殼聚糖對俄羅斯鱘幼魚生長性能及免疫功能的影響

肖艷翼夏永濤劉騰飛胡利靜楊移斌胡 鯤楊先樂

(1. 上海海洋大學(xué)國家水生動物病原庫, 上海 201306; 2. 杭州千島湖鱘龍科技股份有限公司, 杭州 310000; 3. 中國水產(chǎn)科學(xué)研究院, 北京 100039; 4. 中國水產(chǎn)科學(xué)研究院長江水產(chǎn)研究所, 武漢 430223)

殼聚糖對俄羅斯鱘幼魚生長性能及免疫功能的影響

肖艷翼1夏永濤2,3劉騰飛1胡利靜1楊移斌4胡 鯤1楊先樂1

(1. 上海海洋大學(xué)國家水生動物病原庫, 上海 201306; 2. 杭州千島湖鱘龍科技股份有限公司, 杭州 310000; 3. 中國水產(chǎn)科學(xué)研究院, 北京 100039; 4. 中國水產(chǎn)科學(xué)研究院長江水產(chǎn)研究所, 武漢 430223)

在基礎(chǔ)飼料中分別添加濃度為0對照組)、1.25、2.5、5、7.5和10 g/kg的殼聚糖, 投喂12 g左右的俄羅斯鱘50d, 每組設(shè)3個重復(fù), 每個重復(fù)30尾, 研究不同濃度的殼聚糖對俄羅斯鱘(Acipenser gueldenstaedti)幼魚的生長性能及免疫力的影響。結(jié)果表明, 與對照組相比, 添加2.5和5 g/kg的殼聚糖可顯著提高俄羅斯鱘幼魚的增重率和特定生長率, 降低飼料系數(shù)(P＜0.05), 而當(dāng)添加量超過10 g/kg時會抑制其生長(P＜0.05); 1.25和2.5 g/kg組血清超氧化物歧化酶活性顯著高于對照組(P＜0.05), 其他試驗組則顯著低于對照組(P＜0.05); 2.5和5 g/kg組溶菌酶活性顯著高于對照組, 當(dāng)殼聚糖添加量超過7.5 g/kg時則會抑制血清溶菌酶活性(P＜0.05); 1.25和5 g/kg組酸性磷酸酶活性、堿性磷酸酶活性和補(bǔ)體C3含量都顯著高于對照組(P＜0.05); 各試驗組IgM含量不受殼聚糖的影響, 與對照組差異不顯著(P＞0.05)。在試驗條件下, 添加適量的殼聚糖能提高俄羅斯鱘幼魚的生長性能,增強(qiáng)其免疫能力, 以增重率、特定生長率及非特異性免疫為綜合評價指標(biāo), 殼聚糖添加量以2.5 g/kg為宜。

