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    產(chǎn)β-葡萄糖苷酶芽孢桿菌降解豆粕的發(fā)酵條件優(yōu)化及抗?fàn)I養(yǎng)因子測定

    2017-01-08 08:42:24姜婷婷王奕丁朱寶成
    飼料工業(yè) 2017年14期
    關(guān)鍵詞:豆粕糖苷酶氮源

    ■姜婷婷 王奕丁 王 全* 朱寶成

    (1.河北農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,河北保定071001;2.新疆師范大學(xué)地理科學(xué)與旅游學(xué)院,新疆烏魯木齊830045)

    豆粕是畜牧養(yǎng)殖業(yè)中使用最為廣泛的一種優(yōu)質(zhì)植物性蛋白源。豆粕的營養(yǎng)成分主要有蛋白質(zhì)(40%~44%)、脂肪(1%~2%)、碳水化合物(10%~15%);另外,豆粕中含有多種礦物質(zhì)、維生素和必需氨基酸,營養(yǎng)成分比較齊全且種類均衡;此外,豆粕中還含有異黃酮、磷脂等生物活性物質(zhì),是飼料業(yè)中應(yīng)用最為廣泛的植物性蛋白原料。然而,和眾多植物型蛋白源的性質(zhì)一樣,豆粕中也存在多種抗?fàn)I養(yǎng)因子(如大豆球蛋白、β-聚球蛋白、胰蛋白酶抑制因子、糜蛋白酶抑制因子、熱穩(wěn)定大豆寡糖等)。他們的存在一方面使得豆粕的消化率和動物的吸收率下降;另一方面,對動物體內(nèi)的某些器官造成了損傷。

    豆粕經(jīng)過微生物發(fā)酵,產(chǎn)品中含有大量的有益微生物,而發(fā)酵過程產(chǎn)生的代謝產(chǎn)物以及對發(fā)酵底物的降解作用,使得發(fā)酵豆粕的成分非常復(fù)雜,改善了大豆蛋白的品質(zhì)。一般情況下,采用生物活性較強(qiáng)的有益菌進(jìn)行豆粕的發(fā)酵,因為這些有益菌在代謝過程中產(chǎn)生的多種活性物質(zhì)可改善豆粕的飼用特性,進(jìn)而提高動物對飼料的利用率。

    β-葡萄糖苷酶(β-Glucosidase),是纖維素分解酶系中的重要組成成分之一。研究表明,微生物發(fā)酵法是去除豆粕中抗?fàn)I養(yǎng)因子(如大豆球蛋白、β-聚球蛋白、胰蛋白酶抑制因子、糜蛋白酶抑制因子、熱穩(wěn)定大豆寡糖等)的有效方法之一,而且發(fā)酵產(chǎn)品中含有蛋白酶、益生菌、有機(jī)酸及小分子肽等未知生長因子。本試驗通過單因素試驗選定了產(chǎn)β-葡萄糖苷酶芽孢桿菌菌株的最適培養(yǎng)基,從而用產(chǎn)β-葡萄糖苷酶芽孢桿菌菌株發(fā)酵液發(fā)酵豆粕,對豆粕發(fā)酵產(chǎn)物的多項指標(biāo)進(jìn)行了對比,以期為更好地開發(fā)利用豆粕這種優(yōu)質(zhì)植物蛋白提供參考依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 菌株

    具有較高產(chǎn)β-葡萄糖苷酶活性的菌株Z-1作為目的菌株,進(jìn)行后續(xù)研究。

    1.2 培養(yǎng)基及配制

    1.2.1 斜面培養(yǎng)基(PDA培養(yǎng)基)

    稱量去皮馬鈴薯200 g,將土豆切成小塊,放入鍋中,加水1.00 L,煮沸30 min。用紗布濾去土豆殘渣。將土豆濾液放回鍋中,加入瓊脂20.00 g,加熱溶化,加入葡萄糖20.00 g。葡萄糖溶解后,加入適量的水以補(bǔ)充加熱過程中損失的水分,定容至1.00 L(115℃蒸氣滅菌20 min)。

    1.2.2 種子培養(yǎng)基

    稱取牛肉膏3.00 g、蛋白胨10.00 g、氯化鈉5.00 g,加入蒸餾水定容至1.00 L,調(diào)節(jié)pH值至7.2~7.4(115℃蒸氣滅菌20 min)。

