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    FGF-21促進HepG2細胞攝取葡萄糖研究

    2016-12-20 10:32:19劉銘瑤王文飛侯玉婷任桂萍吳云舟李德山
    東北農(nóng)業(yè)大學學報 2016年5期
    關(guān)鍵詞:胰島素檢測

    劉銘瑤,王文飛,侯玉婷,任桂萍,吳云舟,李德山*

    (1.東北農(nóng)業(yè)大學生命科學學院,哈爾濱 150030;2.長春衛(wèi)爾賽生物藥業(yè)有限公司,長春 130616)

    FGF-21促進HepG2細胞攝取葡萄糖研究

    劉銘瑤1,王文飛1,侯玉婷2,任桂萍1,吳云舟1,李德山1*

    (1.東北農(nóng)業(yè)大學生命科學學院,哈爾濱 150030;2.長春衛(wèi)爾賽生物藥業(yè)有限公司,長春 130616)

    肝臟是代謝的中樞性器官,在糖脂代謝中扮演重要角色。FGF-21是近年來發(fā)現(xiàn)的一種治療糖尿病新型藥物,研究其對肝臟糖代謝影響及機制將為FGF-21成藥性提供理論依據(jù)。以HepG2細胞為肝細胞模型,探究FGF-21對HepG2細胞葡萄糖吸收影響及作用機制。FGF-21處理HepG2細胞,采用葡萄糖氧化酶-過氧化物酶(GOD-POD)法檢測細胞對葡萄糖攝取情況,并檢查胰島素與FGF-21協(xié)同作用,蒽酮法檢測細胞內(nèi)糖原含量,半定量和實時熒光定量PCR檢測FGF-21對葡萄糖轉(zhuǎn)運蛋白(GLUTs)mRNA表達影響。結(jié)果表明,F(xiàn)GF-21可促進HepG2細胞攝取葡萄糖,與胰島素具有一定協(xié)同作用,增加糖原合成。半定量PCR結(jié)果顯示在FGF-21作用下,僅GLUT1 mRNA表達有所增加。實時熒光定量PCR檢測FGF-21作用時間對GLUT1 mRNA表達量影響,發(fā)現(xiàn)FGF-21作用6 h時GLUT1 mRNA表達量倍數(shù)增加最大。說明FGF-21可通過增加GLUT1 mRNA表達促進HepG2細胞消耗葡萄糖,參與糖原合成。

    糖尿?。惶谴x;FGF-21;HepG2

    劉銘瑤,王文飛,侯玉婷,等.FGF-21促進HepG2細胞攝取葡萄糖研究[J].東北農(nóng)業(yè)大學學報,2016,47(5):36-43.

    Liu Mingyao,Wang Wenfei,Hou Yuting,et al.Study on FGF-21 regulates glucose uptake in HepG2 cells[J].Journal of Northeast Agricultural University,2016,47(5):36-43.(in Chinese with English abstract)

    成纖維細胞生長因子(FGF)-21是FGF家族一員,主要在肝臟中表達[1],是一種安全、可靠、不依賴胰島素的代謝調(diào)節(jié)因子,參與糖脂代謝調(diào)節(jié)過程,有望成為治療2型糖尿病新型藥物。Kharitonenkov等發(fā)現(xiàn)在體外環(huán)境下FGF-21能促進3T3-L1脂肪細胞和人原代脂肪細胞消耗葡萄糖,而對未分化成纖維細胞、L6-葡萄糖轉(zhuǎn)運肌纖維和肌管細胞等無作用,因此脂肪細胞被認為是FGF-21作用唯一靶細胞[2]。Kharitonenkov研究表明,在動物體內(nèi),F(xiàn)GF-21具有降低血糖、甘油三酯低密度膽固醇脂蛋白(LDL),升高高密度膽固醇脂蛋白(HDL)等功能,且不會產(chǎn)生低血糖、高胰島素血癥、體重增加,水腫等常規(guī)降糖藥物副作用[3]。隨著對FGF-21潛在功能開發(fā),研究發(fā)現(xiàn)FGF-21不僅在糖脂代謝上具有重要調(diào)節(jié)作用,其功能還涉及抑制胰高血糖素釋放,保存胰島β細胞數(shù)量和功能,預防化學誘導的肝癌,降低體重、減少脂肪堆積、提高胰島細胞功能及數(shù)量、改善胰島素抵抗等[4-8]。對FGF-21作用靶點的研究也從脂肪器官轉(zhuǎn)移到人體另一個重要代謝器官——肝臟。近年來,Badman和Xu等研究發(fā)現(xiàn)FGF-21可以在肝臟中調(diào)節(jié)脂類代謝,但FGF-21在肝細胞中直接功能效應(yīng)尚未見報道[9-11]。

