人牙周膜干細(xì)胞與人牙髓干細(xì)胞的表型及生長(zhǎng)特性比較*

蔡洪楨 賀慧霞 王飛翔 張紹清

人牙周膜干細(xì)胞與人牙髓干細(xì)胞的表型及生長(zhǎng)特性比較*

蔡洪楨 賀慧霞 王飛翔 張紹清

目的：比較人牙周膜干細(xì)胞(human Periodontal ligament stem cells, hPDLSCs)和牙髓干細(xì)胞(human Dental pulp stem cells, hDPSCs)的表型及生長(zhǎng)特性，為深入研究這兩種細(xì)胞生物學(xué)特性提供依據(jù)。方法：組織塊法培養(yǎng)獲得原代人牙周膜細(xì)胞和牙髓細(xì)胞，采用有限稀釋法分別對(duì)兩者克隆化培養(yǎng)、分離純化得到hPDLSCs和hDPSCs，采用倒置相差顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài)、CCK8法檢測(cè)細(xì)胞生長(zhǎng)活性并繪制兩者生長(zhǎng)曲線、流式細(xì)胞技術(shù)檢測(cè)干細(xì)胞表面標(biāo)志物，分析比較兩種細(xì)胞集落形成率(colony formation ratio，CFR)。結(jié)果：hPDLSCs和hDPSCs鏡下形態(tài)相似，生長(zhǎng)曲線均呈“S”形，牙周膜細(xì)胞中STRO-1表達(dá)hPDLSCs陽(yáng)性率為15．88±0．48%，牙髓細(xì)胞中STRO-1表達(dá)hDPSCs陽(yáng)性率為11．86±0．43%，兩者無(wú)顯著性差異。兩種干細(xì)胞均陽(yáng)性表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞( M esenchymal stem cells，MSCs)表面標(biāo)志物STRO-1、CD29、CD 44、CD90、CD73和血管內(nèi)皮標(biāo)志物CD105，其中STRO-1、CD29、CD 90、CD 73、CD 105及CD166百分率達(dá)90%以上，陰性表達(dá)造血干細(xì)胞表面標(biāo)志物CD34和CD45。hDPSCs的集落形成率(4．31±0．08%)顯著高于hPDLSCs的集落形成率(2．68±0．06%) (P＜0．05)。結(jié)論：hPDLSCs和hDPSCs細(xì)胞的形態(tài)相似，均高表達(dá)MSCs表面特異性標(biāo)志物，hDPSCs的集落形成率顯著高于hPDLSCs，說(shuō)明hDPSC自我更新能力較hPDLSCs強(qiáng)，可為深入研究這兩種干細(xì)胞提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

人牙周膜干細(xì)胞；人牙髓干細(xì)胞；表型

人牙周膜干細(xì)胞(human Periodontal ligament stem cells, hPDLSCs)和牙髓干細(xì)胞(human Dental pulp stem cells, hDPSCs)均具有間充質(zhì)干細(xì)胞(Mesenchym al stem cells，MSCs)的生物學(xué)特性，有自我更新和多向分化潛能[1,2]，可向成骨樣細(xì)胞、成軟骨樣細(xì)胞及成脂樣細(xì)胞等多種細(xì)胞分化[3,4]，這種特性使hPDLSCs或hDPSCs替代骨髓基質(zhì)干細(xì)胞修復(fù)組織缺損成為可能，從而為干細(xì)胞的臨床應(yīng)用提供更多選擇，在口腔再生醫(yī)學(xué)研究中有很大的應(yīng)用前景。

本實(shí)驗(yàn)培養(yǎng)克隆hPDLSCs和hDPSCs，并對(duì)它們的形態(tài)、生長(zhǎng)曲線、干細(xì)胞表面標(biāo)志物及細(xì)胞集落形成率(colony form ation ratio, CFR)進(jìn)行分析比較，為后續(xù)實(shí)驗(yàn)選擇理想干細(xì)胞來(lái)源時(shí)提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