    1.2.3 發(fā)酵培養(yǎng)基

    根據(jù)試驗需要配制培養(yǎng)基或在基礎(chǔ)培養(yǎng)基中添加C源、N源或無機(jī)鹽配制培養(yǎng)基。

    1.3 試驗方法

    1.3.1 產(chǎn)β-葡萄糖苷酶菌株斜面的制作

    將PDA培養(yǎng)基融化分裝試管,在實驗臺上放1支長0.5~1 m左右的木條,厚度為1 cm左右。將試管頭部枕在木條上,使管內(nèi)培養(yǎng)基自然傾斜,凝固后即成斜面培養(yǎng)基。將產(chǎn)β-葡萄糖苷酶菌株接種到斜面上,37℃電熱恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)48 h。

    1.3.2 種子培養(yǎng)

    ① 將配制的種子培養(yǎng)基,裝入250 ml三角瓶中。濕熱滅菌,121℃、20 min。

    ②取適量無菌水(5 ml)倒入菌斜面并用接種針刮取菌種接種于裝有種子培養(yǎng)基的三角瓶中,振蕩均勻制成菌懸液。200 r/min、36~37℃,搖床培養(yǎng)14 h后使用。

    1.3.3 發(fā)酵培養(yǎng)

    ①配制發(fā)酵培養(yǎng)基。根據(jù)試驗需要配制培養(yǎng)基,單因素改變C源、N源、無機(jī)鹽等條件。

    ②將配制好的發(fā)酵培養(yǎng)基裝入250 ml三角瓶中,裝量為50 ml,調(diào)節(jié)pH值至7.2,濕熱滅菌,121℃、20 min。

    ③用滅菌的移液管將培養(yǎng)好的液體菌種按6%的接種量接種于裝有發(fā)酵培養(yǎng)基的三角瓶中。振蕩均勻制成菌懸液。在200 r/min、30℃條件下,搖床培養(yǎng)48 h。

    1.3.4 最適碳源的測定

    配制7種不同碳源的發(fā)酵液:分別以1.0%的可溶性淀粉、麥芽糖、蔗糖、乳糖、葡萄糖、糊精、玉米粉作為發(fā)酵液的不同碳源;1%的蛋白胨作為氮源;0.05%MgSO4·7H2O,0.02%CaCl2作為無機(jī)鹽;0.4%NaH2PO4·2H2O,0.2%Na2HPO4·2H2O。

    1.3.5 最適氮源的測定

    配制7種不同氮源的發(fā)酵液:分別以1.0%的尿素、黃豆餅粉、大豆蛋白胨、蛋白胨、酪蛋白胨、酵母浸粉、硫酸銨作為發(fā)酵液的不同氮源,碳源為上述試驗測出的最適碳源,含量為1.0%;0.05%MgSO4·7H2O和0.02%CaCl2作為無機(jī)鹽;0.4%NaH2PO4·2H2O,0.2%Na2HPO4·2H2O。

    1.3.6 最適無機(jī)鹽的測定

    配制6種不同無機(jī)鹽的發(fā)酵液:分別以0.05%ZnSO4·7H2O、FeSO4·7H2O、NaCl、MgSO4·7H2O、CuSO4·5H2O、CaCl2作為發(fā)酵液的不同無機(jī)鹽,使用前兩步測定出的最適碳源和最適氮源,且含量均為1.0%。

    1.3.7 正交試驗Ⅰ

    配制16種不同濃度的發(fā)酵液:使用上述試驗所測定出的最適碳源、氮源、無機(jī)鹽配制不同濃度的發(fā)酵液,進(jìn)行發(fā)酵培養(yǎng)(具體配方如表1所示)。

    表1 正交試驗設(shè)計Ⅰ(%)

    1.3.8 正交試驗Ⅱ

    配制9種相同的發(fā)酵液,以最適碳源、氮源、無機(jī)鹽,按照正交試驗Ⅰ所得結(jié)果配制培養(yǎng)基,滅菌前用pH計調(diào)整起始pH值分別為6.0、7.0、8.0,然后接種不同量的種子液,接種量分別為3%、6%、9%,最后進(jìn)行不同的搖床培養(yǎng)時間測定,培養(yǎng)時間分別為48、72、96 h(具體配方如表2所示)。

    表2 正交試驗設(shè)計Ⅱ

    1.3.9 酶活性測定

    ①水楊苷檸檬酸緩沖液:取檸檬酸2.10 g,溶解,定容至100 ml;稱取檸檬酸鈉1.47 g,定容至50 ml,取檸檬酸溶液57 ml,檸檬酸鈉溶液43 ml,混溶。再向混合溶液中加入0.50 g水楊苷,混勻,得到水楊苷檸檬酸緩沖液。

