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    大蔥AfCER1基因的克隆及表達(dá)分析

    2017-01-05 08:32:14裴雁曦王永勤
    山西農(nóng)業(yè)科學(xué) 2016年5期
    關(guān)鍵詞:蠟質(zhì)突變型表皮

    奧 娜,趙 泓,裴雁曦,王永勤

    (1.山西大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,山西太原030006;2.北京市農(nóng)林科學(xué)院蔬菜研究中心,農(nóng)業(yè)部華北地區(qū)園藝作物生物學(xué)與種質(zhì)創(chuàng)制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,蔬菜種質(zhì)改良北京市重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京100097)

    大蔥AfCER1基因的克隆及表達(dá)分析

    奧 娜1,2,趙 泓2,裴雁曦1,王永勤2

    (1.山西大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,山西太原030006;2.北京市農(nóng)林科學(xué)院蔬菜研究中心,農(nóng)業(yè)部華北地區(qū)園藝作物生物學(xué)與種質(zhì)創(chuàng)制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,蔬菜種質(zhì)改良北京市重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京100097)

    基于大蔥RNA-seq轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫(kù)中蠟質(zhì)相關(guān)基因AfCER1的序列設(shè)計(jì)引物,利用RT-PCR(Reverse transcription-polymerase chain reaction)和RACE(Rapid amplification of cDNA ends)技術(shù)獲得AfCER1(Allium fistulisum CER1)的全長(zhǎng)cDNA序列,并通過(guò)生物信息學(xué)手段分析基因的序列;利用RT-PCR和Real-time PCR分析AfCER1基因在大蔥野生型和突變型植株中的空間表達(dá)模式。結(jié)果表明,AfCER1基因全長(zhǎng)為2 144 bp,包含一個(gè)1 857 bp完整的開(kāi)放閱讀框(ORF),編碼618個(gè)氨基酸。蛋白序列比對(duì)分析表明,AfCER1與其他物種的CER1具有相似的結(jié)構(gòu)域:脂肪酸羥化酶結(jié)構(gòu)域和WAX2-C結(jié)構(gòu)域。由RT-PCR的結(jié)果可知,AfCER1基因在大蔥的根、葉鞘、葉片等部位均有表達(dá),且在野生型和突變型植株中的表達(dá)量有差異。Real-time PCR分析表明,在大蔥的根和葉鞘及剛見(jiàn)光的葉片中,AfCER1在突變型植株中的表達(dá)量相對(duì)野生型少;而在見(jiàn)光較多的葉片部位,AfCER1在突變型植株中的表達(dá)量卻比野生型多。研究可為大蔥蠟質(zhì)合成的分子機(jī)制提供理論基礎(chǔ)。

    大蔥;蠟質(zhì);AfCER1;基因克?。槐磉_(dá)分析

    表皮蠟質(zhì)是大多數(shù)陸地植物角質(zhì)層的重要組成部分,覆蓋于陸地植物的表皮,可以減緩陸地植物對(duì)生物和非生物的脅迫,如防止干旱、病蟲(chóng)害,病原體和紫外輻射對(duì)植物的侵害[1-2],是植物的保護(hù)屏障。受遺傳多樣性和后天發(fā)育的影響,不同植物物種、器官和組織中蠟質(zhì)的成分和含量不同[3-5]。如擬南芥[6-8]、水稻[9-10]和番茄[11-12]的突變型與野生型植株相比蠟質(zhì)發(fā)生改變,表現(xiàn)為植物地上部分的表面蠟質(zhì)晶體稀少,對(duì)干旱的敏感性增強(qiáng)。另外,角質(zhì)層蠟質(zhì)減少也與器官融合和繁殖率下降相關(guān)[6,13-14]。

    蠟質(zhì)的各種脂類組分由飽和的超長(zhǎng)鏈脂肪酸及其衍生物組成。C16和C18脂肪酸在質(zhì)體中合成后輸出到內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中,經(jīng)過(guò)脂肪酸延伸酶復(fù)合體催化生成C20~C34的超長(zhǎng)鏈脂肪酸(VLCFAs)[15-16]。在擬南芥中,莖的表皮蠟由烷烴、醛、脂肪酸、伯醇、蠟酯、仲醇類和酮類組成,其中,80%~90%是烷烴、仲醇和酮[17-18]。蠟質(zhì)的主要成分由2個(gè)途徑合成:酰基還原途徑合成伯醇和烷基酯,脫羰基途徑合成醛類、烷烴、酮和仲醇[18]。在擬南芥cer1-1突變體中烷烴、仲醇、酮含量下降,而醛的含量增加[19-21],推測(cè)CER1基因編碼的是一種醛脫羰酶[19-20]。最近研究表明,CER1與CER3和細(xì)胞色素b5亞型(CYTB5s)相互作用[22]。此外,在雙子葉和單子葉物種中,CER1蛋白結(jié)構(gòu)具有保守性,且富含組氨酸的基序,表明生物體中的CER1同源蛋白擁有相似的功能[19]。