1．材料和方法

1．1 樣本收集經(jīng)患者或監(jiān)護(hù)人的知情同意，收集18-25歲因正畸需要拔除的完整雙尖牙或第三磨牙，排除齲壞、根尖病和牙周病的患牙。

1．2 主要儀器及試劑胎牛血清、牛血清白蛋白(Diagnostic Grade，BSA)、DMEM培養(yǎng)基、胰蛋白酶、雙抗及PBS(均購(gòu)自Hyclone公司，美國(guó))，CCK-8試劑盒(北京碧云天生物技術(shù)有限公司)，試劑盒STRO-1、IgM-FITC、CD29-PE、CD44-APC、CD34-PE、CD73-PE、CD90-PE、CD105-PE、CD146-PE、CD166-PE和CD45-PE (均購(gòu)自BD公司，美國(guó))，4%多聚甲醛(Solarbio)；酶標(biāo)儀(M 5,MDS,美國(guó))，倒置相差顯微鏡(Leica，德國(guó))，圖像采集系統(tǒng)(OLYMPUS，日本)；流式細(xì)胞儀(FACSCalibur，BD Bioscience，美國(guó))，無(wú)菌細(xì)胞培養(yǎng)室標(biāo)配(超凈臺(tái)，離心機(jī)，培養(yǎng)箱等)。

1．3 實(shí)驗(yàn)方法

1．3．1 細(xì)胞培養(yǎng)及干細(xì)胞純化擴(kuò)增

hPDLCs培養(yǎng)：取18-25歲拔除的第三磨牙，參照文獻(xiàn)[5,6]采用組織塊法原代培養(yǎng)，簡(jiǎn)述如下：清理牙結(jié)石及清除牙齦組織，牙冠朝下用含1%雙抗的PBS液反復(fù)沖洗，無(wú)菌條件下刮取根中三分之一牙周膜，剪碎，離心棄上清液，鋪T25培養(yǎng)瓶，倒置加含20%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基，在37℃、5%CO2、飽和濕度條件下培養(yǎng)4h翻瓶，繼續(xù)培養(yǎng)，待細(xì)胞匯合達(dá)80%時(shí)傳代。

hDPCs培養(yǎng):取前述已刮除牙周膜組織的牙齒，參照文獻(xiàn)[2,7]方法原代培養(yǎng)hDPCs，操作要點(diǎn)如下：無(wú)菌條件下劈開(kāi)牙冠，取出牙髓，用含1%雙抗的PBS液反復(fù)漂洗后剪碎，后續(xù)步驟同hPDLCs原代培養(yǎng)。

有限稀釋法克隆化培養(yǎng)純化、擴(kuò)增hPDLSCs和hDPSCs：參見(jiàn)文獻(xiàn)[8]分別收集的對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期人牙周膜細(xì)胞和牙髓細(xì)胞培養(yǎng)的上清液制作適應(yīng)性培養(yǎng)基;分別對(duì)人牙周膜細(xì)胞和牙髓細(xì)胞進(jìn)行消化離心去上清液，加適量適應(yīng)性培養(yǎng)基吹打后過(guò)細(xì)胞篩制備成單個(gè)細(xì)胞占細(xì)胞懸液的90%以上的細(xì)胞懸液,調(diào)整細(xì)胞密度并計(jì)數(shù),使其為10-15個(gè)/m l,以100μl/孔接種于96孔培養(yǎng)板中,培養(yǎng)24h及48h后標(biāo)記單個(gè)細(xì)胞孔,并補(bǔ)液至200μl/孔,接種第6天半量換液，此后3 天換一次液，光鏡下觀察克隆形成情況。培養(yǎng)7-14d,至出現(xiàn)細(xì)胞克隆(細(xì)胞數(shù)≥50為判定標(biāo)準(zhǔn)),待細(xì)胞克隆至孔底1/2-2/3后用0．25%不含EDTA的胰酶消化離心去上清液,轉(zhuǎn)移至48孔板擴(kuò)大培養(yǎng),如是擴(kuò)到24、12、6孔板，后轉(zhuǎn)入6cm、10cm培養(yǎng)皿、T25培養(yǎng)瓶繼續(xù)培養(yǎng)，待細(xì)胞鋪至瓶底80%左右時(shí)胰酶消化離心去上清液，再轉(zhuǎn)入T75培養(yǎng)瓶培養(yǎng)，至此得到第8代干細(xì)胞，按實(shí)驗(yàn)所需，如前制備成單細(xì)胞懸液，細(xì)胞計(jì)數(shù)，使其細(xì)胞總量大于1×107/m l，后續(xù)實(shí)驗(yàn)備用。另各取hPDLSCs和hDPSCs兩珠繼續(xù)傳代培養(yǎng)，觀察10余代。余下消化轉(zhuǎn)入凍存管梯度降溫進(jìn)液氮凍存?zhèn)溆谩?/p>

