番茄中一個(gè)抗病基因功能的研究

許 偉, 苗 敏, 唐曉鳳, 劉永勝

(合肥工業(yè)大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,安徽 合肥 230009)

番茄中一個(gè)抗病基因功能的研究

許 偉, 苗 敏, 唐曉鳳, 劉永勝

(合肥工業(yè)大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,安徽 合肥 230009)

植物中最大的一類(lèi)抗病基因(R)編碼的蛋白質(zhì)含有卷曲螺旋結(jié)構(gòu)(coiled-coil,CC) 、核苷酸結(jié)合位點(diǎn)(nucleotide-binding site,NBS)和富含亮氨基酸的重復(fù)序列(leucine-rich repeat,LRR)結(jié)構(gòu)域。R基因以抗病著稱。文章通過(guò)酵母雙雜篩選方式獲得了DDI3基因,該基因與番茄中重要功能基因DDB1具有相互作用,而又含有CC-NBS-LRR結(jié)構(gòu),預(yù)測(cè)具有R基因抗病性,參與植物抗病。研究中構(gòu)建了DDI3過(guò)表達(dá)載體并通過(guò)根瘤農(nóng)桿菌介導(dǎo)轉(zhuǎn)化到野生型番茄中,篩選獲得DDI3高表達(dá)的陽(yáng)性轉(zhuǎn)基因株系。通過(guò)病菌接種實(shí)驗(yàn),觀察植株發(fā)病情況和統(tǒng)計(jì)細(xì)菌菌落數(shù),結(jié)果發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)基因植株的抗病性明顯高于野生型番茄。DDI3基因?qū)μ岣叻训目共⌒杂泻芨叩膬r(jià)值,為采用基因工程方法改良番茄植株抗病性做出新的嘗試,同時(shí)又與番茄DDB1基因具有相互作用,對(duì)研究DDB1基因在參與植物抗病途徑中的功能研究提供新的方向。

DDI3基因;CC-NBS-LRR結(jié)構(gòu)域;轉(zhuǎn)基因番茄;抗病性

自然界中真菌、細(xì)菌以及線蟲(chóng)引起的植物疾病對(duì)農(nóng)作物生產(chǎn)帶來(lái)了毀滅性的影響[1]。外界不良的環(huán)境以及各種病原菌通常會(huì)給植物生長(zhǎng)發(fā)育造成一定傷害,同時(shí)植物在長(zhǎng)期的進(jìn)化過(guò)程中也形成了完善的自我保護(hù)機(jī)制，以抵御病原菌入侵以及外界不良環(huán)境的傷害。研究表明植物抗病R基因能夠識(shí)別病原體引發(fā)的過(guò)敏性反應(yīng)(hypersensitive response,HR),從而提高植物對(duì)病害的抵抗[2]。近年來(lái),已經(jīng)從不同的植物中克隆了多個(gè)R基因,其中多數(shù)的R基因都具有核苷酸結(jié)合位點(diǎn)(nucleotide binding site,NBS)和富含亮氨基酸的重復(fù)序列(leucine-rich repeat,LRR)結(jié)構(gòu)域[3]。研究顯示,NBS-LRR抗病基因主要編碼3個(gè)結(jié)構(gòu)域，即TIR(toll and IL-1 receptors)/CC(coiled-coil)、NBS和LRR,依據(jù)N端信號(hào)肽的不同,將NBS-LRR結(jié)構(gòu)劃分為以下2類(lèi)結(jié)構(gòu)：① 包括Toll/白細(xì)胞介素-1受體類(lèi)似結(jié)構(gòu)(TIR),形成結(jié)構(gòu)TIR-NBS-LRR;② 不包括TIR結(jié)構(gòu)域,但是一般被編碼卷曲螺旋結(jié)構(gòu)(CC)域所替代,形成CC-NBS-LRR結(jié)構(gòu)[4]。