    肝臟是糖代謝最主要器官之一,對維持血糖穩(wěn)定有重要作用,主要表現(xiàn)在糖異生、糖原合成和攝取、利用及釋放葡萄糖??崭範顟B(tài)時,肝臟主要通過糖原分解與糖異生維持機體正常葡萄糖水平,餐后肝臟通過糖原合成、抑制糖原分解和糖異生降低葡萄糖濃度,不僅為自身生理活動提供能量,還為周圍其他器官提供葡萄糖[12]。肝臟糖代謝異常產(chǎn)生胰島素抵抗,且為2型糖尿病基本病理生理現(xiàn)象[13-14]。因此,研究FGF-21對肝細胞糖代謝影響對糖尿病治療具有重要意義。本試驗以肝臟為研究靶點,利用HepG2肝細胞模型研究FGF-21對肝細胞糖代謝影響及可能作用機制,為FGF-21成藥性提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 細胞株

    HepG2細胞由東北農(nóng)業(yè)大學生命科學學院生物制藥實驗室提供。

    1.1.2 主要試劑

    DMEM培養(yǎng)基、新生牛血清(NCS)、胎牛血清(FBS)購自Invitrogen公司;FGF-21由東北農(nóng)業(yè)大學生命科學學院生物制藥實驗室純化獲得;人重組胰島素(Human recombined insulin);細菌內(nèi)毒素脂多糖(LPS)購自Sigma Corporation;葡萄糖檢測試劑盒購自四川邁克科技有限責任公司;RNA酶抑制劑(RNasin,RNase Inhibitor),逆轉(zhuǎn)錄酶(MMuLV),RNA提取試劑Trizol,1kb Plus DNA Ladder購自Invitrogen公司;Oligo(dT)15購自Takara公司;其他化學試劑均為分析純。

    1.1.3 引物

    半定量PCR引物、實時熒光定量PCR引物由Invitrogen公司合成。半定量PCR引物如下:

    GLUT1

    上游引物:5'TGAACCTGCTGGCCTTC 3'

    下游引物:5'GCAGCTTCTTTAGCACA 3' GLUT2

    上游引物:5'CAACAGGTAATAATATC 3'

    下游引物:5'CTCGCACACCAGACAGG 3' GLUT3

    上游引物:5'AAGGATAACTATAATGG 3'

    下游引物:5'GGTCTCCTTAGCAGGCT 3' GLUT4

    上游引物:5'CAGAAGGTGATTGAACA 3'

    下游引物:5'CAGGTAGCACTGTGAGG 3'

    1.2 方法

    1.2.1 HepG2葡萄糖消耗細胞模型建立

    取生長狀態(tài)良好HepG2細胞,以2.5×104細胞數(shù)·孔-1密度接種于96孔板中,細胞培養(yǎng)液為200 μL·孔-1。37℃、5%CO2,飽和濕度條件下培養(yǎng)。當細胞長至貼壁匯合時,PBS緩沖液洗兩次,無血清培養(yǎng)基處理細胞12 h后,用細胞培養(yǎng)基稀釋胰島素貯存液(10 mg·mL-1),使其終濃度為0.01、0.1、1、10、100 mg·L-1,以每孔200 μL量加入細胞中。每個濃度至少設(shè)3個重復孔。24 h后葡萄糖氧化酶-過氧化物酶法檢測培養(yǎng)基中葡萄糖含量[15],同時以無胰島素刺激、正常培養(yǎng)細胞為對照。取細胞消耗上清培養(yǎng)基2 μL于葡萄糖檢測試劑盒中檢測液中,37℃反應(yīng)5~10 min后,在500 nm波長下測OD值,根據(jù)標準品間接計算細胞葡萄糖消耗率,運用統(tǒng)計學分析試驗結(jié)果。

