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    過表達根瘤血紅蛋白基因?qū)钴S鏈霉菌那西肽產(chǎn)量的影響

    2016-10-14 05:06:51莫秋燕宋元達
    安徽農(nóng)業(yè)科學(xué) 2016年24期
    關(guān)鍵詞:活躍菌體孢子

    莫秋燕,宋元達

    (江南大學(xué)食品學(xué)院食品與健康研究中心,江蘇無錫 214122)

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    過表達根瘤血紅蛋白基因?qū)钴S鏈霉菌那西肽產(chǎn)量的影響

    莫秋燕,宋元達*

    (江南大學(xué)食品學(xué)院食品與健康研究中心,江蘇無錫 214122)

    [目的]采用過表達根瘤血紅蛋白基因改善活躍鏈霉菌的溶氧表達,以提高那西肽的產(chǎn)量。[方法]通過全基因組合成的方法得到根瘤菌血紅蛋白基因(sm),連接到整合型質(zhì)粒pIB139上,構(gòu)建表達載體pIB139-sm。通過大腸桿菌-鏈霉菌結(jié)合轉(zhuǎn)移的方法將sm基因整合到活躍鏈霉菌基因組上,通過PCR驗證各轉(zhuǎn)化子目的片段已整合到活躍鏈霉菌基因組上,并進行大量篩選得到重組菌株。[結(jié)果]經(jīng)SDS-PAGE和CO結(jié)合差示光譜分析,結(jié)果顯示,目的蛋白均已成功表達且具有相應(yīng)的蛋白活性。搖瓶培養(yǎng)結(jié)果顯示,SmfHb表達對菌體生長和那西肽產(chǎn)量有明顯的促進作用,過表達SmfHb的重組菌株那西肽產(chǎn)量達1 245.7 μg/mL,比原始菌株提高39.6%。[結(jié)論]過表達sm基因提高那西肽產(chǎn)量的作用優(yōu)于vhb。

    根瘤菌血紅蛋白;活躍鏈霉菌;那西肽

    那西肽是一種新型的動物飼料添加劑,對革蘭氏陰性菌有較強的抑菌作用[1],能增加動物的抗病能力,促進動物生長[2-3],提高飼料利用率,此外還具有水溶性差、在動物體內(nèi)無殘留的特點[4-6]。那西肽的主要產(chǎn)生菌為活躍鏈霉菌(Streptomycesactuosus),其在工業(yè)發(fā)酵過程常因菌絲內(nèi)的結(jié)球造成溶氧不足甚至發(fā)生自溶,導(dǎo)致發(fā)酵產(chǎn)量的降低[7]。

    細菌血紅蛋白屬于一類特殊的血紅蛋白類似蛋白。研究表明,細菌血紅蛋白參與改善氧在細菌體內(nèi)的輸送,以支持細胞在低氧環(huán)境下進行有氧代謝[8-11]。根瘤菌血紅蛋白(SmfHb)是一種新發(fā)現(xiàn)的黃素血紅蛋白[12]。目前對根瘤菌血紅蛋白的研究較少,但研究表明在變鉛青鏈霉菌中表達SmfHb能有效地提高其次生代謝產(chǎn)物放線紫紅素的產(chǎn)量[13]。筆者構(gòu)建表達SmfHb基因的工程菌株,以透明顫菌血紅蛋白(VHb)的表達作為對照,用過SmfHb的表達改善活躍鏈霉菌的溶氧環(huán)境,以期提高那西肽的產(chǎn)量,降低工業(yè)化生產(chǎn)成本。

    1 材料與方法

    1.1材料

    1.1.1培養(yǎng)基。斜面培養(yǎng)基:葡萄糖 4 g/L,麥芽糖1.3 g/L,酵母4 g/L,KNO31.0 g/L,K2HPO40.5 g/L,MgSO40.5 g/L,NaCl 0.5 g/L,微量元素A 10 mL/L,CaCO30.1 g/L,瓊脂 15 g/L,pH 6.8~7.0。種子培養(yǎng)基:葡萄糖40 g/L,玉米淀粉30 g/L,牛肉膏3 g/L,(NH4)2SO43 g/L,MnSO40.5g/L,pH 6.8~7.0。發(fā)酵培養(yǎng)基:玉米淀粉80 g/L,葡萄糖5 g/L,酵母提取物5 g/L,CaCO34 g/L,(NH4)2SO41 g/L,MnSO40.5 g/L,KNO30.5 g/L,pH 6.8~7.0。