俄羅斯鱘; 殼聚糖; 生長; 免疫

俄羅斯鱘(Acipenser gueldenstaedti)隸屬于鱘形目、鱘科、鱘屬, 是軟骨硬鱗魚類, 因其營養(yǎng)價值與經(jīng)濟(jì)價值高, 抗病力較強(qiáng), 近年來在我國淡水養(yǎng)殖品種中日漸興起, 養(yǎng)殖規(guī)模也不斷擴(kuò)大。工廠集約化養(yǎng)殖鱘魚雖然產(chǎn)量高, 經(jīng)濟(jì)效益好, 但要待它性成熟, 獲其有“黑色黃金”之稱的魚子醬, 則養(yǎng)殖周期需很長, 期間一旦暴發(fā)疾病, 經(jīng)濟(jì)損失巨大。在水產(chǎn)養(yǎng)殖過程中, 養(yǎng)殖戶一般都選擇使用抗生素和化學(xué)藥物來應(yīng)對魚類發(fā)病, 但是過量使用化學(xué)藥劑會產(chǎn)生諸多負(fù)面影響, 比如機(jī)體抗病力減弱、產(chǎn)生耐藥性、水生環(huán)境的微生物種群被破壞、有毒物質(zhì)殘留而影響公共衛(wèi)生等。然而, 使用抗生素、化學(xué)藥物及接種疫苗等只對某種或某幾種疾病有效[1], 而免疫增強(qiáng)劑具有性能穩(wěn)定、作用廣泛、生態(tài)安全等特點, 可增強(qiáng)水產(chǎn)動物自身免疫力, 提高其抗感染、抗應(yīng)激的能力[2], 適宜作為飼料添加劑對水產(chǎn)動物病害進(jìn)行防治。水產(chǎn)上應(yīng)用的免疫增強(qiáng)劑主要有糖類、細(xì)菌衍生物、化學(xué)合成物、微量營養(yǎng)素等[3]。殼聚糖是幾丁質(zhì)經(jīng)脫乙酰作用得到的一種天然堿性多糖, 存在于蝦、蟹及昆蟲的外骨骼、真菌、藻類及植物的細(xì)胞壁中[4,5]。它是一種抗氧化劑[6], 無毒、可生物降解, 能抗菌防霉[7—9],兼具降脂之功效[10,11], 具有生物相容性的高分子聚合物。目前已有研究表明, 不論是口服或注射殼聚糖都能增強(qiáng)魚類及甲殼類的免疫力[12—15]。然而, 免疫增強(qiáng)劑一般有雙重作用, 添加量適宜時會增強(qiáng)機(jī)體的免疫力, 對其生長也有促進(jìn)作用, 添加過量就會產(chǎn)生副作用, 關(guān)于殼聚糖對鱘生長性能及免疫功能的影響研究較少。所以, 本試驗在俄羅斯鱘幼魚基礎(chǔ)飼料中添加不同濃度的殼聚糖, 研究其對俄羅斯鱘幼魚生長性能、飼料利用以及免疫功能等指標(biāo)的影響, 以期為俄羅斯鱘疾病的預(yù)防提供新途徑,也為殼聚糖在俄羅斯鱘飼料中的適宜添加量提供參考依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

試驗魚: 由杭州千島湖鱘龍科技股份有限公司提供; 殼聚糖: 購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司, 脫乙酰度94.7%; 飼料: 以寧波天邦股份有限公司生產(chǎn)的粉末飼料為基礎(chǔ)飼料(飼料配方公司不方便提供),將殼聚糖按不同添加量加入飼料中, 混勻并制粒。飼料主要營養(yǎng)成分見表 1。

表 1 基礎(chǔ)飼料的主要營養(yǎng)組成Tab. 1 Nutrient composition of basal diets

1.2 試驗設(shè)計與飼養(yǎng)管理

試驗用魚暫養(yǎng)2周后挑選體質(zhì)健壯, 規(guī)格基本一致的俄羅斯鱘540尾, 分成6組, 每組3個平行, 每個平行30尾, 試驗期間飼養(yǎng)于直徑2 m, 水深0.5 m的圓形玻璃鋼養(yǎng)殖缸中, 養(yǎng)殖用水引自烏溪江, 活水養(yǎng)殖, 水溫17—20℃, 溶解氧6—8 mg/L, pH 6.8—7.4, NH3-N 0.182—0.332 mg/L。各組日糧中添加殼聚糖的量為0(對照組)、1.25、2.5、5、7.5和10 g/kg, 添加殼聚糖的顆粒餌料放置陰涼干燥處備用。試驗期間, 每天投喂飼料3次(7:00, 12:00和17:00), 每次表觀飽食投喂, 每周刷洗試驗缸一次,試驗共進(jìn)行50d。

1.3 樣品的采集

在試驗結(jié)束后, 試驗魚饑餓24h, 稱量每組魚的終末體重, 每個平行組隨機(jī)抽取3尾試驗魚尾靜脈取血, 4℃冰箱靜置4h, 再于4℃條件下3000 r/min離心10min, 收集上層血清, -20℃冰箱保存, 供各項血清指標(biāo)的測定。