1．3．2 細(xì)胞生長(zhǎng)增殖曲線測(cè)定分別將hPDLSCs和hDPSCs細(xì)胞懸液，調(diào)整密度為1× 104/ m l接種于96孔板中，分12組，每組設(shè)4個(gè)復(fù)孔；24h后每天取一組，吸棄待檢測(cè)孔內(nèi)培養(yǎng)液，每孔加含10%CCK-8液的基礎(chǔ)培養(yǎng)基0．1m l，繼續(xù)在37℃、5%CO2條件下避光孵育4h后，于酶標(biāo)儀450nm波長(zhǎng)處測(cè)吸光度(OD)值，重復(fù)4次，取均值。連續(xù)檢測(cè)10d以上,分別以細(xì)胞培養(yǎng)時(shí)間為橫軸，OD值為縱軸繪制細(xì)胞生長(zhǎng)曲線。

1．3．3 流式細(xì)胞儀(flow cy tometry，F(xiàn)CM)分析Stro-1陽(yáng)性hPDLSCs和hDPSCs：分別取備用h PDLSCs和hDPSCs細(xì)胞懸液，細(xì)胞計(jì)數(shù)，使其細(xì)胞總量大于5×106，分別加入含5%BSA、20μl純化stro-1一抗體孵育液300μl，4℃避光孵育30m in, PBS清洗3次，去除殘留的抗體，重懸后避光條件下加入1∶32稀釋的異硫氰酸鹽熒光素(FITC)結(jié)合的IgM二抗(即IgM-FITC)在4℃條件下避光孵育30m in，然后進(jìn)流式細(xì)胞儀進(jìn)行檢測(cè)。

另取備用hPDLSCs和hDPSCs細(xì)胞懸液，調(diào)整密度至1×106/ m l，重懸并計(jì)數(shù)，按測(cè)試每種抗體需要1×105個(gè)細(xì)胞的要求將細(xì)胞懸液分裝EP管中，依次標(biāo)記，每組4管；嚴(yán)格按照試劑盒操作說(shuō)明分別與CD29、CD34、CD44、CD45、CD73、CD90、CD105、CD146及CD166相應(yīng)同型抗體濃度為0．2mg/m l的CD29-PE-A、CD34-PE、CD44-APC-H 7、CD45-PE、CD73-PE、CD90-PE、CD105-PE-A、CD146-PE、CD166-PE。蓋緊EP管，封口膜封口；放入轉(zhuǎn)盤(pán)中4℃條件下避光孵育50m in，PBS洗滌重懸，1600r/m in離心5m in，棄上清；重加PBS重懸過(guò)濾后采用流式細(xì)胞儀進(jìn)行細(xì)胞表面標(biāo)志物鑒定分析。

1．3．4 細(xì)胞集落形成率(colony form ation ratio，CFR)檢測(cè)

取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期人PDLSCs和DPSCs細(xì)胞，常規(guī)消化傳代方法，制成細(xì)胞懸液并反復(fù)吹打，充分分散細(xì)胞使單個(gè)細(xì)胞百分率在95%以上，各按照每皿5u l含50、100、200個(gè)細(xì)胞的濃度將細(xì)胞懸液接種到直徑為6cm的培養(yǎng)皿中，水平方向輕輕晃動(dòng)培養(yǎng)皿使細(xì)胞分散均勻。置于37℃，5% CO2孵箱中培養(yǎng)，每日鏡下觀察培養(yǎng)板中細(xì)胞集落形成情況，期間根據(jù)培養(yǎng)液pH變化適時(shí)更換新鮮培養(yǎng)液，3周終止培養(yǎng)，棄原液，PBS洗2遍，以4%多聚甲醛液固定20m in，棄之，PBS洗3遍，加適量甲苯胺藍(lán)染色液染色15m in，PBS洗去染色液，空氣干燥后，進(jìn)行細(xì)胞克隆集落計(jì)數(shù)，以≥50個(gè)細(xì)胞為一個(gè)集落計(jì)數(shù)，集落形成率計(jì)算方法：