    1.1.2儀器。EL3002型電子天平、EL204型分析天平、pH計購自METTER TOLE DO,PCR儀(T100 Thermal Cycler)、Power pac核酸電泳儀、Geldoc 2000凝膠成像儀購自Bio-Rad;Nano Drop 2000分光光度計、Legend Micro17型離心機、Legend Micro 21R型冷凍離心機、ST40R型冷凍離心機購自Thermo公司;漩渦振蕩器、磁力攪拌器購自IKA;真空冷凍干燥機購自LABCONCO;UV-VIS液相色譜儀購自島津公司。

    1.1.3菌株、質(zhì)粒與引物?;钴S鏈霉菌(Streptomycesactuosus)、E.colitop10、E.coliET12567(pUZ8002)、質(zhì)粒pIB139。試驗所用引物vhb-F:GTCCCATATGATGTTAGACCAGCAAACCAT,vhb-R:GTCCTCTAGATTATTCAACCGCTTGAG CGT;sm-F:GTCCCATATGATGCTCACTCAGAAGACCAAGG,sm-R:GTCCTCTAGATCACTCGGCAAACAGATCGG。

    1.2方法

    1.2.1重組質(zhì)粒pIB139-sm的構(gòu)建。根據(jù)NCBI中公布的sm和vhb核苷酸序列,采用全基因合成的方法得到基因sm,將合成的基因連入過度載體pUC57中,并進行測序基因驗證。將質(zhì)粒pIB139以XbaⅠ和NdeⅠ進行雙酶切,純化后,與基因sm片段連接并轉(zhuǎn)入大腸桿菌ET12567(pUZ8002)中,在含有安普霉素的LB平板上篩選陽性轉(zhuǎn)化子得到重組質(zhì)粒pIB139-sm。

    1.2.2結(jié)合轉(zhuǎn)移及驗證。吸取E.coliET12567(pUZ8002,pIB139-sm/pIB139-vhb)10 μL接種至5 mL LB(試管培養(yǎng),加入25 ng/mL氯霉素,50 ng/mL卡那霉素,30 ng/mL安普霉素)中,37 ℃搖床過夜培養(yǎng)。第2天按1∶100的比例接種至10 mL LB中,加入25 ng/mL氯霉素、50 ng/mL卡那霉素、30 ng/mL安普霉素,37 ℃培養(yǎng)至OD為0.4左右。收集菌體于4 ℃、5 000 r/min離心4 min,用預(yù)冷的10 mL LB洗滌2次,并用1 mL LB重懸,待用。

    向產(chǎn)孢子的茄子瓶中加入6 mL滅菌蒸餾水,用接種環(huán)將孢子全部刮下,并將孢子懸液全部轉(zhuǎn)移至50 mL滅菌離心管,重復(fù)2次。將收集的全部孢子懸液充分振蕩,使孢子分散,經(jīng)過一層紗布過濾,離心,去掉上清,將孢子(108個/mL)重懸于500 μL 2×YT培養(yǎng)基中,50 ℃水浴10 min刺激孢子萌發(fā),室溫自然冷卻。

    將500 μL大腸桿菌懸液和500 μL鏈霉菌孢子懸液充分混合,每50 μL涂一塊MS平板,總共20塊,置于28 ℃培養(yǎng)18 h。將1 mL萘啶酮酸(25 μg/mL)和1 mL安普霉素(30 μg/mL)加入18 mL滅菌蒸餾水中,每個平板加入1 mL溶液,重新鋪板,使得液體覆蓋整個平板,28 ℃繼續(xù)培養(yǎng)2 d直至轉(zhuǎn)化子出現(xiàn)。

    1.2.3轉(zhuǎn)化子的篩選驗證。隨機挑取選擇性平板上長出的單菌落菌絲于新的MS平板傳代3次,以驗證轉(zhuǎn)化子的穩(wěn)定性。穩(wěn)定遺傳的轉(zhuǎn)化子菌絲在斜面培養(yǎng)基上28 ℃培養(yǎng)5~7 d后收取孢子,調(diào)整孢子濃度為1×108個/mL,-20 ℃保存于20%甘油管中。保菌后將剩余菌體用接種棒收集并離心分離得到,并提取鏈霉菌基因組,以此為模板,以vhb-F/vhb-R和sm-F/sm-R為引物,PCR驗證目的片段是否整合到基因組中。

    1.2.4高效液相法檢測那西肽產(chǎn)量。色譜條件為色譜柱:Waters symmetry C18column,流速:乙腈-0.025%磷酸溶液(52/48),流速:1.0 mL/min,檢測波長:350 nm,柱溫:室溫,進樣量:10 μL。