1.4 樣品的測定

血清指標(biāo)的測定 所有血清指標(biāo)均由南京建成生物工程研究所提供的試劑盒測定。

溶菌酶(Lysozyme, LZM)活力的測定, 采用自身對照法, 將配好的應(yīng)用菌液, 標(biāo)準(zhǔn)應(yīng)用液及待測樣本放入37℃水浴箱中。取2只1 cm光徑的比色皿(一只用于調(diào)透光度, 一只用于測定), 在可見光分光光度計上530 nm處, 用蒸餾水調(diào)透光度100%。按照待測樣本數(shù)(n)加上標(biāo)準(zhǔn)管與空白管, 取試管n+2只, 置于37℃水浴箱中, 往相應(yīng)編號的試管中加入0.2 mL待測樣本(標(biāo)準(zhǔn)管加0.2 mL標(biāo)準(zhǔn)應(yīng)用液),取2 mL應(yīng)用菌液加入試管, 立即混勻并計時, 然后倒入比色皿中在可見光分光光度計上530 nm處比濁, 20s讀透光度值T0, 2min 20s讀透光度值T2, 根據(jù)計算公式求出溶菌酶活力。

堿性磷酸酶(Alkaline phosphatase, AKP)活力的測定, 采用微量酶標(biāo)法, 取酶標(biāo)板標(biāo)記空白孔、標(biāo)準(zhǔn)孔、測定孔, 分別加入蒸餾水、0.1 mg/mL的酚標(biāo)準(zhǔn)應(yīng)用液、待測樣本5 μL, 各孔再依次加入緩沖液與基質(zhì)液50 μL, 充分混勻, 37℃水浴15min后再加顯色劑150 μL, 波長520 nm, 酶標(biāo)儀測定各孔吸光度OD值。定義: 100 mL血清在37℃與基質(zhì)作用15min產(chǎn)生1 mg酚為1個金氏單位。

酸性磷酸酶(Acid phosphatase, ACP)活力的測定, 采用微量酶標(biāo)法, 取酶標(biāo)板標(biāo)記空白孔、標(biāo)準(zhǔn)孔、測定孔, 分別加入蒸餾水、0.1 mg/mL的酚標(biāo)準(zhǔn)應(yīng)用液、待測樣本4 μL, 各孔再依次加入緩沖液與基質(zhì)液40 μL, 充分混勻, 37℃水浴30min后各孔再依次加堿液與顯色劑80 μL, 輕輕振搖孔板混勻,靜置10min, 波長520 nm, 酶標(biāo)儀測定各孔吸光度OD值。定義: 100 mL血清在37℃與基質(zhì)作用30min產(chǎn)生1 mg酚為1個金氏單位。

超氧化物歧化酶(Superoxide dismutase, SOD)活力采用WST法測定, 取96孔板標(biāo)記對照孔、對照空白孔、測定孔、測定空白孔。對照孔與對照空白孔均加蒸餾水20 μL, 再分別加酶工作液、酶稀釋液20 μL; 測定孔與測定空白孔均加待測樣本20 μL, 再各加酶工作液、酶稀釋液20 μL; 各孔均加底物應(yīng)用液200 μL, 混勻, 37℃孵育20min, 設(shè)定波長450 nm, 酶標(biāo)儀測定吸光度值。定義: 每毫升反應(yīng)液中SOD抑制率達(dá)50%時所對應(yīng)的酶量為一個SOD活力單位(U)。注意在正式檢測前, 挑取1—2例正常樣本, 稀釋成不同濃度進(jìn)行預(yù)實驗, 選取抑制率在40%—60%的這個濃度進(jìn)行正式檢測。

補(bǔ)體C3 (Complement C3)與免疫球蛋白IgM (ImmunoglobulinM, IgM)均采用ELISA法測定, 根據(jù)試劑盒所提供的說明書制備標(biāo)準(zhǔn)曲線, 計算各樣本含量。

生長指標(biāo)的測定根據(jù)試驗魚初始體重與終末體重, 測定其增重率(Weight gain rate, WGR)和特定生長率(Specific growth rate, SGR), 根據(jù)攝食量(Feed intake, FI)和增重量計算餌料系數(shù)(Feed coefficient, FC), 統(tǒng)計試驗魚的初、末尾數(shù)測其成活率,其公式表示為:

增重率(WGR, %)=(Wt-W0)/W0×100;