集落形成率(%)=(集落數(shù)/接種細(xì)胞數(shù))×100%

1．4 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析實(shí)驗(yàn)結(jié)果用SPSS22．0 對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理分析，檢測(cè)結(jié)果以x±s 表示，STRO-1干細(xì)胞陽(yáng)性表達(dá)及CFR檢測(cè)結(jié)果組間比較，采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)，P＜0．05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2．結(jié)果

2．1 倒置相差顯微鏡下觀察

2．1．1 細(xì)胞原代培養(yǎng)原代培養(yǎng)第4d,見(jiàn)hPDLCs從組織塊周邊爬出，多呈紡棰形或長(zhǎng)梭形，放射狀排列，胞突細(xì)長(zhǎng)，胞體豐滿(mǎn)，胞質(zhì)均勻、豐富，彼此間成星網(wǎng)狀形連接排列(圖1)；原代培養(yǎng)的hDPCs第6d始見(jiàn)組織塊周邊爬出，呈短梭形或三角形,散布于組織塊周?chē)?胞突鈍圓，胞體豐滿(mǎn)，胞漿均勻、豐富，彼此間相對(duì)分散排列(圖2)。

圖1 原代培養(yǎng)4d的hPDLCs(×40)

圖2 原代培養(yǎng)6d的hDPSCs(×40)

2．1．2 有限稀釋法克隆化純化培養(yǎng)、擴(kuò)增干細(xì)胞hPDLSCs在鏡下呈長(zhǎng)梭形或三角形，呈放射狀排列，細(xì)胞之間排列疏密結(jié)合(圖3)；hDPSCs短三角形或紡棰形，旋渦狀排列，細(xì)胞間排列緊致(圖4)。第二代后h PDLSCs和hDPSCs增殖速度快，7-14d部分細(xì)胞匯成小集落，10-15d達(dá)到匯合，見(jiàn)細(xì)胞胞體豐滿(mǎn)，胞漿豐富，狀態(tài)良好。兩干細(xì)胞各傳10余代，見(jiàn)其傳代能力皆十分旺盛和穩(wěn)定，各代細(xì)胞形態(tài)和生長(zhǎng)狀態(tài)大體趨一致，胞體豐滿(mǎn)、胞漿豐富、胞質(zhì)均勻清晰，生長(zhǎng)狀況良好。

圖3 分離純化中的hPDLSCs (×100)

圖4 分離純化中的hDPSCs (×100)

2．2 細(xì)胞生長(zhǎng)增殖曲線CCK-8檢測(cè)結(jié)果顯示分離的h PDLSCs 的生長(zhǎng)曲線呈S形，包含潛伏期、對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期和平臺(tái)期，細(xì)胞對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期在第2-7d，吸光度值近7．54，其后進(jìn)入平臺(tái)期(圖5)；hDPSCs生長(zhǎng)曲線也呈S形，同樣包含潛伏期、對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期和平臺(tái)期，開(kāi)始的時(shí)2d為潛伏期，細(xì)胞生長(zhǎng)緩慢，細(xì)胞增殖從第3d開(kāi)始加速，進(jìn)入對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期，至第7d后細(xì)胞增殖減緩，約2d時(shí)間，吸光度值達(dá)7．63，其后細(xì)胞增殖進(jìn)入平臺(tái)期。

圖5 人PDLSCs與DPSCs生長(zhǎng)增殖曲線比較(兩組細(xì)胞相同時(shí)間點(diǎn)的吸光度值比較P＞0．05，無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異)