    1.2.5轉(zhuǎn)化子的篩選驗證。隨機挑取選擇性平板上長出的單菌落菌絲于新的MS平板連續(xù)傳代3次,以驗證轉(zhuǎn)化子的穩(wěn)定性。穩(wěn)定遺傳的轉(zhuǎn)化子菌絲涂布于斜面培養(yǎng)基上,28 ℃培養(yǎng)5~7 d后收取孢子,調(diào)整孢子濃度為1×108個/mL,-20 ℃保存于20%甘油管中。用接種棒收集剩余菌體用布氏漏斗真空抽濾分離,并以活躍鏈霉菌總DNA為模板,分別以sm-F/sm-R和vhb-F/vhb-R為引物,PCR驗證目的片段是否整合到基因組中。反應(yīng)體系及擴增條件基本相同,其中,退火溫度為58 ℃,延伸時間為2 min,取PCR產(chǎn)物2 μL進行凝膠電泳檢測。

    1.2.6CO結(jié)合差示光譜。5 000 r/min離心10 min收集活躍鏈霉菌發(fā)酵液的菌絲體(如果菌絲體結(jié)團,可將菌絲體用玻璃勻漿器研磨破碎菌體小球),用蒸餾水離心洗滌數(shù)次,沉淀懸浮于10 mL pH 7.8磷酸緩沖液,將懸浮液置于冰上,用超聲波細胞破碎機超聲破碎30次(超聲處理10 s,停20 s,冰浴放置2 min,然后重復(fù)操作)。取樣在顯微鏡下觀察直至絲狀菌絲體消失、細胞碎片聚團即可(如果菌絲體破碎效率低,可采取反復(fù)凍融結(jié)合超聲破碎處理)。將超聲破碎液體于5 000 r/min離心5 min,去除細胞碎片。取上層裂解液5 mL,分別加入少量連二亞硫酸鈉。

    通入CO氣體10 min,以出發(fā)菌菌體破碎后的上層裂解液做參比,用分光光度計在420 nm處測定OD。

    1.2.7活躍鏈霉菌生物量的測定。用10 mL移液管吸取發(fā)酵液10 mL,1 000 r/min離心10 min。棄上清,沉淀用10 mL蒸餾水洗滌3遍后冷凍干燥,將得到的干菌體稱重,1 L發(fā)酵液中干菌體的重量即為菌體生物量。

    2 結(jié)果與分析

    2.1重組活躍鏈霉菌的PCR驗證重組質(zhì)粒pIB139-sm通過結(jié)合轉(zhuǎn)移的方法轉(zhuǎn)化活躍鏈霉菌,挑取9個單菌落穿斜面,并進行PCR驗證。同時,將空質(zhì)粒pIB139轉(zhuǎn)入活躍鏈霉菌中作為對照菌株。PCR驗證圖譜見圖1,由圖1可知,除泳道第1、5外其余均擴增出大小約為1 000 bp的片段,為S.actuosus/pIB139-sm陽性轉(zhuǎn)化子,說明成功構(gòu)建重組菌株。且導(dǎo)入空質(zhì)粒的對照菌株能在安普霉素培養(yǎng)基上生長,說明對照菌株已成功構(gòu)建。

    注:M.DNA Marker;1~9:S.actuosus/pIB139-sm轉(zhuǎn)化子;10.對照菌株。Note:M.DNA Marker;1-9.S.actuosus/pIB139-sm transformant;10.Control strains.圖1 重組菌株S.actuosus/pIB139-sm的PCR驗證Fig.1 Confirmation of strain S.actuosus/pIB139-sm by PCR

    2.2轉(zhuǎn)化子的篩選經(jīng)2輪篩選后,選取整合sm基因的重組鏈霉菌轉(zhuǎn)化子各10株分別標記為S1~S10。將所選轉(zhuǎn)化子傳斜面后進行搖瓶發(fā)酵,發(fā)酵液HPLC測定結(jié)果見表1。由表1可知,大多數(shù)重組轉(zhuǎn)化子的發(fā)酵效價升高,有約30%的菌株發(fā)酵效價與原始菌株的產(chǎn)量下降,各個轉(zhuǎn)化子之間那西肽產(chǎn)量差距較大。其原因:在接合轉(zhuǎn)移的熱激活過程、萌發(fā)過程以及多次的洗滌過程中對菌體細胞產(chǎn)生較為嚴重的損傷;質(zhì)粒上的整合位點是隨機的,這可能導(dǎo)致質(zhì)粒整合使得菌體的生長和次級代謝產(chǎn)物的合成受到影響。過表達vhb基因的鏈霉菌重組轉(zhuǎn)化子中有6株那西肽產(chǎn)量有所提高,其中,菌株V7增加明顯,可達127.4%。過表達根瘤菌血紅蛋白基因(sm)的鏈霉菌重組轉(zhuǎn)化子中有7株產(chǎn)量增加,其中,菌株S5那西肽產(chǎn)量是原菌株的132.1%。各個轉(zhuǎn)化子在連續(xù)傳代3次后,綜合考慮那西肽產(chǎn)量及菌株穩(wěn)定性,選取轉(zhuǎn)化子V7、S5用于后續(xù)研究,并命名為MG-1、MG-2。