    1.2.2 FGF-21對HepG2細胞糖代謝測定

    HepG2細胞血清饑餓12 h后,用培養(yǎng)基稀釋FGF-21(0.4 mg·mL-1)蛋白,使其終濃度為0.01、0.1、1、10、100 mg·L-1,以每孔200 μL量將含上述不同稀釋濃度FGF-21加入96孔板上細胞中。每個濃度至少設(shè)3個重復孔。培養(yǎng)24 h后取上清培養(yǎng)基用葡萄糖試劑盒檢測培養(yǎng)基中葡萄糖含量,數(shù)據(jù)作統(tǒng)計學分析。同時,為排除FGF-21蛋白中微量內(nèi)毒素干擾,用培養(yǎng)基稀釋內(nèi)毒素標準品作為對照,使其終濃度為10、1、0.1 ng·mL-1,相同條件下孵育細胞24 h后取上清培養(yǎng)基檢測培養(yǎng)基中葡萄糖含量。

    1.2.3 FGF-21聯(lián)合胰島素作用對HepG2細胞糖吸收影響

    取生長狀態(tài)良好HepG2細胞接種于96孔板,血清饑餓12 h后將細胞分為四組,I組加入正常細胞培養(yǎng)基,II組加入含有10 mg·L-1胰島素培養(yǎng)基,III組加入含有10 mg·L-1FGF-21培養(yǎng)基,IV組加入同時含有10 mg·L-1胰島素和FGF-21培養(yǎng)基。上述四組培養(yǎng)基孵育細胞24 h后,取上清培養(yǎng)基用葡萄糖試劑盒檢測葡萄糖含量,數(shù)據(jù)作統(tǒng)計學分析。

    1.2.4 FGF-21對GLUT1 mRNA表達影響

    HepG2細胞用無血清培養(yǎng)基培養(yǎng)12 h后,分別用10 mg·L-1胰島素和10 mg·L-1FGF-21培養(yǎng)細胞,正常細胞培養(yǎng)基孵育細胞為對照,培養(yǎng)4、6、8和24 h后收獲細胞,Trizol法提取細胞總RNA。以不同處理細胞總RNA為模板,Oligo(dT)15為引物合成cDNA。在HepG2細胞中穩(wěn)定表達的GAPDH為內(nèi)參,特異性引物和半定量PCR法檢測GLUT1、GLUT2、GLUT3和GLUT4表達。實時熒光定量PCR檢測GLUT1 mRNA表達。GAPDH內(nèi)參基因擴增上游引物為5'GGAAGGTGAAGGTCGGAG TC 3',下游引物為5'ACTCCACGACGTACTCAGC G 3'。GLUT1目的基因擴增上游引物[16]為5'CAT CAATGCCCCCCAGAA 3',下游引物為5'AAGCG GCCCAGGATCAG 3'。按照Thermal Cycler DiceTM Real Time PCR(TaKaRa Code:TP800)使用說明書要求操作。反應(yīng)體系為2.0 μL cDNA模板,10.0 μL SYBR Premix Ex TaqTM(2×),0.4μL PCR正反引物(10 mol·L-1),0.4 μL ROX Reference Dye II(50×),滅菌三蒸水補足20 μL(內(nèi)參和目的片段同批擴增)。反應(yīng)條件為95℃10 s,95℃5 s,60℃31 s,40個循環(huán)。每次擴增均設(shè)由三蒸水代替模板的空白對照,每個樣品至少重復3次。使用相對定量分析方法(2-ΔΔCt法)對目的基因相對定量。