    ② DNS法測定酶活力(5.00 ml體系):在EP管加入1.50 ml 0.500%水楊苷檸檬酸緩沖液(pH值為4.5),并向另一管中加入1.50 ml的DNS鈍化酶的活性作為空白對照。各管同時在50℃水浴中預(yù)熱5~10 min,再加入0.50 ml酶液(粗酶液),50℃水浴保溫30 min。取出各管(除空白外)加入1.50 ml DNS以終止酶反應(yīng),充分搖勻后沸水浴5 min,取出后定容至5.00 ml,充分混勻,在OD540波長下測吸光光度值。參照所測得葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線:y=3.384 8x+0.082 2(R2=0.994 4)。酶活定義:一定條件下,每分鐘每毫升酶液由底物產(chǎn)生1.00 μmol葡萄糖所需要的酶量定義為一個酶活單位(IU),用U/ml表示。

    式中:A——樣品的吸光度對應(yīng)的葡萄糖的數(shù)值;

    V——反應(yīng)溶液的總體積(ml);

    n——粗酶液的稀釋倍數(shù);

    t——反應(yīng)時間(min);

    m——酶體積(ml)。

    1.3.10 豆粕和發(fā)酵豆粕的感官指標(biāo)

    ① 活菌計數(shù):將發(fā)酵液進(jìn)行10-5、10-6、10-7梯度稀釋,涂平板,37℃恒溫培養(yǎng)48 h,計數(shù)。

    ②選擇顏色正常,質(zhì)量較好的豆粕,用上述正交試驗中最優(yōu)的培養(yǎng)基進(jìn)行種子發(fā)酵,將10 ml發(fā)酵液接入到豆粕中發(fā)酵豆粕,進(jìn)行發(fā)酵處理。將發(fā)酵好的豆粕作為試驗材料,進(jìn)行營養(yǎng)成分分析。

    1.3.11 豆粕發(fā)酵前后產(chǎn)物分析

    抗?fàn)I養(yǎng)因子通過尿素酶活性進(jìn)行考察。

    ①試樣的制備。用粉碎機(jī)將10 g試樣粉碎,使之全部通過樣品篩(孔徑100 μm)。

    ② 試劑的制備。0.1 mol/l鹽酸:取0.90 ml濃鹽酸稀釋到1 000 ml。棉籽糖標(biāo)準(zhǔn)溶液:取0.04 g棉籽糖用水溶解并定容至4.00 ml。

    ③測定步驟。將取約0.20 g已粉碎的試樣,精確至0.10 mg,轉(zhuǎn)入試管中,移入10.00 ml尿素緩沖液,立即蓋好試管并劇烈搖動,馬上至于(50±0.5)℃恒溫水浴中,準(zhǔn)確計時保持30 min,即刻移入10.00 ml HCl溶液迅速冷卻至20℃,將試管內(nèi)容物全部轉(zhuǎn)入燒杯中,用5.00 ml水沖洗試管兩次,方可用NaOH標(biāo)準(zhǔn)溶液滴定至pH值4.7。

    另取試管作空白試驗,移入10.00 ml尿素緩沖液,10.00 ml HCl溶液,稱取與上述試樣量相當(dāng)?shù)脑嚇?,精確至0.10 mg,迅速加入試管中,其余操作步驟同上。

    ④計算結(jié)果

    以每分鐘每克大豆制品釋放氨的毫克量表示的尿素酶活力(U)。

    式中:C——NaOH標(biāo)液的摩爾濃度(mol/l);

    V0——空白NaOH的體積(L);

    V——試樣消耗NaOH的體積(L);

    m——試樣質(zhì)量(g)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 最適碳源測定

    不同碳源對產(chǎn)β-葡萄糖苷酶芽孢桿菌菌株的生長具有一定影響,如表3所示。

    表3 不同碳源對產(chǎn)β-葡萄糖苷酶芽孢桿菌生長的影響

    由表3可以看出:發(fā)酵液中的碳源為乳糖和玉米粉時培養(yǎng)效果較好,尤以糊精最好??赡苁怯捎谠摼鷮Σ煌荚吹睦们闆r不同。考慮到成本問題,還有酶活力大小的問題,故最終確定以糊精作為最佳碳源。