特定生長率(SGR, %/d)=(lnWt-lnW0)/50×100;

攝食量(FI, g/ind)=總干飼料攝入量/[(初始尾數(shù)+終末尾數(shù))/2]

飼料系數(shù)(FC)=Wf/(Wt-W0);

成活率(Survival rate, SR, %)=終尾數(shù)/初尾數(shù)× 100;

式中Wt代表魚終末均體重(g), W0代表魚初始均體重(g), 50為飼養(yǎng)天數(shù)(d), Wf代表每尾魚平均攝食飼料的質(zhì)量(g)。

1.5 統(tǒng)計學(xué)分析

試驗結(jié)果使用“平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差”表示, 采用SPASS19.0進(jìn)行單因素方差分析, Duncan進(jìn)行多重比較(P＜0.05即認(rèn)為差異顯著)。

2 結(jié)果

2.1 不同殼聚糖添加水平對俄羅斯鱘幼魚生長的影響

由表 2可知, 俄羅斯鱘幼魚的生長情況因殼聚糖的添加量不同而差異顯著, 添加量為2.5和5 g/kg的試驗組能顯著促進(jìn)生長(P＜0.05), 且2.5 g/kg組促生長趨勢更強(qiáng), 但當(dāng)殼聚糖添加量為10 g/kg時特定生長率顯著低于對照組, 而添加量為1.25和7.5 g/kg的試驗組與對照組差異不顯著(P＞0.05), 增重率的變化情況與特定生長率一致。與對照組相比, 2.5和5 g/kg組的飼料系數(shù)分別降低17.76%和11.21% (P＜0.05), 10 g/kg組飼料系數(shù)提高11.21%(P＞0.05), 說明2.5 g/kg殼聚糖添加量有利于降低飼料系數(shù); 各組的成活率差異不顯著(P＞0.05)。

2.2 不同殼聚糖添加水平對俄羅斯鱘幼魚血清LZM、ACP和AKP活力的影響

由表 3可知, 與對照組相比, 添加2.5和5 g/kg的殼聚糖能顯著提高俄羅斯鱘幼魚血清LZM的活力(P＜0.05), 且5 g/kg添加組含量最高, 而添加7.5和10 g/kg殼聚糖組血清LZM活力顯著低于對照組(P＜0.05); 各試驗組俄羅斯鱘幼魚血清ACP活力都顯著高于對照組(P＜0.05), 且2.5 g/kg組ACP活力達(dá)到最大值, 而隨著殼聚糖添加量的增加, 血清ACP活力逐漸降低后達(dá)到平臺; 與對照組相比, 添加1.25、2.5、5和7.5 g/kg的殼聚糖, 俄羅斯鱘幼魚血清AKP活力都顯著提高(P＜0.05), 且2.5 g/kg添加組達(dá)到最大值, 而添加10 g/kg的殼聚糖會降低AKP的活力, 但與對照組差異不顯著(P＞0.05)。

2.3 不同殼聚糖添加水平對俄羅斯鱘幼魚血清SOD活性、C3和IgM含量的影響

由表 4可知, 1.25和2.5 g/kg殼聚糖添加組SOD活力顯著高于對照組(P＜0.05), 1.25 g/kg組略高于2.5 g/kg組, 而其余水平添加組則顯著低于對照組(P＜0.05); 添加1.25、2.5和5 g/kg的殼聚糖能顯著提高血清補(bǔ)體C3的含量(P＜0.05), 7.5 g/kg殼聚糖添加組補(bǔ)體C3含量與對照組差異不顯著, 而補(bǔ)體C3含量最低組為10 g/kg添加組, 顯著低于對照組(P＜0.05); 但在飼料中添加不同水平殼聚糖對血清IgM含量無顯著影響(P＞0.05), 其含量維持在0.9052—0.9733 mg/mL。