不同的NBS-LRR基因之間的核苷酸序列的差異性比較大,從而研究具有一定復(fù)雜性。但是已經(jīng)在很多植物物種發(fā)現(xiàn)了CC-NBS-LRR的抗病基因,如小麥中Lr10抗葉銹病基因編碼有3個(gè)結(jié)構(gòu)域，分別為CC、NBS和LRR[5];水稻中相關(guān)研究比較廣泛,研究主要集中在抗稻瘟病抗性基因。稻瘟病抗性基因Pik-p,通過(guò)RNA干擾(RNA interference，RNAi)技術(shù)確定NBS-LRR結(jié)構(gòu)具有抗病性[6];稻瘟病抗性Pi64基因在發(fā)育的所有時(shí)期和檢測(cè)的組織中持續(xù)表達(dá)[7];BPH26是褐飛虱抗性26號(hào)基因,通過(guò)圖譜定位克隆了BPH26基因,其中該基因編碼了富含亮氨酸的核苷酸結(jié)構(gòu)蛋白,BPH26被廣泛納入優(yōu)良水稻品種[8];Pi54rh基因?qū)儆诟缓涟彼岬暮塑账峤Y(jié)構(gòu)域R家族中的抗性基因,擁有獨(dú)特的鋅指結(jié)構(gòu)域。Pi54rh基因在葉片中持續(xù)表達(dá)在正常的水平,但是接種病原菌96 h后表達(dá)量上調(diào)了3.8倍,具有明顯的抗性上調(diào)[9];晚疫病是由致病疫霉菌引起的病害,是番茄中一類(lèi)最具破壞性的病害。Ph-3是番茄中第1個(gè)被克隆出來(lái)的晚疫病抗性基因,并編碼著富含亮氨酸的核苷酸結(jié)構(gòu)蛋白[10]。

番茄是世界上第二大蔬菜作物,也是提取番茄紅素等物質(zhì)的重要原料,但是番茄生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程受到各種病原菌侵害的制約[11]。番茄的病害主要有40多種,主要包括青枯病、早疫病、晚疫病、枯萎病、葉霉病等病菌[12]。

本研究通過(guò)酵母雙雜的方法篩選到與番茄中重要DDB1基因有相互作用的DDI3,并利用番茄基因組信息確定了DDI3具有CC-NBS-LRR結(jié)構(gòu),功能預(yù)測(cè)具有抗病作用,因此確定了以DDI3基因?yàn)檠芯繉?duì)象?？寺×朔袲DI3基因,重組到植物過(guò)表達(dá)載體中,通過(guò)重組質(zhì)粒,在番茄野生型植株中過(guò)表達(dá)DDI3基因。采用農(nóng)桿菌介導(dǎo)法對(duì)野生型番茄進(jìn)行遺傳轉(zhuǎn)化,獲得陽(yáng)性轉(zhuǎn)基因株系。通過(guò)在番茄幼苗上接種丁香假單胞菌番茄致病變種(Pseudomonas.syringaepv.tomato,Pst),觀察番茄植株病斑與生長(zhǎng)狀況,計(jì)算相同位置葉片1 cm2菌落數(shù)。比較發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)基因苗與野生型AC苗的差異較明顯,從而發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)基因植株DDI3過(guò)表達(dá)提高了番茄抗病性。

1 材料與方法

番茄(SolanumlycopersicumMill.cv.Ailsa Craig)、大腸桿菌(Escherichiacoli)DH5α菌株、丁香假單胞菌番茄致病變種Pst.DC3000(Pseudomonas.syringaepv.tomato)、農(nóng)桿菌(Agrobacteriumtumefaciens)菌株 EHA105及pBI121雙元表達(dá)載體均為實(shí)驗(yàn)室保存。Trizol購(gòu)自于Invitrogen、 反轉(zhuǎn)錄酶、Taq DNA 聚合酶、pEASY-Blunt載體、T4-DNA連接酶、限制性內(nèi)切酶購(gòu)自TaKaRa公司,質(zhì)粒提取試劑盒、瓊脂糖凝膠回收試劑盒購(gòu)自TIANGEN 公司。

1.1 番茄DDI3目的基因的克隆

按照Sol Genomics Network中番茄DDI3(Solyc05g008070.2.1)基因序列設(shè)計(jì)引物DDI3-F1、DDI3-R1、DDI3-F2、DDI3-R2,根據(jù)所構(gòu)建目的載體上酶切位點(diǎn),并運(yùn)用軟件Primer Premier 5對(duì)DDI3基因序列進(jìn)行限制性內(nèi)切酶位點(diǎn)分析,設(shè)計(jì)含SmaⅠ和XhoⅠ酶切位點(diǎn)的特異引物,見(jiàn)表1所列。

表1 本文研究所用的引物

提取野生型番茄幼苗總RNA,通過(guò)聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)擴(kuò)增DDI3基因,PCR 條件如下:95 ℃預(yù)變性2 min;95 ℃ 20 s;51℃ 20 s;72 ℃ 160 s,32 個(gè)循環(huán);72 ℃ 5 min,獲取目的基因PCR產(chǎn)物。