2．3 FCM分析經(jīng)組織塊法培養(yǎng)所得人牙周膜細(xì)胞中STRO-1表達(dá)hPDLSCs的陽(yáng)性率為15．88±0．48%，人牙髓細(xì)胞中STRO-1表達(dá)hDPSCs陽(yáng)性率為11．86±0．43%，兩者無(wú)顯著性差異(P＞0．05)。流式細(xì)胞分析圖中，兩種干細(xì)胞STRO-1表達(dá)均為陽(yáng)性，對(duì)間充質(zhì)干細(xì)胞(Mesenchymal stem cells，MSCs)表面標(biāo)志物CD29、CD44、CD73、CD90、CD146及CD166和血管內(nèi)皮標(biāo)志物CD105均高水平表達(dá)，低表達(dá)造血干細(xì)胞表面標(biāo)志物CD34和CD45(圖6),各標(biāo)志物陽(yáng)性表達(dá)百分率詳情見(jiàn)(表1)，與干細(xì)胞表面標(biāo)志物表達(dá)一致，說(shuō)明兩者具有干細(xì)胞的特性。

圖6 人PDLSCs與DPSCs表面標(biāo)志物的表達(dá)(前10圖為h PDLSCs的相關(guān)表面標(biāo)志物的表達(dá)，后10圖為hDPSCs的相關(guān)表面標(biāo)志物的表達(dá))

表1 兩種細(xì)胞表面標(biāo)志物表達(dá)

2．4 CFR測(cè)定兩干細(xì)胞于7-14d有細(xì)胞集落形成，鏡下觀見(jiàn)細(xì)胞形態(tài)呈短梭形，體積較小，排列疏密相間，中心細(xì)胞界限不清，形狀不規(guī)則，周邊細(xì)胞呈梭形或三角形(圖7)。hPDLSCs STRO-1細(xì)胞的CFR為2．68±0．08%，hDPSCs STRO-1細(xì)胞的CFR為4．31±0．08%，兩者具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P＜0．05)(圖8)。

圖7 細(xì)胞集落鏡下觀(×100)

圖8 人STRO-1PDLSCs與DPSCs集落形成率比較(P＜ 0．05，有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異)