3 討論

3.1 殼聚糖對俄羅斯鱘幼魚生長的影響

本試驗研究表明, 適量的殼聚糖能促進(jìn)俄羅斯鱘幼魚的生長, 降低飼料系數(shù), 在對軍曹魚[16](Rachycentron canadum)與南美白對蝦[17](Litopenaeus vannamei)的研究中也得到了相同的結(jié)果。但是, 過量添加殼聚糖會抑制俄羅斯鱘幼魚的生長, 在本試驗中, 當(dāng)殼聚糖添加量為2.5 g/kg時能顯著促進(jìn)生長,而當(dāng)添加量超過7.5 g/kg時, 對俄羅斯鱘的生長沒有促進(jìn)作用反而抑制其生長。Shiau等[18]研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)殼聚糖的添加量遞增時(2%、5%和10%), 羅非魚(Oreochromis niloticus)的增重率遞減, 10%的殼聚糖會抑制羅非魚的生長; 常青等[19]研究證明0.5%和1%的殼聚糖能顯著提高花鱸(Lateolabrax japonicus)的生長, 而2%的殼聚糖卻沒有促進(jìn)作用; 華雪銘等[20]也發(fā)現(xiàn)殼聚糖的最適添加量為0.2%, 其添加水平的提高并不利于暗紋東方鲀(Fugu obscurus)的生長。適量的殼聚糖添加在飼料中能促進(jìn)俄羅斯鱘幼魚的生長, 其原因可能有二: 一是殼聚糖能使腸道消化酶的活性提高, 降低飼料系數(shù), 提高了消化率[21]; 二是殼聚糖增加了前腸、中腸黏膜褶皺高度和中腸肌層厚度[22], 進(jìn)而增強(qiáng)了對營養(yǎng)物質(zhì)的消化吸收能力, 促進(jìn)了魚的生長。而當(dāng)殼聚糖添加過量時會抑制俄羅斯鱘的生長, 其原因可能是由于殼聚糖具有較強(qiáng)的吸附脂蛋白和離子的能力[23], 添加過量時吸附了飼料中部分營養(yǎng)物質(zhì), 從而抑制了生長。

表 2 不同殼聚糖添加水平對俄羅斯鱘幼魚生長的影響Tab. 2 Effect of different chitosan levels on growth performance in juvenile Russian sturgeon

表 3 不同殼聚糖添加水平對俄羅斯鱘幼魚血清LZM、ACP和AKP活力的影響Tab. 3 Effect of different chitosan levels on activity of LZM, ACP and AKP of serum in juvenile Russian sturgeon

表 4 不同殼聚糖添加水平對俄羅斯鱘幼魚血清SOD活性、C3和IgM含量的影響Tab. 4 Effect of different chitosan levels on activity of SOD and contains of C3 and IgM of serum in juvenile Russian sturgeon

3.2 殼聚糖對俄羅斯鱘幼魚血清LZM活力的影響

溶菌酶是一種堿性蛋白酶, 廣泛存在于魚類皮膚黏液、血清、組織器官及吞噬細(xì)胞中, 在魚類的非特異性免疫防御系統(tǒng)中占重要地位。在本試驗中添加2.5和5 g/kg的殼聚糖能顯著提高血清溶菌酶活力, 但隨著殼聚糖添加量的增加, 溶菌酶活力逐漸降低, 顯著低于對照組, 這與孫立威等對吉富羅非魚[24]、金思等[25]對香魚的研究結(jié)果一致。究其原因可能為殼聚糖的結(jié)構(gòu)與真菌或革蘭氏陰性菌細(xì)胞壁的脂多糖(Lipopolysaccharides, LPS)物質(zhì)相類似, 當(dāng)俄羅斯鱘受到殼聚糖刺激后, 機(jī)體發(fā)生異物入侵反應(yīng), 激活吞噬細(xì)胞的吞噬功能與溶菌酶活性, 啟動免疫系統(tǒng), 增強(qiáng)俄羅斯鱘的免疫能力。