    1.2.5 細胞內(nèi)糖原含量檢測

    HepG2細胞血清饑餓12 h后,分別用10 mg·L-1胰島素和10 mg·L-1FGF-21培養(yǎng)細胞,以正常細胞培養(yǎng)基孵育細胞為對照,12 h后收獲細胞,PBS重懸,血細胞計數(shù)板計數(shù)。取密度為每毫升1×105細胞蒽酮法檢測細胞內(nèi)糖原含量[17]。

    1.2.6 數(shù)據(jù)處理

    Excel 2007進行統(tǒng)計分析,數(shù)據(jù)以-x±s表示,兩組間計量資料比較采用t檢驗,多組間比較采用方差分析,兩變量間采用相關(guān)分析,P<0.05為差異顯著有統(tǒng)計學意義。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 FGF-21促進HepG2細胞消耗葡萄糖

    HepG2細胞是對胰島素敏感的靶細胞,用不同濃度胰島素處理HepG2細胞,24 h后經(jīng)葡萄糖氧化酶-過氧化物酶法檢測細胞葡萄糖消耗率,結(jié)果顯示,胰島素濃度在0.1 mg·L-1時,細胞的葡萄糖消耗率達61.15%,比對照細胞葡萄糖消耗率(35.79%)增加25%,差異顯著(*P<0.01)。高于此濃度,在1~ 100 mg·L-1之間,與對照細胞葡萄糖消耗率相比差異極顯著(**P<0.01),但此濃度細胞間葡萄糖消耗率變化不大,與1 mg·L-1相比差異不顯著,細胞葡萄糖吸收達到飽和。而濃度低于0.1 mg·L-1時,隨胰島素濃度下降,細胞葡萄糖消耗率也相應(yīng)下降,呈劑量依賴性關(guān)系,結(jié)果見圖1。葡萄糖氧化酶-過氧化物酶法檢測體外培養(yǎng)細胞的糖吸收具有可行性,方法簡便、穩(wěn)定,結(jié)果具有可重復性。因此,在后續(xù)試驗中利用該方法檢測經(jīng)不同處理HepG2細胞對葡萄糖的攝取情況。

    不同濃度FGF-21處理HepG2細胞24 h,經(jīng)微量化GOD-POD法檢測培養(yǎng)基中葡萄糖含量,結(jié)果顯示,HepG2細胞對葡萄糖攝取利用顯著增加,殘存在培養(yǎng)基中葡萄糖含量明顯低于對照組,差異表現(xiàn)為顯著或極顯著(兩樣本比較t檢驗,*P<0.05差異顯著,**P<0.01差異極顯著)。FGF-21濃度在100 mg·L-1時,細胞葡萄糖消耗率最高為69.2%,比未經(jīng)FGF-21處理的對照組高出近34%,而FGF-21濃度最低為0.01 mg·L-1時,細胞葡萄糖消耗率也可達53.16%,F(xiàn)GF-21濃度增加,細胞葡萄糖消耗率呈線性顯著增加(見圖2),存在劑量依賴關(guān)系。

    圖2 FGF-21刺激HepG2細胞葡萄糖吸收Fig.2FGF-21 stimulates glucose uptake by HepG2 cells

    本試驗所用FGF-21是由原核表達系統(tǒng)制備,盡管純化后FGF-21蛋白經(jīng)鱟試劑盒檢測所含內(nèi)毒素(LPS)低于0.5 EU·mL-(10.05~0.1 ng·mL-1),但為排除內(nèi)毒素對細胞葡萄糖吸收影響,用濃度0.001~10 ng·mL-1LPS處理細胞24 h,細胞葡萄糖消耗率與空白對照組相比差異不顯著,可見當LPS濃度在0.001~10 ng·mL-1時對FGF-21促進細胞攝取葡萄糖作用無影響(見圖3)。證明FGF-21對HepG2細胞同樣具有促進消耗葡萄糖功能,肝細胞可能是FGF-21作用另一靶細胞。HepG2僅作為一種肝細胞模型,F(xiàn)GF-21對正常肝細胞是否具有生物學活性,能否調(diào)節(jié)肝臟糖代謝有待進一步研究。