    表皮蠟質(zhì)的形成機(jī)制和調(diào)控已成為研究熱點(diǎn)。大蔥(Allium fistulosum)是我國(guó)傳統(tǒng)的蔬菜和調(diào)味品之一,其葉片表皮覆蓋有明顯的蠟質(zhì),是研究蠟質(zhì)合成機(jī)制的最佳材料,但迄今仍未見(jiàn)大蔥蠟質(zhì)合成的相關(guān)基因及蠟質(zhì)形成分子機(jī)制的研究報(bào)道。

    本試驗(yàn)克隆了大蔥的蠟質(zhì)相關(guān)基因AfCER1,并對(duì)其基因序列、蛋白序列進(jìn)行了生物信息學(xué)分析,最后分析了AfCER1在大蔥野生型和突變型植株中的空間表達(dá)模式,旨在初步了解大蔥中的AfCER1基因,并預(yù)測(cè)AfCER1在大蔥蠟質(zhì)形成中的重要作用,為大蔥蠟質(zhì)合成的分子機(jī)制提供理論基礎(chǔ)。

    1 材料和方法

    1.1 材料

    供試大蔥材料來(lái)自北京市農(nóng)林科學(xué)院蔬菜研究中心試驗(yàn)田,從試驗(yàn)田中采集“鞭稈”大蔥的野生型和突變型植株(圖1-A),突變型植株與野生型相比表現(xiàn)為葉片少蠟、有光澤。為了研究蠟質(zhì)AfCER1基因在植株各部位的表達(dá)量,試驗(yàn)將植株細(xì)分為五大部分:根、鱗莖盤(pán)、葉鞘(圖1-B)、倒數(shù)第3葉出葉口及葉片,其中,葉鞘又分別從1/4,1/2,3/4長(zhǎng)度處取材,葉片分為見(jiàn)光葉片和不見(jiàn)光葉片,見(jiàn)光葉片又分別從1/4,1/2,3/4部位取材,不見(jiàn)光葉片從最長(zhǎng)葉葉片1/2處、最長(zhǎng)葉葉鞘1/2處取材,每株植株總計(jì)11個(gè)取材部位。所有取材部分均取自5株植物的混合樣品,取材完畢后將樣品放于液氮中運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室立即提取RNA并反轉(zhuǎn)錄為cDNA??寺fCER1基因用的材料為大蔥的見(jiàn)光葉片混合材料,RT-PCR和Real-time PCR選用11個(gè)取材部位的cDNA。

    本試驗(yàn)所用引物采用Primer 5軟件進(jìn)行設(shè)計(jì)(表1),由北京三博遠(yuǎn)志生物技術(shù)有限責(zé)任公司合成,試驗(yàn)中所有引物濃度均為10 μmol/L。

    表1 引物及序列

    1.2 方法

    1.2.1 大蔥RNA的提取及第1鏈cDNA的合成大蔥各部位總RNA提取步驟參照華越洋RNA提取試劑盒具體說(shuō)明書(shū)(北京華越洋生物科技有限公司)。以RNA為模板、寡聚核苷酸B26為引物合成第1鏈cDNA,詳細(xì)步驟參照PrimeScriptⅡ1st Strand cDNASynthesis Kit(TaKaRa,大連)說(shuō)明書(shū)。