1.2 DDI3雙元過(guò)表達(dá)載體構(gòu)建

將PCR 產(chǎn)物連接于pEASY-Blunt載體后轉(zhuǎn)化到大腸桿菌DH5α中。對(duì)重組質(zhì)粒進(jìn)行菌落PCR和酶切鑒定,陽(yáng)性克隆送南京金斯瑞生物技術(shù)服務(wù)有限公司測(cè)序,測(cè)序結(jié)果用DNAMAN軟件進(jìn)行分析。用SmaⅠ和XhoⅠ雙酶切 pEASY-Blunt-DDI3重組質(zhì)粒和pBI121-35S表達(dá)載體質(zhì)粒,并膠回收目的基因片段和表達(dá)載體片段。將目的片段連接于pBI121-35S載體,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化到DH5α大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞中,篩選出陽(yáng)性菌落,通過(guò)菌落PCR和限制性內(nèi)切酶雙酶切鑒定重組質(zhì)粒[13]。

1.3 番茄的遺傳轉(zhuǎn)化及轉(zhuǎn)基因植株的鑒定

根據(jù)文獻(xiàn)[14-16],將重組pBI121-35S-DDI3質(zhì)粒通過(guò)凍融法導(dǎo)入農(nóng)桿菌EHA105,在含有利福平(Rifampicion,Rif)和卡那霉素(Kanamycin,Kana)各50 mg/L的培養(yǎng)基上28 ℃培養(yǎng)2 d,菌落PCR鑒定獲取陽(yáng)性菌株,并保存。

1.3.1 番茄發(fā)苗及獲取愈傷組織過(guò)程

番茄種子用自來(lái)水浸泡12 h 后,用75%的酒精漂洗2 min,再用10% 次氯酸鈉溶液浸泡消毒15 min,用無(wú)菌水漂洗8次后播種至1/2 MS培養(yǎng)基。22 ℃,暗培養(yǎng)4 d左右,露白后轉(zhuǎn)至光照下培養(yǎng)。待子葉完全舒展開(kāi)時(shí),將子葉剪下后放置于預(yù)培養(yǎng)基MS+1 mg/L 6-BA(6-benzy lamino adenine,6-芐氨基腺嘌呤)+0.04 mg/L IAA (indoleacetic acid,吲哚-3-乙酸)培養(yǎng)2 d;將含有pBI121-35S-DDI3重組質(zhì)粒的農(nóng)桿菌28 ℃過(guò)夜培養(yǎng)后,室溫下5 000 r/min離心5 min收集菌。

1.3.2 侵染過(guò)程與鑒定轉(zhuǎn)基因陽(yáng)性株系

用稀釋后的農(nóng)桿菌浸染預(yù)培養(yǎng)3 d的子葉10 min;用無(wú)菌濾紙吸去子葉上多余菌液后,將子葉轉(zhuǎn)到共培養(yǎng)基MS+1 mg/L KT(kinetin,激動(dòng)素)+1 mg/L 2,4-D(2,4-dichlo rophenoxyacetic acid,2,4-二氯苯氧乙酸)+10 mg/L ACE(acetosyringone,乙酰丁香酮)上培養(yǎng)2 d;然后轉(zhuǎn)到篩選培養(yǎng)基MS+500 mg/L CB(carbenicillin,羧芐青霉素)+2 mg/L 6-BA+50 mg/L Kana+0.2 mg/L IAA上,22 ℃下光照培養(yǎng)(16 h 光照,8 h黑暗),每3周更換1次培養(yǎng)基;待愈傷組織上長(zhǎng)出的不定芽長(zhǎng)至2 cm左右時(shí),將芽切下轉(zhuǎn)移至生根培養(yǎng)基MS+500 mg/L CB+2 mg/L IAA+50 mg/L Kana上生根。待長(zhǎng)出完整根系后移入營(yíng)養(yǎng)土,放于溫室中栽培。提取番茄基因組DNA,以DNA為模版,pBI121-35S質(zhì)粒為陽(yáng)性對(duì)照,同時(shí)用野生型番茄DNA作為陰性對(duì)照,根據(jù)pBI121 載體篩選標(biāo)記基因新霉素磷酶基因(NPTⅡ)(GenBank登錄號(hào) AF485783)序列合成引物NPTⅡ-F 和NPTⅡ-R,對(duì)轉(zhuǎn)基因植株進(jìn)行PCR 鑒定。 PCR 反應(yīng)條件為：95 ℃預(yù)變性5 min；95 ℃變性30 s ，58 ℃退火30 s，72 ℃延伸50 s ，30個(gè)循環(huán)；最后72 ℃延伸5 min。

