脊髓灰質(zhì)炎病毒實時熒光定量RT-PCR方法的應(yīng)用與發(fā)展

唐海淑，杜相品，甫爾哈提·吾守爾，范新春，關(guān)　靜 綜述,崔　惠 審校

(新疆維吾爾自治區(qū)疾病預(yù)防控制中心免疫規(guī)劃科，烏魯木齊 830011)

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脊髓灰質(zhì)炎病毒實時熒光定量RT-PCR方法的應(yīng)用與發(fā)展

唐海淑，杜相品，甫爾哈提·吾守爾，范新春，關(guān)靜 綜述,崔惠 審校

(新疆維吾爾自治區(qū)疾病預(yù)防控制中心免疫規(guī)劃科，烏魯木齊 830011)

脊髓灰質(zhì)炎病毒；實時熒光定量RT-PCR；應(yīng)用發(fā)展

1996年美國Applied Biosystems公司推出了實時熒光定量PCR技術(shù)，該技術(shù)是指在PCR反應(yīng)體系中加入熒光基團，利用熒光信號積累實時監(jiān)測整個PCR進程，最后通過標(biāo)準(zhǔn)曲線對未知模板進行定量分析的方法[1-2]。該技術(shù)實現(xiàn)了PCR從定性到定量的飛躍，可動態(tài)實時檢測核酸產(chǎn)物的形成，無需后處理過程，避免了擴增產(chǎn)物的污染，而且具有直觀、重復(fù)性好、特異性強、敏感性高、定量準(zhǔn)確、自動化程度高、速度快、全封閉和易操作等優(yōu)點，因而目前已得到廣泛應(yīng)用[3-4]。

2011年8月新疆維吾爾自治區(qū)局部地區(qū)發(fā)生輸入性脊髓灰質(zhì)炎野病毒(WPV)的疫情后，為了縮短檢測時限，中國決定從2013年起在脊髓灰質(zhì)炎(下稱脊灰)實驗室網(wǎng)絡(luò)啟用世界衛(wèi)生組織推薦的脊灰病毒(PV)分離新的檢測流程。新檢測流程要求省級脊灰實驗室經(jīng)過培訓(xùn)考核合格后，使用美國疾病預(yù)防和控制中心研制的實時熒光定量逆轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)(rRT-PCR)試劑和方法，對分離出的PV進行型內(nèi)鑒定(ITD)。

1　實時熒光定量RT-PCR方法

1.1工作原理根據(jù)原理的不同，實時熒光定量RT-PCR檢測方法主要分為利用與靶序列特異雜交的探針來指示擴增產(chǎn)物增加的探針類和利用熒光染料或者特殊設(shè)計的引物來指示擴增的增加非探針類2種[5]。熒光染料技術(shù)是在PCR反應(yīng)體系中加入熒光探針，利用熒光信號累積實時監(jiān)測整個PCR進程，最后通過標(biāo)準(zhǔn)曲線對未知模板DNA進行分析的1種方法[6]。熒光染料法是利用熒光染料染色DNA雙鏈結(jié)構(gòu)，在DNA雙鏈結(jié)構(gòu)的小溝中，當(dāng)熒光染料處于游離狀態(tài)時，檢測不到熒光信號，當(dāng)它與dsDNA結(jié)合后熒光強度明顯增強，即被熒光探測系統(tǒng)檢測到，熒光信號強度的增加是與初始模板量相關(guān)的，由此可以進行定量 DNA分析[7]。熒光染料目前主要有Pico Green和SYBR Green[8]。PV實時熒光定量RT-PCR采用的是TaqMan熒光探針法。

1.2定量原理實時熒光定量RT-PCR方法檢測到的熒光信號強度與PCR反應(yīng)產(chǎn)物的量呈正相關(guān)，即每擴增1條DNA鏈，就有1個熒光分子形成，實現(xiàn)了熒光信號的累積與PCR產(chǎn)物的形成完全同步，這樣就可以通過熒光強度變化監(jiān)測產(chǎn)物量的變化，從而得到1條熒光擴增曲線圖[9]。一般而言，熒光擴增曲線可分為3個階段：熒光本底信號階段、熒光信號指數(shù)擴增階段和平臺期。PCR反應(yīng)的前15個循環(huán)的熒光信號作為熒光本底信號，缺省設(shè)置是3～15個循環(huán)，在指數(shù)增長階段，每個循環(huán)PCR產(chǎn)物量大約增加1倍，隨著反應(yīng)的進行，反應(yīng)體系組成成分的消耗，反應(yīng)進入平臺期[10]。熒光信號擴增期PCR產(chǎn)物量的對數(shù)之間存在線性關(guān)系，可以在指數(shù)期的某一點上來檢測PCR產(chǎn)物的量，并由此推斷模板最初值與起始模板量的含量[11]。在實際檢測過程中，PCR擴增時利用Taq DNA聚合酶的5′～3′外切酶活性將探針?biāo)獬蓡魏塑账?，游離的熒光報告基團導(dǎo)致熒光信號的增加，通過對熒光信號強度的實時動態(tài)監(jiān)測對擴增產(chǎn)物進行定量分析，設(shè)定一定的熒光信號域值[12-13]。如果檢測到熒光信號超過域值，就被認(rèn)為是真正的信號，它可用于定義樣本的域值循環(huán)數(shù)Ct(C代表循環(huán)cycle,t代表域值threshold)。每個模板的Ct值與該模板的起始拷貝數(shù)的對數(shù)呈線性關(guān)系，起始拷貝數(shù)越大，Ct值越小[14]。利用已知起始拷貝數(shù)的標(biāo)準(zhǔn)品可作出標(biāo)準(zhǔn)曲線，只要獲得未知樣品的Ct值，即可從標(biāo)準(zhǔn)曲線上計算出該樣品的起始拷貝數(shù)[15]。