    1.2.2 RACE獲得3′端cDNA序列 根據(jù)實(shí)驗(yàn)室前期研究工作,已經(jīng)對(duì)大蔥葉片進(jìn)行了RNA-seq測(cè)序,從數(shù)據(jù)庫(kù)中選取CER1基因序列的保守區(qū)設(shè)計(jì)引物S-L和S-R,得到基因的中間序列,根據(jù)測(cè)序結(jié)果設(shè)計(jì)3′端特異性引物C1,以葉片cDNA為模板、C1和B26為引物,進(jìn)行PCR擴(kuò)增。PCR反應(yīng)程序?yàn)椋?4℃預(yù)變性3 min;94℃30 s,58℃30 s,72℃1 min,共32個(gè)循環(huán);72℃5 min。瓊脂糖凝膠電泳回收PCR產(chǎn)物,參照Quick Gel Extraction Kit說(shuō)明書(shū)(北京全式金生物技術(shù)有限公司),使用TransGen載體將目的片段連接到pEASY-T5載體(北京全式金生物技術(shù)有限公司)上,轉(zhuǎn)化至DH5α大腸桿菌(北京全式金生物技術(shù)有限公司)中,挑取白斑進(jìn)行12 h左右的培養(yǎng),菌液PCR鑒定后將陽(yáng)性克隆送北京奧科鼎盛生物科技有限公司測(cè)序。

    1.2.3 RACE獲得5′端cDNA序列 根據(jù)CER1基因中間片段測(cè)序結(jié)果設(shè)計(jì)5′端的特異性引物C2和C3,結(jié)合5′錨定引物AP和巢式引物NP,進(jìn)行巢式PCR擴(kuò)增。第1輪以加Poly(c)尾的cDNA為模板,以AP和C2為引物,擴(kuò)增程序?yàn)椋?4℃預(yù)變性3min;94℃30 s,56.5℃30 s,72℃1 min,共32個(gè)循環(huán);72℃5 min。第2輪以第1輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物為模板,以NP和C3為引物擴(kuò)增,擴(kuò)增程序?yàn)椋?4℃預(yù)變性3 min;94℃30 s,55.5℃30 s,72℃1 min,32個(gè)循環(huán);72℃5 min??寺〉哪康钠慰寺〉絋載體后送北京奧科鼎盛生物科技有限公司測(cè)序。

    1.2.4 比對(duì)同源蛋白序列和構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù) 使用DNAMAN軟件將測(cè)序后獲得的cDNA兩端序列與中間序列進(jìn)行拼接,得到大蔥CER1的全長(zhǎng)序列。為了分析大蔥與其他物種CER1基因的同源性,將該基因的蛋白序列及其他物種的同源蛋白序列進(jìn)行比對(duì)分析,同時(shí)使用MEGA 6.0軟件將CER1基因序列和其他物種的CER1基因序列用鄰近相連法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),并進(jìn)行Bootstrap1000次檢測(cè)分析。

    1.2.5 RT-PCR和Real-time PCR分析AfCER1的空間表達(dá)模式 以各個(gè)部位的cDNA為模板、C-L和C-R為引物,進(jìn)行RT-PCR擴(kuò)增。洋蔥18SRNA引物作為內(nèi)參基因,特異引物為18SRNA-F和18SRNA-R。再以各個(gè)部位的cDNA為模板、C-L和C-R為特異引物,18SRNA-F和18SRNA-R為內(nèi)參引物,用熒光染料法(SYBR Green,天根生化科技(北京)有限公司)進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量表達(dá)分析,使用羅氏公司的Roche480實(shí)時(shí)定量PCR擴(kuò)增儀,每個(gè)試驗(yàn)重復(fù)3次。使用Microsoft Excel處理得到的數(shù)據(jù),參照2-ΔΔCt計(jì)算法計(jì)算相對(duì)表達(dá)量。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 AfCER1序列及其分析

    AfCER1基因中間片段、3′端目的片段和5′端目的片段分別為645,492,1 236 bp(圖2)。利用DNAMAN軟件將3條序列進(jìn)行拼接,得到AfCER1基因全長(zhǎng)(2 144 bp)。分析結(jié)果顯示,在野生型和突變體植株中克隆得到的AfCER1序列一致,基因全長(zhǎng)包含1個(gè)48 bp的5′非編碼區(qū);1個(gè)1 857 bp完整的開(kāi)放閱讀框(ORF),編碼618個(gè)氨基酸,推測(cè)蛋白分子量為71.08 kD,等電點(diǎn)為8.99;1個(gè)239 bp的3′非編碼區(qū),該非編碼區(qū)含有植物mRNA典型的Poly(A)尾序列。蛋白序列分析表明,AfCER1含有2個(gè)結(jié)構(gòu)域,其N(xiāo)端含有一個(gè)脂肪酸羥化酶區(qū)域,C端含有一個(gè)被命名為WAX2-C的功能未知域(圖3)。