1.4 病菌接種

挑取Pst.DC3000單克隆,用含有利福平(Rif,50 mg/L)的LB液體培養(yǎng)液在28 ℃擴(kuò)大培養(yǎng)48 h。將培養(yǎng)好的菌體離心,6 000 r/min離心4 min,除去上清。用滅菌好的10 mmol/L MgCl2溶液懸浮起菌體,使Pst.DC3000菌體均勻溶于MgCl2溶液中。測(cè)定菌體OD600 nm值,將菌體用10 mmol/L MgCl2液體稀釋到OD600 nm=0.5,作為菌體接種濃度,正常情況1個(gè)OD600 nm=108～109cfu/mL。將長(zhǎng)勢(shì)基本相同的轉(zhuǎn)基因番茄和野生型番茄,分別浸泡于OD600 nm=0.5的Pst.DC3000菌液中25 s,每組分別有5棵轉(zhuǎn)基因苗和野生型苗作為實(shí)驗(yàn)組,未處理過(guò)的轉(zhuǎn)基因和野生型番茄,作為空白對(duì)照組。處理過(guò)的番茄植株,72 h里套袋保持水分,并放置于人工培養(yǎng)室正常培養(yǎng)6 d,觀察植株發(fā)病情況。

通過(guò)平板劃線的方法計(jì)算接種病菌活體菌體數(shù)目。取100 μL的侵染病菌即OD600 nm=0.5,將其加入到900 μL滅菌的MgCl2溶液中,將菌體稀釋了10倍。再?gòu)南♂尰旌暇鶆虻木w中取100 μL將其加入到900 μL滅菌的MgCl2溶液中,又將菌體稀釋了10倍,依次將菌體稀釋到10-4、10-5、10-63個(gè)梯度。從3個(gè)菌體溶液中分別取10 μL,用移液槍將其慢慢加到含有利福平(Rif,50 mg/L)的LB固體培養(yǎng)基上,讓菌體沿著培養(yǎng)基流動(dòng),均勻涂于培養(yǎng)基上,放置于28 ℃恒溫箱中生長(zhǎng)2 d。從3個(gè)梯度中選擇最理想的板子,計(jì)算菌落數(shù),實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,計(jì)算平均值。

1.5 比較染病菌株葉片菌落數(shù)

取處理過(guò)6 d的轉(zhuǎn)基因和野生型番茄植株,比較不同番茄植株相同位置1 cm2葉片菌落數(shù)量差異。取樣過(guò)程中,選取轉(zhuǎn)基因番茄與野生型番茄相同位置葉片,用打孔器鉆取葉片上、中、下3個(gè)位置的圓孔樣品(1 cm2)。加入1 mL 10 mmol/L MgCl2溶液,將葉片研磨均勻,轉(zhuǎn)移到1.5 mL EP管中。用塑料棒均勻攪10 s,使每個(gè)EP管中葉片上菌落混合均勻。將菌體進(jìn)行稀釋,菌體稀釋到10-2、10-32個(gè)梯度。分別取10 μL,用移液槍將菌液涂于含有利福平(Rif,50 mg/L)的LB培養(yǎng)基上,使菌體沿著培養(yǎng)基流動(dòng),均勻涂于培養(yǎng)基上。處理接菌的轉(zhuǎn)基因葉片、接菌的野生型葉片、未接菌的野生型和轉(zhuǎn)基因葉片4種樣品,每組選取3棵不同番茄。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,計(jì)算1 cm2葉片上的菌落數(shù)平均值,比較菌體數(shù)量差異。

2 結(jié)果與分析

2.1 DDI3基因與測(cè)序

以番茄cDNA為模板,用DDI3-F1和DDI3-R1為外側(cè)引物PCR 擴(kuò)增。再以PCR產(chǎn)物為模板,以DDI3-F2和DDI3-R2為內(nèi)側(cè)引物擴(kuò)增,產(chǎn)物電泳檢測(cè)結(jié)果如圖1所示,圖1中,擴(kuò)增產(chǎn)物為一條特異條帶,與預(yù)期的番茄DDI3基因片段2 511 bp大小一致。將其連接到pEASY-Blunt載體上,酶切鑒定正確,送測(cè)序。測(cè)序結(jié)果用DNAMAN和Chromas軟件分析序列,與番茄DDI3基因在番茄基因組中序列一致。

