-17.

YANG Li, WEI Mei-li, HUANG Tian-wei, et al . (2015). Study on the Method of Field Induced Polyploid of Notoginseng with Colchicines [J] .ResearchandPracticeonChineseMedicines, 29(3):15-17. (in Chinese)

[6]康喜亮，郝秀英，劉敏，等.秋水仙素誘導天山雪蓮四倍體的研究[J]. 西北植物學報，2011，1(1)：180-185.

KANG Xi-liang, HAO Xiu-ying, LIU Min, et al.(2011). Tetraploid Induction of Saussurea involucrata Kar .et Kir .by Colchicine [J].ActaBotanicaBoreali-OccidentaliaSinica, 1(1):180 -185. (in Chinese)

[7] 于紅梅，王靜，趙密珍，等. 利用流式細胞儀檢測草莓倍性方法的優(yōu)化[J]. 南方農(nóng)業(yè)學報，2012，43(10)：1 530-1 533.

YU Hong mei, WANG Jin, ZHAO Mi-zhen, et al.(2012). Optimization of strawberry ploidy identification method using flow cytometry[J].JournalofSouthernAgriculture, 43(10):1,530-1,533. (in Chinese).

[8] Weber, S., Unker, F., & Friedt, W. (2005). Improved doubled haploid production protocol for brassica napus using microspore colchicine treatment in vitro and ploidy determination by flow cytometry.PlantBreeding, 124(5):511-513.

[9] Georgiev, V., Weber, J., Bley, T., & Pavlov, A. (2009). Improved procedure for nucleus extraction for dna measurements by flow cytometry of red beet (BetavulgarisL.) hairy roots.JournalofBioscience&Bioengineering, 107(4):439-441.

[10]鄭思鄉(xiāng),章海龍,董志淵,等. 東方百合多倍體誘導及種球繁育的研究[J].西南農(nóng)業(yè)大學學報(自然科學版), 2004， 26(3):260-263.

ZHENG Si-xiang, ZHANG Hai-liong, DONG Zhi-yuan, et al. (2004). Polyploidy induction and in vitro bulb propagation of Oriental hybrids[J].JournalofSouthwestAgriculturalUniversity(NaturalScience), 26(3):260-263. ( in Chinese)

[11] 王小華,熊麗,屈云慧,等.中國桔梗多倍體誘導與鑒定[J].云南植物研究，2006，28 (6):593-598.

WANG Xiao-hua, XIONG Li, QU Yun-hui, et al . (2006). The ployploid induction and identif ication of platycodon grandiflorus(Campanulaceae) in China [J].ActaBotanicaYunnanica, 28 (6):593-598. ( in Chinese)

[12] 李涵, 鄢波,張婷,等. 切花非洲菊多倍體誘變初報[J]. 園藝學報,2009, 36(4):605-610.

LI Han, YAN Bo, ZHANG Ting, et al .(2009). Preliminary Studies on Polyploidy Mutation of Cut Flower Gerbera jamesonii Bolus[J].ActaHorticulturaeSinica, 36(4):605-610.( in Chinese)

Preliminary Study on Polyploid Induction of Xinjiang Lavender

LIAO Qing1, Marhaba Wsman1, SHA Hong1, GAO Yan1, GONG Song-wang2, LIAO Zhi-li1

(1.ResearchInstituteofHorticulturalCrops,XinjiangAcademyofAgriculturalSciences,Urumqi830091,China; 2.HuochengCountyAgriculturalTechnologyExtendingStationsofXinjiang，HuochengXinjiang835200,China)

【Objective】 The polyploid plants will be induced by tissue culture seedlings of C-197, which is the main cultivar of Xinjiang lavender, and the rapid propagation system of polyploid plants will be established, the research aims to explore the effective ways of Xinjiang lavender germplasm resources innovation technology and provide the technical support for the Xinjiang lavender industry. 【Method】The optimal strains of C - 197 tissue-cultured plantlets were taken as the testing material, polyploid plants were induced on polyploid induction medium MS+1 mg/L 6-BA+2% DMSO + different concentrations of colchicine. Different time treatments causing polyploidy in different concentrations of colchicines were compared, thus determining the suitable concentration and time for C-197 polyploid colchicine concentration and treatment time. 【Result】Xinjiang lavender C-197 optimum strains of aseptic seedlings can make its seedlings to produce polyploid after 48-72 h explanted on induction medium MS+1 mg/L6-BA+2% DMSO +0.2%-0.4% colchicines. 【Conclusion】Using the test method of inducing polyploid plants from tissue-cultured plantlets of optimal strains of C-197 can quickly realize the lavender polyploid plant new variety breeding, shorten the breeding period, improve and promote the Xinjiang lavender quality seedlings breeding rate and germplasm innovation work.

Xinjiang lavender C-197; colchicine; induction; polyploid

LIAO Qing(1962-), Associate Professor, Bachelor of Agricalture, ornamental horticultare

10.6048/j.issn.1001-4330.2017.04.008

2017-02-07

新疆維吾爾自治區(qū)公益性科研院所基本科研業(yè)務(wù)費專項項目“新疆特色經(jīng)濟花卉薰衣草資源的種質(zhì)優(yōu)化”(KY2014033)

廖晴(1962-)，女，四川安岳人，副研究員，研究方向為園藝觀賞學，(E-mail)lq08270029@sina.com

S573+9

A

1001-4330(2017)04-0645-07

Supported by: Special Funded Projects of public welfare scientific institution in Xinjiang Uygur Autonomous Region "Xinjiang characteristic economy flowers lavender germplasm optimization of resources" (KY2014033)