3．討論

口腔再生醫(yī)學(xué)是通過(guò)對(duì)牙周組織、牙髓等口腔頜面部組織進(jìn)行再造和重生方法，來(lái)修復(fù)由牙周病、牙髓病及頜面創(chuàng)傷等疾病所造成的組織缺失，是一種替代治療方法，通過(guò)組織結(jié)構(gòu)具備的再生功能來(lái)改善傳統(tǒng)治療的缺點(diǎn)[9,10]，組織中的干細(xì)胞具有在機(jī)體內(nèi)外因素作用下不斷進(jìn)行自我更新和分化活動(dòng)的有克隆形成能力的未分化細(xì)胞，具有對(duì)損傷組織的修復(fù)和穩(wěn)定功能[11]。人牙周膜干細(xì)胞(hPDLSCs)和牙髓干細(xì)胞(hDPSCs)都是牙源性成體干細(xì)胞，具有多向分化、高度增殖及自我更新的生物學(xué)特性，可以從醫(yī)療廢棄物如正畸需要拔除的牙、多生牙、埋伏牙、阻生拔除的智齒等中獲得，逐漸成為組織工程和再生醫(yī)學(xué)研究干細(xì)胞的重要來(lái)源，在牙周牙髓等口頜面創(chuàng)傷修復(fù)、組織再生及重建中表現(xiàn)出越來(lái)越廣闊的應(yīng)用前景，具有重要的轉(zhuǎn)化研究?jī)r(jià)值。組織再生過(guò)程的關(guān)鍵是組織缺損區(qū)域有足夠數(shù)量的相關(guān)功能細(xì)胞遷移并發(fā)揮干細(xì)胞招募、增殖和分化等作用來(lái)支持細(xì)胞、黏附分子和基質(zhì)構(gòu)成的微環(huán)境，從而實(shí)現(xiàn)組織重建。細(xì)胞原代培養(yǎng)的方法有組織塊貼附法和酶消化法兩種，相對(duì)酶消化法，細(xì)胞經(jīng)組織塊貼附法培養(yǎng)損傷較小。有研究[12]認(rèn)為組織塊貼附法更易于細(xì)胞析出貼壁，且細(xì)胞生物學(xué)特征更穩(wěn)定。加之人牙周膜和牙髓組織體積小，故更合適采用貼附法進(jìn)行人牙周膜細(xì)胞和牙髓細(xì)胞原代培養(yǎng)。但組織塊貼附法培養(yǎng)原代細(xì)胞，易混有其他如上皮樣細(xì)胞、牙髓成纖維細(xì)胞和牙周膜成纖維細(xì)胞等，因干細(xì)胞具有體外克隆化生長(zhǎng)的特性，為進(jìn)一步分離純化人牙周膜干細(xì)胞和牙髓干細(xì)胞，本實(shí)驗(yàn)中，我們采用實(shí)驗(yàn)條件要求簡(jiǎn)單、花費(fèi)少的有限稀釋法分別對(duì)兩細(xì)胞進(jìn)行克隆化培養(yǎng)，從混合細(xì)胞中分離、克隆純化干細(xì)胞，形成克隆的人牙周膜干細(xì)胞和牙髓干細(xì)胞。我們通過(guò)兩細(xì)胞克隆實(shí)驗(yàn)觀察到兩種細(xì)胞均可克隆樣生長(zhǎng)，形成克隆集落，在一定程度上說(shuō)明人牙髓干細(xì)胞與牙周膜干細(xì)胞類(lèi)似，均表現(xiàn)干細(xì)胞的一些基本特性，實(shí)驗(yàn)結(jié)果還發(fā)現(xiàn)hPDLSCs和hDPSCs細(xì)胞形態(tài)表現(xiàn)十分相似，生長(zhǎng)模式相近；兩干細(xì)胞各傳10余代，傳代能力仍十分旺盛和穩(wěn)定，各代細(xì)胞形態(tài)和生長(zhǎng)狀態(tài)大體趨一致，胞體豐滿(mǎn)、胞漿豐富、胞質(zhì)均勻清晰，生長(zhǎng)狀況良好，適合作為各干細(xì)胞的種子來(lái)源，能保證實(shí)驗(yàn)的可靠性和重復(fù)性。兩者各自STRO-1干細(xì)胞表達(dá)比例無(wú)顯著差異，但兩者細(xì)胞集落形成率具有顯著差別，說(shuō)明hDPSC自我更新能力較強(qiáng)，內(nèi)環(huán)境更穩(wěn)定,這與賀慧霞等[13]研究結(jié)果一致，但兩種細(xì)胞作為種子細(xì)胞在牙再生中運(yùn)用的差異，尚需大量的相關(guān)實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步研究，本實(shí)驗(yàn)可為干細(xì)胞臨床轉(zhuǎn)化運(yùn)用選擇理想細(xì)胞來(lái)源時(shí)提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)，同時(shí)為牙周組織工程獲得理想的種子細(xì)胞提供了可靠的獲取方法。

牙源性組織包含著復(fù)雜的細(xì)胞群，比如成牙骨質(zhì)細(xì)胞、成纖維細(xì)胞和間充質(zhì)細(xì)胞等，其中僅一小部分是具有自我更新能力的干細(xì)胞。賀慧霞等[14]經(jīng)人來(lái)源的STRO- 1抗體通過(guò)免疫磁珠分離系統(tǒng)對(duì)犬PDLSCs進(jìn)行分離并比較兩種細(xì)胞的體外生長(zhǎng)特性，結(jié)果顯示人與犬PDLSCs的細(xì)胞形態(tài)、生長(zhǎng)模式相似，同時(shí)CFR檢測(cè)發(fā)現(xiàn)人STRO-1+細(xì)胞的CFR遠(yuǎn)高于犬STRO-1+ 細(xì)胞的CFR，表明兩種細(xì)胞的基本生長(zhǎng)特性相似，但其細(xì)胞亞群分化層次不同，不同亞群增殖能力和間充質(zhì)干細(xì)胞特異性表面標(biāo)志STRO-1+表達(dá)存在差異。STRO-1是間充質(zhì)細(xì)胞的表面標(biāo)志物，其陽(yáng)性表達(dá)是血管來(lái)源干細(xì)胞的特征性標(biāo)志[15]，常被用作鑒定牙髓干細(xì)胞和牙周膜干細(xì)胞的標(biāo)志物，同時(shí)，MSCs是一種多功能分化細(xì)胞，可高表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞特異的表面標(biāo)記CD29、CD44、CD105、CD166和CD146(內(nèi)皮細(xì)胞表面分子，中胚層標(biāo)記物)等干細(xì)胞特異性標(biāo)志物，但不表達(dá)造血干細(xì)胞CD14、CD34和CD45 等特異性標(biāo)志物[16]。本實(shí)驗(yàn)分離純化的hPDLSCs和hDPSCs具有相似的生長(zhǎng)特性，聯(lián)合使用多種抗體進(jìn)行鑒定，細(xì)胞表面標(biāo)志物表達(dá)結(jié)果與以往報(bào)道相似[17,18]，說(shuō)明兩種細(xì)胞均有干細(xì)胞潛質(zhì),為深入研究?jī)烧叩呐R床應(yīng)用提供了實(shí)驗(yàn)依據(jù)。不足的是大多數(shù)干細(xì)胞目前尚無(wú)特異的標(biāo)志分子表達(dá)，需結(jié)合如細(xì)胞克隆化培養(yǎng)等其它方法進(jìn)行干細(xì)胞及其細(xì)胞亞群的生物學(xué)特性異同，有待進(jìn)一步深入研究。