    圖3 LPS對HepG2細胞葡萄糖吸收影響Fig.3Effect of LPS on glucose uptake by HepG2 cells

    2.2 FGF-21與胰島素具有協(xié)同作用

    用同時含有10mg·L-1胰島素和10mg·L-1FGF-21混合培養(yǎng)基共同孵育HepG2細胞,24 h后取培養(yǎng)基檢測細胞葡萄糖攝取情況,同時分別以只含等量胰島素和FGF-21培養(yǎng)基作對照,以未處理HepG2細胞為處理組空白對照。結(jié)果見圖4,胰島素和FGF-21均能促進HepG2細胞消耗培養(yǎng)基中葡萄糖,與空白作用組差異顯著(*P<0.05),且胰島素與FGF-21具有一定協(xié)同作用,聯(lián)合作用組細胞葡萄糖消耗率明顯高于胰島素和FGF-21單獨作用組,差異極顯著(**P<0.01)。

    圖4 FGF-21與人胰島素協(xié)同作用增加HepG2細胞葡萄糖吸收Fig.4FGF-21 shows a synergistic effect with human recombinant insulin on glucose uptake by HepG2 cells

    圖5 FGF-21上調(diào)GLUT1mRNA表達Fig.5FGF-21 enhances GLUT1 mRNA expression

    2.3 FGF-21促進GLUT1 mRNA表達21處理細胞6 h后,收獲細胞提取細胞總RNA,反轉(zhuǎn)錄后半定量PCR檢測GLUT1-GLUT4 mRNA表達變化,以胰島素處理細胞為對照。結(jié)果顯示,F(xiàn)GF-21作用下HepG2細胞僅GLUT1在核酸水平表達,而GLUT2、GLUT3和GLUT4無表達,胰島素作用下HepG2細胞的GLUT4在核酸水平表達,GLUT1及其他葡萄糖轉(zhuǎn)運蛋白無表達(見圖5)。因此FGF-21促進葡萄糖吸收可能與GLUT1 mRNA表

    葡萄糖主要通過協(xié)助擴散作用在哺乳動物細胞內(nèi)外跨膜轉(zhuǎn)運,依賴于葡萄糖轉(zhuǎn)運蛋白(GLUTs)的介導[18-20]。介導利用半定量PCR初步檢測在FGF-21作用下,確定葡萄糖在HepG2細胞中轉(zhuǎn)運介導葡萄糖轉(zhuǎn)運蛋白(GLUT1-GLUT4)。10 mg·L-1FGF-達有關(guān)。real-time PCR方法進一步確認,結(jié)果見圖5。

    FGF-21可促進HepG2細胞GLUT1 mRNA表達(*P<0.05,**P<0.01),且隨時間變化表達量改變,F(xiàn)GF-21處理細胞6 h時,GLUT1 mRNA表達最高,與對照未經(jīng)FGF-21處理細胞GLUT1表達量增加5.25倍??梢姡現(xiàn)GF-21能促進HepG2細胞GLUT1表達,使細胞大量攝取葡萄糖。

    2.4 FGF-21促進肝糖原合成

    為研究FGF-21作用后細胞內(nèi)葡萄糖去向,檢測經(jīng)FGF-21處理后HepG2細胞糖原合成量變化,已知胰島素可以促進肝細胞攝取、利用葡萄糖,合成肝糖原,因此以胰島素刺激后細胞為對照。含10 mg·L-1FGF-21和等量胰島素培養(yǎng)基單獨處理HepG2細胞12 h后,收獲細胞,經(jīng)蒽酮法檢測細胞內(nèi)糖原含量。結(jié)果見圖6,F(xiàn)GF-21與胰島素同樣具有促進HepG2細胞合成糖原作用,與對照組細胞相比差異顯著(*P<0.05)。