    2.2 蛋白序列比對(duì)及其系統(tǒng)進(jìn)化分析

    將預(yù)測(cè)的AfCER1序列在NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中進(jìn)行BLAST檢索,結(jié)果表明,其氨基酸序列與香蕉MaCER1-like(68%)、谷子 SiCER1-like(66%)、玉米ZmCER1(65%)、野生稻ObCER1-like(65%)、小麥TaCER1(63%)、番茄 SlCER1-like(63%)、葡萄VvCER1-like(63%)、黃瓜CsCER1(62%)、蓮NnCER1(62%)、巨桉EgCER1-like(61%)等物種CER1的氨基酸序列有很高的同源性。大蔥CER1的蛋白結(jié)構(gòu)中有典型的脂肪酸羥化酶結(jié)構(gòu)域和WAX2 C-末端結(jié)構(gòu)域,其脂肪酸羥化酶結(jié)構(gòu)域的序列中包含3個(gè)保守的HXHH基序,而WAX2C-末端結(jié)構(gòu)域存在一個(gè)保守的LEGW序列基序(圖4)。

    進(jìn)化樹(shù)分析可知,按照序列的遠(yuǎn)近分為雙子葉植物和單子葉植物,大蔥作為單子葉植物,與雙子葉植物的蘋(píng)果、番茄、馬鈴薯等親緣關(guān)系相對(duì)較遠(yuǎn),而與油棕、香蕉等親緣關(guān)系相對(duì)較近(圖5)。

    2.3 AfCER1基因在大蔥不同部位的表達(dá)分析

    為了確定AfCER1基因在野生型和突變型大蔥中的空間表達(dá)模式,對(duì)大蔥的不同部位進(jìn)行了半定量RT-PCR分析,結(jié)果表明,AfCER1基因在大蔥的根、葉鞘、葉片等部位均有表達(dá),在根、不見(jiàn)光最長(zhǎng)葉葉片1/2處的野生型和突變型中均只有少量表達(dá);在鱗莖盤(pán)、葉鞘3/4處和葉片1/4處野生型和突變型的表達(dá)量有明顯差異,其余部位的表達(dá)量差異不顯著(圖6)。

    2.4 AfCER1在大蔥中的空間表達(dá)模式

    為了進(jìn)一步闡明AfCER1在大蔥不同部位的表達(dá)模式,對(duì)大蔥的不同部位進(jìn)行了實(shí)時(shí)熒光定量PCR(Real-time PCR),結(jié)果表明,在大蔥的根、葉鞘及剛見(jiàn)光的葉片中,AfCER1在突變型植株中的表達(dá)量相對(duì)野生型少,而在見(jiàn)光較多的葉片部位AfCER1在突變型中的表達(dá)量較野生型多。在表型蠟質(zhì)含量明顯差異的2個(gè)大蔥品種中,AfCER1基因的表達(dá)量有明顯的差異(圖7)。

    3 討論

    3.1 AfCER1可能是整合膜蛋白

    大蔥AfCER1蛋白序列與其他物種的CER1序列有較高的相似性,且所有的CER1均有2個(gè)典型的結(jié)構(gòu)域:脂肪酸羥化酶結(jié)構(gòu)域和WAX2-C結(jié)構(gòu)域,其中,同源蛋白區(qū)脂肪酸羥化酶結(jié)構(gòu)域含有3個(gè)保守的富含組氨酸的基序(HX3H,HX2HH和HX2HH,其中X代表任意氨基酸),該域?qū)γ傅幕钚杂兄匾淖饔肹23],包含這種結(jié)構(gòu)域的酶可能是一種整合膜蛋白,參與膽固醇和植物表皮蠟的合成;而在烷類中起作用但功能仍未知的WAX2 C-末端結(jié)構(gòu)域[6],經(jīng)常會(huì)在真核生物中發(fā)現(xiàn),存在一個(gè)保守的LEGW序列基序,可能與脂肪酸羥化酶區(qū)域有關(guān)。