2012年3月，新疆脊灰實驗室與部分中國脊灰網(wǎng)絡(luò)實驗室的成員接受了由世界衛(wèi)生組織和中國疾病預(yù)防控制中心病毒所國家脊灰實驗室共同主辦的rRT-PCR型內(nèi)鑒定方法的培訓(xùn)，9月順利完成考核，取得了型內(nèi)鑒定實驗室的資質(zhì)，隨后，PV實時熒光定量RT-PCR方法便在中國脊灰網(wǎng)絡(luò)實驗室中普遍應(yīng)用并逐步發(fā)展?；诿绹鳤BI公司的7500型熒光定量RT-PCR儀完成的PV的熒光定量RT-PCR檢測方法包括型內(nèi)鑒定(ITD)rRT-PCR和疫苗衍生株(VDPV)篩查rRT-PCR。通過ITD rRT-PCR反應(yīng)可鑒別PV的Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ血清型，VDPV rRT-PCR反應(yīng)可鑒別其疫苗類似株(SL)、疫苗衍生株(VDPV)和野毒株(WPV)。

2　實時熒光定量RT-PCR方法的應(yīng)用和發(fā)展

實時熒光定量RT-PCR方法在脊灰實驗室網(wǎng)絡(luò)中應(yīng)用后經(jīng)歷了3次發(fā)展，從擴增條件的優(yōu)化到擴增試劑的發(fā)展，都體現(xiàn)了該方法經(jīng)過不斷的優(yōu)化和發(fā)展提高了PV型內(nèi)鑒定的準(zhǔn)確性、敏感性和快速性，同時也減少了PV的漏檢。方法2相比方法1，增加了逆轉(zhuǎn)錄階段的循環(huán)，雖然該方法擴增時間延長了，但卻增加了敏感性，Ct值明顯減小，且擴增曲線容易判斷；方法1和方法2的ITD rRT-PCR和VDPV rRT-PCR反應(yīng)條件各不相同。鑒于Ⅱ型WPV已在全球范圍內(nèi)消滅，因而方法3的試劑中去除了Ⅱ型WPV的引物和探針，同時增加了Ⅰ型WPV和Ⅲ型WPV的全球流行分支的鑒別引物和探針，使得PV的鑒別更加符合具體情況，同時，rRT-PCR反應(yīng)和VDPV rRT-PCR反應(yīng)在相同的條件下進行，進一步簡化了操作步驟。幾種方法的比較見表1。

表1　　PV實時熒光定量RT-PCR方法的發(fā)展

3　小　　結(jié)

中國脊灰實驗室網(wǎng)絡(luò)在應(yīng)用實時熒光定量RT-PCR方法之前，對PV的血清型鑒定采用血清中和定型試驗。通過中和試驗，可鑒定出PV的血清型，并可將混合血清型的病毒中和成單一血清型，但此法要求在敏感細胞中進行，操作繁瑣，耗時長，且無法判斷PV的基因型[16-18]。PV不斷發(fā)展的3種實時熒光定量RT-PCR檢測方法不需要提取核酸，只需直接將病毒分離物作為擴增反應(yīng)的模板，逆轉(zhuǎn)錄、擴增反應(yīng)和分析在完全閉管的條件下進行，有效防止了PCR產(chǎn)物的污染；分析過程由PCR儀完成，無需再進行電泳和紫外燈觀察，減少了操作步驟，提高了效率，同時也提高了檢測結(jié)果的可靠性[19-21]。病毒分離培養(yǎng)方法是PV等腸道病毒分離鑒定的金標(biāo)準(zhǔn)，此法繁瑣復(fù)雜且耗時長，所以不能用于臨床標(biāo)本的快速檢測[22]。實時熒光定量RT-PCR跟傳統(tǒng)病毒分離培養(yǎng)方法比較，具有快速、靈敏、特異的特點，但目前實時熒光定量RT-PCR方法仍無法取代病毒分離，只能作為病毒分離的輔助和補充手段。實時熒光定量RT-PCR反應(yīng)為了不漏檢任何1株VDPV，在增加檢測敏感性的同時，就導(dǎo)致了一定的假陽性率，尤其是Ⅱ型VDPV。方法2與方法1相比，反應(yīng)試劑相同，只是增加了擴增條件的逆轉(zhuǎn)錄循環(huán)，這導(dǎo)致了檢測的敏感性有所增加，但假陽性率也增高了，Ⅱ型VDPV假陽性率增高得尤為明顯；方法3對反應(yīng)試劑和擴增條件都進行了改良，Ⅰ型和Ⅲ型VDPV檢測的精確性大大提高了，檢測的30株Ⅰ型PV，已經(jīng)沒有VDPV的假陽性率，70株Ⅲ型PV其VDPV的假陽性率已經(jīng)降低到2.8%，Ⅱ型PV的VDPV假陽性率也明顯降低，但仍然高達42.4%，這可能與Ⅱ型PV的突變熱點較多，引物設(shè)計很難完全覆蓋所有的突變位點有關(guān)[23-24]。

目前實時熒光PCR定量分析技術(shù)，己成為公認(rèn)的最具應(yīng)用前景的靶模板拷貝數(shù)的定量分析技術(shù)，在基因表達、基因工程、藥物療效、病原體檢測和轉(zhuǎn)基因成分檢測等領(lǐng)域中得到廣泛應(yīng)用[25]。但PV的rRT-PCR方法需要繼續(xù)發(fā)展改良，以降低Ⅱ型VDPV的假陽性率，以便更加全面地適用于中國脊灰實驗室網(wǎng)絡(luò)。

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10.3969/j.issn.1673-4130.2016.18.038

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