圖1 DDI3基因PCR擴(kuò)增

2.2 表達(dá)載體鑒定

用SmaⅠ和XhoⅠ進(jìn)行雙酶切得到與預(yù)期結(jié)果大小一致2 511 bp的DDI3基因片段,證明DDI3基因已經(jīng)連接到植物表達(dá)載體35S-pBI121上,如圖2所示。

圖2 pBI121-35S-DDI3載體雙酶切鑒定結(jié)果

2.3 轉(zhuǎn)基因植株的鑒定

植物組織培養(yǎng)獲得轉(zhuǎn)基因番茄株系,從葉片中提取轉(zhuǎn)基因植株基因組DNA,利用植物表達(dá)載體pBI121 攜帶的NPTⅡ基因?qū)χ仓赀M(jìn)行陽(yáng)性鑒定,預(yù)期擴(kuò)增片段長(zhǎng)度為 857 bp。共得到組培苗12株,其中6株經(jīng)過(guò)鑒定為轉(zhuǎn)基因番茄苗,結(jié)果如圖3所示。圖3表明,負(fù)對(duì)照野生型植株DNA未能擴(kuò)增出857 bp 條帶,而正對(duì)照35S-pBI121質(zhì)粒和轉(zhuǎn)基因株系DNA擴(kuò)增出857 bp 條帶,說(shuō)明攜帶NPTⅡ基因的載體片段已整合于受體植株核染色體組中。

圖3 轉(zhuǎn)基因番茄植株的PCR鑒定

2.4 轉(zhuǎn)基因植株的表型

DDI3轉(zhuǎn)基因植株與野生型生長(zhǎng)狀況相比,沒(méi)有明顯差異,轉(zhuǎn)基因植株果實(shí)顏色在成熟時(shí)期與野生型植株果實(shí)基本一致，雖然具有抗病CC-NBS-LRR結(jié)構(gòu),但未能改變番茄的表型性狀。發(fā)苗實(shí)驗(yàn)中,在相同實(shí)驗(yàn)條件下,可以觀察到相同生長(zhǎng)期內(nèi)DDI3轉(zhuǎn)基因種子萌發(fā)速率要慢于野生型AC番茄種子。

2.5 接種Pst.DC3000的染病情況

通過(guò)稀釋平板的方法,統(tǒng)計(jì)計(jì)算出接種的Pst.DC3000菌體濃度1個(gè)OD600 nm=2.78×108cfu/mL,菌體活性滿足條件,具有很強(qiáng)的侵染活力。分別用Pst.DC3000處理轉(zhuǎn)基因番茄和野生型番茄,發(fā)現(xiàn)處理6 d后,DDI3轉(zhuǎn)基因番茄的病斑性狀比較少,而野生型番茄病斑數(shù)目與生長(zhǎng)狀況有明顯變化,如圖4所示。相比之下,DDI3過(guò)表達(dá)的轉(zhuǎn)基因番茄對(duì)Pst.DC3000具有一定的抵抗作用。

圖4 番茄植株接菌發(fā)病情況

2.6 比較發(fā)病植株菌落數(shù)量差異

用打孔器鉆取不同植株相同位置1 cm2葉片。將1 cm2葉片上的菌落均勻溶于滅菌的10 mmol/L MgCl2溶液中,通過(guò)稀釋平板涂板的方法,計(jì)算出接菌DDI3轉(zhuǎn)基因番茄與接菌野生型AC番茄的菌落數(shù)。選取稀釋10-3為最宜計(jì)算值。為計(jì)算出更加準(zhǔn)確的菌落數(shù),吸取10 μL菌液沿著培養(yǎng)基從上往下流動(dòng),均勻涂于培養(yǎng)基上。每次3個(gè)重復(fù),取平均值,減少實(shí)驗(yàn)誤差。對(duì)5個(gè)獨(dú)立的實(shí)驗(yàn)組進(jìn)行分析比較,如圖5所示,圖5中,**表示高度顯著;*表示具有差異。

圖5 番茄菌落數(shù)比較圖

由圖5可以看出,野生型AC番茄葉片的Pst.DC3000菌落數(shù)目比較大,而DDI3轉(zhuǎn)基因苗葉片菌落數(shù)目明顯少于野生型。通過(guò)顯著性差異分析,發(fā)現(xiàn)野生型菌落數(shù)是DDI3轉(zhuǎn)基因苗的2.8倍,具有高度顯著差異,如圖6所示。說(shuō)明DDI3轉(zhuǎn)基因番茄上調(diào)表達(dá)對(duì)Pst.DC3000具有很好的抗病性。