    圖6 FGF-21刺激肝細胞合成肝糖原Fig.6FGF-21 stimulates glycogen synthesis in liver cells

    3 討論

    HepG2細胞是一種表型與肝細胞極為相似的人肝胚胎瘤細胞株,具有肝細胞生物學特性[21-24],作為研究和治療糖尿病細胞模型應(yīng)用廣泛。因此,本試驗以HepG2細胞為模型研究FGF-21對肝細胞糖代謝作用。結(jié)果表明,F(xiàn)GF-21可不依賴于胰島素獨立促進HepG2細胞消耗葡萄糖,細胞葡萄糖消耗率與劑量呈正相關(guān)性。FGF-21與胰島素具有協(xié)同作用,聯(lián)合處理HepG2細胞后,可增加葡萄糖攝取率。前人在細胞水平上檢測制備FGF-21蛋白生物學活性均以脂肪細胞為檢測模型,但體外培養(yǎng)脂肪細胞分化難,分化周期長(至少需要14~ 20 d),檢測結(jié)果受分化效率影響,批量檢測難以進行。本試驗發(fā)現(xiàn)FGF-21可促進HepG2細胞攝取葡萄糖,以HepG2作為葡萄糖吸收模型,簡便易行,無分化時間限制,可同時檢測不同批次蛋白,為進一步研究該蛋白體內(nèi)作用及機制提供依據(jù)。

    葡萄糖無法自由通過細胞膜脂質(zhì)雙層結(jié)構(gòu)進入細胞,借助結(jié)構(gòu)相近的葡萄糖轉(zhuǎn)運蛋白(GLUTs)協(xié)助擴散作用進入細胞內(nèi)。葡萄糖轉(zhuǎn)運蛋白分布于不同組織,存在各自的生物學功能及調(diào)控形式[22-23]。在肌肉和脂肪組織中,GLUT4從細胞質(zhì)轉(zhuǎn)移至細胞膜輔助葡萄糖由細胞外進入到細胞內(nèi)的過程受胰島素特異性調(diào)控。GLUT1是分布最為廣泛的葡萄糖轉(zhuǎn)運蛋白,與代謝密切相關(guān)。GLUT1在HepG2細胞中高表達。因此,為進一步研究FGF-21促進HepG2細胞葡萄糖吸收作用機制,利用實時熒光定量PCR方法檢測FGF-21作用后HepG2細胞GLUT1 mRNA表達情況,發(fā)現(xiàn)FGF-21處理后細胞GLUT mRNA表達量顯著增加。為研究HepG2細胞攝取葡萄糖去路,本試驗利用蒽酮法檢測細胞內(nèi)糖原含量,結(jié)果發(fā)現(xiàn)FGF-21作用后HepG2細胞內(nèi)糖原合成量顯著增加。因此FGF-21促使HepG2細胞攝取葡萄糖將有一部分用于合成糖原。

    肝臟是糖代謝重要器官,在機體整個葡萄糖代謝中占重要地位,其代謝紊亂會導致各種代謝疾病發(fā)生。肝臟內(nèi)糖代謝受多種激素和酶的調(diào)控,如胰島素——體內(nèi)最重要的降糖激素,肝臟是其主要作用靶器官,在肝臟內(nèi)胰島素與其受體(InsR)相結(jié)合,引發(fā)一個復雜的信號傳導通路,從而促使細胞對葡萄糖攝取和代謝,穩(wěn)定血糖濃度[25]。胰島素通過與其受體及信號作用直接或間接影響肝臟葡萄糖轉(zhuǎn)運和利用[26-27]。FGF-21是體內(nèi)除胰島素外又一血糖調(diào)節(jié)因子,在脂肪細胞中能促進脂肪細胞攝取葡萄糖,并增加GLUT1 mRNA表達,但FGF-21直接作用于肝細胞,促進肝細胞攝取葡萄糖未見報道。試驗中,發(fā)現(xiàn)FGF-21促進HepG2細胞攝取葡萄糖作用,與胰島素不同的是FGF-21可調(diào)節(jié)GLUT1表達。因此,推測在HepG2細胞中,F(xiàn)GF-21不依賴于胰島素單獨通過與其受體結(jié)合調(diào)節(jié)GLUT1表達,介導葡萄糖轉(zhuǎn)運,使HepG2細胞攝取并利用葡萄糖合成糖原。目前,F(xiàn)GF-21治療糖尿病已經(jīng)進入臨床研究階段[28-29],分析FGF-21在肝臟中作用可對深入研究FGF-21控制血糖生物學功能提供理論依據(jù)。