3.3 殼聚糖對俄羅斯鱘幼魚血清AKP、ACP活力的影響

堿性磷酸酶(AKP)與酸性磷酸酶(ACP)是動物機(jī)體內(nèi)參與免疫防御的重要水解酶[26], 其中AKP是一種磷酸單酯酶, 直接參與動物機(jī)體磷的代謝, 在RNA、DNA、蛋白質(zhì)、脂質(zhì)等代謝中有非常重要的生理功能[27]; 而ACP是溶酶體酶的標(biāo)志酶, 其活力的高低直接反映了溶酶體酶防御和消化功能的強(qiáng)弱[28]。在本試驗條件下, 飼料中添加殼聚糖能使AKP活力顯著提高, 僅10 g/kg添加組與對照組差異不顯著; 而ACP活力僅1.25與2.5 g/kg兩組顯著高于對照組, 其余添加組都顯著低于對照組, 且AKP活力與ACP活力都在當(dāng)殼聚糖水平添加至2.5 g/kg時達(dá)到最大值, 這說明飼料中添加殼聚糖能增加AKP與ACP的活力, 二者活力的提高有助于機(jī)體的代謝,從而增強(qiáng)俄羅斯鱘的體質(zhì), 進(jìn)而間接增強(qiáng)其非特異性免疫功能。

3.4 殼聚糖對俄羅斯鱘幼魚血清補(bǔ)體C3含量的影響

補(bǔ)體是吞噬細(xì)胞與抗體間連接的中介, 在非特異性免疫機(jī)制中發(fā)揮重要作用, C3在補(bǔ)體系統(tǒng)中占關(guān)鍵地位, 硬骨魚類的補(bǔ)體因子可通過多糖激活,激活后的補(bǔ)體C3具有殺菌、溶菌、殺病毒活性, 能滅活細(xì)菌胞外毒素。在本試驗中一定量的殼聚糖能顯著提高俄羅斯鱘幼魚血清中補(bǔ)體C3的含量, 當(dāng)殼聚糖添加量為2.5 g/kg時, 其含量達(dá)到最高值, 但當(dāng)添加量超過7.5 g/kg時, 補(bǔ)體C3含量與對照組相當(dāng), 或顯著低于對照組, 汪開毓等[29]也得到了相似結(jié)果, 當(dāng)無花果多糖的添加量上升至0.8%時, 鯽(Carassius auratus)血清中補(bǔ)體C3含量受到抑制。這說明殼聚糖作為免疫多糖激活了俄羅斯鱘體內(nèi)補(bǔ)體C3的活性, 提高了俄羅斯鱘的非特異性免疫功能, 過高的殼聚糖濃度反而影響補(bǔ)體C3的表達(dá), 對俄羅斯鱘的免疫能力沒有增強(qiáng)作用。

3.5 殼聚糖對俄羅斯鱘幼魚血清SOD活力的影響

3.6 殼聚糖對俄羅斯鱘幼魚血清抗體IgM水平的影響

在特異性免疫應(yīng)答系統(tǒng)中, 抗體是發(fā)揮重要作用的體液因子, 是用來評價水生動物特異性免疫能力的主要指標(biāo)。鱘胸腺和脾發(fā)育較全, 但目前發(fā)現(xiàn)只能產(chǎn)生IgM類抗體[31], 關(guān)于殼聚糖能促進(jìn)水生動物抗體的生成已有報道。Siwicki等[32]研究表明, 在虹鱒(Oncorhynchus mykiss)日糧中添加0.5%的殼聚糖能顯著提高血清總蛋白水平和總抗體水平; 陸清兒等[33]在三角魴(Megalobrama terminalis)日糧添加0.1%的殼聚糖復(fù)合物, 血清中IgA、IgG水平都顯著提高; 華雪銘等[34]給暗紋東方鲀投飼添加殼聚糖的飼料后, 體外用LPS刺激頭腎B細(xì)胞, IgM的產(chǎn)生量顯著升高, 表明殼聚糖能促進(jìn)機(jī)體內(nèi)抗體的生成。而本試驗在俄羅斯鱘幼魚日糧中添加不同濃度的殼聚糖, 結(jié)果表明, 日糧中添加殼聚糖對俄羅斯鱘血幼魚血清IgM水平?jīng)]有顯著影響, 其原因可能是殼聚糖對不同魚品種抗體的影響不同, 或是在非攻毒條件下, 不能體現(xiàn)殼聚糖對俄羅斯鱘幼魚血清中自然抗體IgM水平的影響, 其具體原因有待進(jìn)一步研究分析。