圖6 菌落數(shù)差異分析

3 結(jié)果與討論

本文利用農(nóng)桿菌侵染番茄愈傷組織獲得DDI3的轉(zhuǎn)基因番茄株系,觀察發(fā)現(xiàn)DDI3的轉(zhuǎn)基因番茄與野生型番茄無(wú)明顯的差異。但是通過(guò)種子萌發(fā)實(shí)驗(yàn)可以發(fā)現(xiàn)DDI3萌發(fā)速度較慢,相同條件下,生長(zhǎng)期內(nèi)轉(zhuǎn)基因種子萌發(fā)速率要慢于野生型AC種子,說(shuō)明DDI3基因可能對(duì)番茄種子萌發(fā)有一定影響。

同時(shí)對(duì)DDI3轉(zhuǎn)基因番茄進(jìn)行抗病實(shí)驗(yàn)。通過(guò)接種Pst.DC3000病菌驗(yàn)證并計(jì)算番茄葉片的菌落數(shù)的發(fā)病情況,發(fā)現(xiàn)都有較明顯的差異,從而確定DDI3轉(zhuǎn)基因番茄對(duì)Pst.DC3000具有很好的抵抗作用,其抗病明顯優(yōu)于野生型番茄,說(shuō)明過(guò)表達(dá)DDI3基因能提高番茄的抗病性。

目前本文只對(duì)DDI3轉(zhuǎn)基因番茄植株抗病性進(jìn)行研究,獲得比較理想的實(shí)驗(yàn)結(jié)果。但是種子萌發(fā)實(shí)驗(yàn)的現(xiàn)象，本文未能具體分析產(chǎn)生萌發(fā)延遲和苗型生長(zhǎng)較慢的原因。下一步將深入探究DDI3基因參與種子萌發(fā)機(jī)制,研究DDI3基因與種子萌發(fā)相關(guān)基因功能之間的聯(lián)系,確定產(chǎn)生現(xiàn)象的原因與機(jī)理;后期還將對(duì)DDI3基因的抗病機(jī)制進(jìn)行深入研究,并探究其抗病相關(guān)的上下游受體,闡述基因功能的作用機(jī)制及其與DDB1基因功能之間的關(guān)系,進(jìn)一步為DDB1基因功能研究提供新的探究方向。

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(責(zé)任編輯 閆杏麗)

Research on one tomato gene involved in disease resistance

XU Wei, MIAO Min, TANG Xiaofeng, LIU Yongsheng

(School of Food Science and Engineering, Hefei University of Technology, Hefei 230009, China)

The proteins encoded by the biggest type of disease-resistant genes(R) in plants contain coiled-coil(CC) and nucleotide-binding site(NBS) and leucine-rich repeat(LRR) domain structure. R genes are famous for its disease resistance. In this paper,DDI3 gene was screened out by means of yeast two-hybrid, which had interaction with functionalDDB1 gene and contained the CC-NBS-LRR structure. It was predicted to have disease resistance of R gene and involved in plant disease resistance. TheDDI3 overexpression vector was constructed and transferred into the wild type tomato plants through agrobacterium-mediated transformation， and the positive transgenic plants with high expression ofDDI3 were obtained. By the pathogen inoculation experiment, the apparent plant disease and statistical number of bacterial colonies were observed. It is found that the resistance of transgenic plants is obviously higher than that of wild type tomato.DDI3 gene functioning as a resistance is a very good method to improve the disease resistance of tomato, which is a new attempt in the improvement of the disease resistance of tomato by using gene engineering technology.DDI3 also interacts with tomatoDDB1 gene, providing a new direction to the research on the function ofDDB1 in plant disease resistance.

DDI3 gene; CC-NBS-LRR domain; transgenic tomato; disease resistance

2016-01-25；

2016-04-18

國(guó)家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(31171179)

許 偉(1989-),男,安徽蕪湖人,合肥工業(yè)大學(xué)碩士生; 劉永勝(1964-),男,重慶市人,博士,合肥工業(yè)大學(xué)教授,博士生導(dǎo)師.

10.3969/j.issn.1003-5060.2017.04.022

Q78

A

1003-5060(2017)04-0547-06