    HepG2僅是一種肝細胞模型,體內(nèi)肝臟糖代謝是一個復雜過程,受多種激素及酶類調(diào)控。因此,未來將在動物體內(nèi)研究FGF-21對肝糖代謝關(guān)鍵酶類調(diào)節(jié),深入探討FGF-21對肝糖代謝作用。

    4 結(jié)論

    本文以HepG2細胞為模型研究FGF-21對肝細胞糖代謝影響,初步探討FGF-21對肝細胞糖代謝可能作用機制。研究發(fā)現(xiàn)FGF-21通過增加GLUT1表達協(xié)助HepG2細胞攝取葡萄糖,并利用其合成糖原。提示FGF-21可以作用于肝臟,通過調(diào)節(jié)肝臟糖代謝控制血糖,深入研究FGF-21對肝臟代謝調(diào)控作用將為FGF-21治療糖尿病的臨床研究提供理論基礎(chǔ)。

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    Study on FGF-21 regulates glucose uptake in HepG2 cells

    LIU Mingyao1,WANG Wenfei1,HOU Yuting2,REN Guiping1,WU Yunzhou1,LI Deshan1

    (1.School of Life Sciences, Northeast Agricultural University,Harbin 150030,China;2.Changchun Weresai Biotic Pharmaceutical Co.Ltd,Changchun 130616,China)

    Liver is a metabolic center,plays an important role in regulating glucose and lipid metabolism.FGF-21 is an important candidate drug to treat diabetes;so to study the effect and mechanism of its effects on regulation of the glucose metabolism in liver is very important for drug research.We chose HepG2 cells as a model to study the effects of FGF-21 on glucose uptake in liver and the mechanism of its action.After treated by FGF-21,the glucose uptake by the HepG2 cells was detected by the method of glucose oxidizes·peroxides(GOD-POD);glycogen synthesis was examined by anthrone method,the synergy between insulin and FGF-21 was evaluated.With the purpose to study the mechanism of FGF-21 on glucose uptake,the mRNA expression of GLUTs was detected by semiquantitative PCR and real-time PCR with specific primers.The results showed that FGF-21 stimulated glucose uptake by the HepG2 cells in a does-dependent manner and had a synergistic effectwith insulin.FGF-21 could also increase glycogen synthesis in the HepG2 cells,with the same action as insulin.The result of the semiquantative PCR showed that only GLUT1 mRNA was increased with FGF-21 stimulation.FGF-21 induced a significant increase of GLUT1 mRNA in the HepG2 cells detected by real-time PCR.The fold of GLUT1 mRNA expression was raised most at 6 hours,more than 5-fold was increased.Thus,we concluded that FGF-21 stimulates glucose uptake and glycogen synthesis in HepG2 cells,and enhanced glucose absorption of HepG2 cells probably through GLUT1 activation.

    diabetes;glucose metabolism;FGF-21;HepG2 cell line

    R575

    A

    1005-9369(2016)05-0036-08

    2015-06-06

    國家自然基金項目(J1210069/J0116);東北農(nóng)業(yè)大學博士啟動基金(2010RCB52)

    劉銘瑤(1984-),女,實驗師,碩士,研究方向為生物制藥。E-mail:liumingyao_002@163.com

    *通訊作者:李德山,教授,博士生導師,研究方向為制藥工程。E-mail:deshanli@163.com

    時間2016-5-27 10:13:49[URL]http://www.cnki.net/kcms/detail/23.1391.S.20160527.1013.012.html

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