綜上所述:人PDLSCs和DPSCs經(jīng)誘導(dǎo)克隆培養(yǎng)，結(jié)果兩細(xì)胞都具備自我更新和分化能力等干細(xì)胞潛質(zhì)，但發(fā)現(xiàn)hDPSCs相比hPDLSCs自我更新能力較強(qiáng)，內(nèi)環(huán)境更穩(wěn)定；兩者均表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞表面標(biāo)志物，具有牙源性間充質(zhì)干細(xì)胞的特點(diǎn)，有望成為牙周組織工程理想的種子細(xì)胞。

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The periodontal ligamentstem cellsand biological characteristicsofhuman dentalpulp stem cellsand phenotype

CAIHong-zhen,HEHui-xia,WANG Fei-xiang,ZHANG Shao-qing(Departmentof Stomatology,Chinese PLAGeneral Hospitaland Chinese PLAMedical School,Beijing 100853,China)

Objective:We aim to compare the biological characteristics and phenotypic after cultivating and separating of the human Periodontal ligament stem cells (hPDLSCs) and human Dental pulp stem cells (hDPSCs). M ethods:HPDLSCs and hDPSCs w ere respectively separated and amplificated from the original generation of cultures by magnetic-activated cell selection system (MACSS). Inverted phase contrast m icroscope was employed to observe the morphology. What is more, we make use of CCK-8 method to check and draw up the grow th curves. Moreover, the expression of stem cell surface markers were analysized by flow cytometry instrument (FCM). Finally, we analyse and compare the colony formation ratio (CFR). Results:Fusiform or triangle, the morphology of hPDLSCs and hDPSCs is similar. The grow th curvesare "S" shape. The expression ratio of STRO-1 in hPDLSCs and hDPSCs is respectively 15.88±0.48% and 11.86±0.43%. There is no significant difference between the two cells. But the hDPSCs colony formation rate (4.31±0.08%) is significantly higher than that of the hPDLSCs (2.68±0.06%)(P＜0.05). Both of the tw o stem cells are positive for the CD 29, CD44, CD90 and CD105 which are characterized by the employed to distinguish hPDLSCs and hDPSCs, and we can conclude that the separated stem cells share sim ilar morphology. HPDLSCs and hDPSCs that can refresh and differentiate multi-directionally are characterized by stem cells due to the expression of stem cell markers. But the hDPSCs owns a significantly stronger colony formation rate than that of hPDLSCs, then we can make a conclusion that hDPSCs is a prom ising stem cells resource.

human periodontal ligament stem cells; human dental pulp stem cell; phenotype

R 781

A

1672-2973(2017)02-0091-06

2016-10-11)

蔡洪楨 解放軍總醫(yī)院口腔醫(yī)學(xué)研究所碩士生北京100853

賀慧霞 通訊作者解放軍總醫(yī)院口腔科主任醫(yī)師副教授北京100853

王飛翔 解放軍總醫(yī)院口腔醫(yī)學(xué)研究所碩士北京100853

張紹清 解放軍總醫(yī)院口腔醫(yī)學(xué)研究所碩士生北京100853