    3.2 AfCER1基因可能影響大蔥表皮蠟質(zhì)的積累

    陸生植物表皮蠟質(zhì)存在于地上部器官的組織表皮,且蠟質(zhì)是在表皮細(xì)胞中合成并運(yùn)輸?shù)奖砥ね鈁24]。大部分植物蠟質(zhì)的主要成分是烷類,占蠟質(zhì)總量的50%~80%[18-20]。關(guān)于蠟質(zhì)基因研究較為透徹的植物是擬南芥,其中包括CER1在內(nèi)的很多蠟質(zhì)基因已被鑒定和研究。在擬南芥cer1突變體中,烷類及其衍生物的含量下降較為明顯,而醛類的含量有所上升,是編碼醛脫羧酶的基因,可以將醛催化成烷烴[21]。另外,有研究表明,定位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的CsCER1在黃瓜蠟質(zhì)烷類的合成中起到了關(guān)鍵作用[25];在大桐巖中,SsCER1基因也是一個(gè)蠟質(zhì)基因,與蠟質(zhì)的形成相關(guān)[26]。

    擬南芥中CER1的表達(dá)量分析顯示,表達(dá)量的改變可以影響超長(zhǎng)鏈烷烴的合成,進(jìn)而影響蠟質(zhì)的合成。T-DNA插入等位基因突變體的蠟質(zhì)缺乏超長(zhǎng)鏈烷烴及其衍生物,而CER1過(guò)表達(dá)顯著地增加了奇數(shù)碳的烷烴和異支鏈烷烴的積累[20]。而本研究中比較了AfCER1在大蔥的野生型和突變型植株中的表達(dá),結(jié)果表明,AfCER1在大蔥的各個(gè)部位均有表達(dá),說(shuō)明蠟質(zhì)遍布于植株的各個(gè)部位,但是在大蔥野生型和突變體植株的不同部位,AfCER1的表達(dá)量發(fā)生了很大的改變,尤其在突變體的葉片部位,AfCER1的表達(dá)量較高,大蔥葉片中AfCER1的調(diào)節(jié)作用可能與擬南芥中CER1過(guò)表達(dá)時(shí)的作用相似,導(dǎo)致生成奇數(shù)碳的烷烴和異支鏈烷烴增多,進(jìn)一步影響蠟質(zhì)的積累。綜上推測(cè),AfCER1可能參與了大蔥表皮蠟質(zhì)的合成,但是具體的調(diào)節(jié)作用及代謝途徑,仍需進(jìn)一步驗(yàn)證。

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    Cloning and Expression Analysis of AfCER1Gene in Welsh Onion

    AO Na1,2,ZHAO Hong2,PEI Yan-xi1,WANG Yong-qin2
    (1.College of Life Sciences,Shanxi University,Taiyuan 030006,China;2.Key Laboratory of Biology and Genetic Improvement of Horticultural Crops(North China),Ministry of Agriculture,Beijing Vegetable Germplasm Improvement Laboratory,Beijing Vegetable Research Center,Beijing Academy of Agriculture and Forestry Sciences,Beijing100097,China)

    The wax-related gene CER1 primer design was based on RNA-seq transcriptome database of welsh onion,the AfCER1 gene full sequence length was obtained by RT-PCR(Reverse transcription-polymerase chain reaction)and RACE(Rapid amplification of cDNA ends)technology,and then analyzed its basic structure in NCBI.The differentially expression in wild and mutant plants was analyzed using RT-PCR and Real-time PCR technology.The results showed that the AfCER1 full-length cDNA was 2 144 bp,and contained an 1 857 bp open reading frame(ORF)which encoded 618 amino acids.The protein sequence alignment result showed that AfCER1 had a fatty acid hydroxylase region and a WAX2-C domain,which was similar to the CER1 functional domains of other species. RT-PCR results indicated that AfCER1 gene was expressed in root,leaf sheath and leaf,there were differences in the expression of wild and mutant plants.Real-time PCR results indicated that AfCER1 less expressed in mutant compare to wild in root,leaf sheaths and leaves.However,AfCER1 gene higher expressed in the lighted leaves of mutant plants.This study provides a theoretical basis for the molecular mechanism of wax synthesis of welsh onion.

    welsh onion;wax;AfCER1;gene cloning;expression analysis

    S633.1

    A

    1002-2481(2016)05-0569-07

    10.3969/j.issn.1002-2481.2016.05.01

    2016-02-25

    國(guó)家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(31372066);北京市農(nóng)林科學(xué)院科技創(chuàng)新能力建設(shè)專項(xiàng)(KJCX201101010)

    奧 娜(1989-),女,山西呂梁人,在讀碩士,研究方向:大蔥表皮蠟質(zhì)形成機(jī)制。裴雁曦、王永勤為通信作者。

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