    2.2 最適氮源測定

    不同氮源對產(chǎn)β-葡萄糖苷酶芽孢桿菌菌株的生長具有一定影響,如表4所示。

    由表4可以看出:不同的氮源對產(chǎn)β-葡萄糖苷酶芽孢桿菌影響較大,不同氮源對酶活影響差異較大。其中,當(dāng)發(fā)酵液中氮源為尿素和硫酸銨時培養(yǎng)效果較好,氮源為蛋白胨時效果最好,而且比其他氮源培養(yǎng)出的酶活明顯高出很多,故選擇蛋白胨作為最佳氮源。

    表4 不同氮源對產(chǎn)β-葡萄糖苷酶芽孢桿菌生長的影響

    2.3 最適無機(jī)鹽測定

    不同無機(jī)鹽對產(chǎn)β-葡萄糖苷酶芽孢桿菌菌株的生長具有一定影響,如表5所示。

    表5 不同無機(jī)鹽對產(chǎn)β-葡萄糖苷酶芽孢桿菌生長的影響

    從表5中數(shù)據(jù)我們可以看出,無機(jī)鹽為CuSO4·5H2O和FeSO4·7H2O時酶活力較大。說明Cu2+和Fe2+對該菌生長發(fā)育更為重要,推測由于菌株產(chǎn)生的物質(zhì)為蛋白類物質(zhì),Cu2+和Fe2+在該類蛋白質(zhì)發(fā)揮酶活性作用時充當(dāng)輔酶,起到了一定的激活作用。

    2.4 培養(yǎng)基優(yōu)化結(jié)果

    不同濃度組合的培養(yǎng)基對產(chǎn)β-葡萄糖苷酶芽孢桿菌菌株的生長具有一定影響,如表6所示。

    表6 不同濃度組合的培養(yǎng)基對產(chǎn)β-葡萄糖苷酶芽孢桿菌的生長的影響

    由表6可以看出:最佳搭配為糊精5.0%、蛋白胨1.0%、Cu2+0.1%、Fe2+0.01%。

    2.5 培養(yǎng)條件優(yōu)化結(jié)果

    不同發(fā)酵條件組合的培養(yǎng)基對產(chǎn)β-葡萄糖苷酶芽孢桿菌菌株的生長具有一定影響,測定結(jié)果如表7所示。

    表7 不同發(fā)酵條件組合培養(yǎng)基對產(chǎn)β-葡萄糖苷酶芽孢桿菌生長的影響

    由表7可以看出:最佳搭配為培養(yǎng)時間為72 h、接種量3%、pH值為7.0。

    2.6 發(fā)酵培養(yǎng)

    用優(yōu)化好的發(fā)酵條件即糊精5.0%、蛋白胨1.0%、Cu2+0.1%、Fe2+0.01%,接種量為3%、pH值為7.0的情況下培養(yǎng)72 h,所得酶活力為0.721 1 U/ml,比優(yōu)化前(0.532 1 U/ml)提高了35.5%。

    2.7 發(fā)酵豆粕感官指標(biāo)

    用優(yōu)化好的培養(yǎng)基和發(fā)酵條件對豆粕進(jìn)行發(fā)酵,從色澤上來看,未發(fā)酵的豆粕呈黃色,發(fā)酵的豆粕呈深黃褐色;從氣味來看,未發(fā)酵的豆粕有大豆香味,發(fā)酵豆粕帶有濃芳香的酸味。

    2.8 抗?fàn)I養(yǎng)因子

    用優(yōu)化好的培養(yǎng)基和發(fā)酵條件對豆粕進(jìn)行發(fā)酵,測定發(fā)酵前后豆粕中抗?fàn)I養(yǎng)因子即尿素酶的酶活力,結(jié)果如表8所示。

    表8 發(fā)酵豆粕前后的尿素酶酶活力[mg/(g·min)]

    由表8可以看出,經(jīng)過菌株Z-1發(fā)酵后的豆粕,尿素酶酶活力下降了61.6%,豆粕中的抗?fàn)I養(yǎng)因子是通過尿素酶的酶活力來考察的,因此發(fā)酵后的豆粕抗?fàn)I養(yǎng)因子明顯下降。

    3 結(jié)論

    本試驗得到產(chǎn)β-葡萄糖苷酶較高活性的菌株Z-1的最佳發(fā)酵條件,產(chǎn)酶活性提高了35.5%。用得到的最優(yōu)發(fā)酵條件對豆粕進(jìn)行了發(fā)酵,使得豆粕中的抗?fàn)I養(yǎng)因子減少了61.6%。研究為該菌早日進(jìn)入工業(yè)生產(chǎn)奠定了一定的理論基礎(chǔ),也為進(jìn)一步探索該菌的工業(yè)發(fā)酵條件提供了技術(shù)支持。

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