4 結(jié)論

在本試驗條件下, 殼聚糖能顯著促進(jìn)俄羅斯鱘幼魚生長, 提高機(jī)體免疫功力, 建議飼料中適宜添加量為2.5 g/kg, 同時殼聚糖來源廣泛, 使用簡單易行, 因此將殼聚糖作為俄羅斯鱘的免疫增強(qiáng)劑具有很好的實用價值。

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EFFECTS OF CHITOSAN ON GROWTH PERFORMANCE AND IMMUNITY OF JUVENILE RUSSIAN STURGEON (ACIPENSER GUELDENSTAEDTI)

XIAO Yan-Yi1, XIA Yong-Tao2,3, LIU Teng-Fei1, HU Li-Jing1, YANG Yi-Bin4, HU Kun1and YANG Xian-Le1
(1. Shanghai Ocean University, National Pathogeon Collection Center for Aquatic Animal, Shanghai 201306, China; 2. Hangzhou Thousands Island Sturgeon Dragon Technology Co., LTD, Hangzhou 310000, China; 3. Chinese Academy of Fishery Sciences, Beijing 100039, China; 4. Yangtze River Fisheries Research Institute, Chinese Academy of Fishery Sciences, Wuhan 430223, China)

A 50-day feeding trial was conducted to investigate the effects of dietary chitosan supplement on growth performance and immunity of juvenile Russian sturgeon (initial body weight of 12 g). In total, 540 fish were assigned to six groups (30 fish per replicate, triplicate experiments). The fish were fed basal experimental diets supplemented with different levels of chitosan: 0 (control group), 1.25, 2.5, 5, 7.5 and 10 g/kg respectively. The results showed that the weight growth rate (WGR) and specific growth rate (SGR) in 2.5 and 5 g/kg groups were significantly higher than that in control group (P＜0.05), whereas feed coefficient (FC) decreased significantly (P＜0.05), but the growth in 10 g/kg group was inhibited. The superoxide dismutase (SOD) activity in 1.25 and 2.5 g/kg were significantly higher than that in control group (P＜0.05), while the SOD activity in the other three groups were significantly lower than that in control group (P＜0.05). Lysozyme (LZM) activity in serum of 2.5 and 5 g/kg groups increased significantly (P＜0.05), while 7.5 and 10 g/kg groups were significantly lower than that in control group (P＜0.05). The alkanlin phoshpatase (AKP) activity, acid phosphatase (ACP) activity and content of complement C3 in 1.25, 2.5, 5 g/kg groups were significantly higher than those in control group (P＜0.05). No significant difference was observed on serum IgM in all supplementation group (P＞0.05). These results indicated that dietary chitosan supplementation can improve the growth performance and immunity in juvenile Russian sturgeon. Based on the WGR, SGR and non-specific immunity, the chitosan supplement in diets was suggested to be 2.5 g/kg for juvenile Russian sturgeon.

Russian sturgeon (Acipenser gueldenstaedti); Chitosan; Growth; Immunity

S965.2

A

1000-3207(2017)01-0114-07

10.7541/2017.15

2016-01-05;

2016-07-05

863項目魚蝦用疫苗與藥物研究開發(fā)(2011AA10A216); 上海高校知識服務(wù)平臺建設(shè)項目(ZF1206); 國家級星火計劃項目(2014GA700003); 藥物代謝行業(yè)專項(201203085)資助 [Supported by the Vaccine and Drug Research for Fish & Shrimp (863 Program) (2011AA10A216); Knowledge Service Platform Project in Shanghai Universities (ZF1206); National Spark Plan Project (2014GA700003); Industry Specific Drug Metabolism (201203085)]

肖艷翼(1989—), 女, 湖南婁底人; 碩士研究生; 主要從事水產(chǎn)動物病害研究。E-mail: yyx130826@163.com

楊先樂(1948—), 男, 博士生導(dǎo)師; 主要從事水產(chǎn)動物疾病、水產(chǎn)動物免疫、魚類藥理學(xué)與漁藥的檢測與監(jiān)控等研究。E-mail: xlyang@shou.edu.cn