    2.3重組菌株蛋白表達的SDS-PAGE分析將原始菌株及重組菌株S.actuosus/pIB139-vhb、S.actuosus/pIB139-sm在培養(yǎng)基中培養(yǎng)后,離心收集菌體并用液氮破碎細胞,制備蛋白電泳樣品,每個泳道中上樣的蛋白含量相同。

    表1 重組菌株轉(zhuǎn)化子篩選

    透明顫菌血紅蛋白(VHb)和根瘤菌紅血蛋白(SmfHb)的理論分子量大小分別為15.724和44.673 ku。由圖2可知,目的蛋白均有表達且大小與理論值相符,而對照菌株未發(fā)現(xiàn)相應(yīng)的條帶。

    圖2 重組活躍鏈霉菌蛋白質(zhì)表達Fig.2 Protein expression of reconbinant S.actuosus

    2.4重組菌株中細菌血紅蛋白活性分析SmfHb和VHb的蛋白活性采用一氧化碳結(jié)合差示光譜分析,CO與還原態(tài)的血紅蛋白結(jié)合后,在420 nm處有最大吸收值。將重組活躍鏈霉菌細胞破碎液的50%通入CO,以未通CO的破碎液為對照,采用紫外分光光度計在400~500 nm波長下進行掃描。結(jié)果發(fā)現(xiàn),重組菌株在420 nm處有特征吸收峰,而對照菌株在此處未出現(xiàn)此吸收峰,表明sm和vhb基因已在活躍鏈霉菌中表達出有生物活性的SmfHb和VHb蛋白(圖3)。

    圖3 活躍鏈霉菌細胞提取液的CO結(jié)合差示光譜Fig.3 CO binding difference spectrum of cell extracts from S.actuosus

    2.5重組鏈霉菌的生長及那西肽產(chǎn)量的分析重組菌株構(gòu)建成功后,在250 mL搖瓶中對原始菌株(WT)、對照菌株(CON)和重組菌株MG-1、MG-2于28 ℃、200 r/min培養(yǎng)7 d,結(jié)果見圖4。由圖4可知,SmfHb和VHb均對菌體的生長和那西肽的產(chǎn)量有明顯的促進作用,其中,過表達SmfHb的重組菌株MG-2那西肽產(chǎn)量達1 245.7 μg/mL,比原始菌株提高39.6%。雖然過表達VHb的重組菌株MG-1的生物量高于MG-2,但其那西肽產(chǎn)量卻略低于MG-2,且菌株MG-2單位質(zhì)量那西肽的產(chǎn)量達303.8 μg/mg,比原始菌株提高32.8%,而MG-1僅比原始菌株高2%。由此可知,VHb是通過提高活躍鏈霉菌的生物量來增加那西肽的產(chǎn)量,從而提高單位質(zhì)量那西肽的產(chǎn)量。

    導(dǎo)入空質(zhì)粒pIB139的對照菌株的那西肽產(chǎn)量與出發(fā)菌株無明顯差別,說明空質(zhì)粒pIB139本身并不會對菌株的生長及產(chǎn)量產(chǎn)生影響,故可在后期試驗中排除質(zhì)粒pIB139對那西肽產(chǎn)量的影響。

    圖4 重組菌株搖瓶培養(yǎng)的生物量(A)、那西肽產(chǎn)量(B)和生物量(C) Fig.4 Biomass(A),nosiheptideyield(B)andnosiheptide/biomass(C)inrecombinantstrainsundershake-flaskculture

    3 結(jié)論

    該試驗通過在活躍鏈霉菌中過表達vhb和sm細菌血紅蛋白基因,分別得到vhb、sm過表達菌株MG-1、MG-2以改善其在發(fā)酵過程中溶氧不足的問題。過表達sm基因的重組菌株MG-2的那西肽產(chǎn)量達1 245.7 μg/mL,比原始菌株提高39.6%。雖然過表達vhb的重組菌株MG-1的生物量高于MG-2,但MG-1的那西肽產(chǎn)量略低于MG-2,且菌株MG-2單位質(zhì)量那西肽的產(chǎn)量達303.8 μg/mg,比原始菌株提高32.8%,而MG-1僅比原始菌株高2%,說明過表達sm基因提高那西肽產(chǎn)量的作用優(yōu)于vhb。

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    Effects of Overexpressing Hemoprotein Gene fromSinorhizobiummelilotion Nosiheptide Yield ofStreptomycesactuosus

    MO Qiu-yan, SONG Yuan-da*

    (Food and Health Research Center, School of Food and Health, Jiangnan University, Wuxi, Jiangsu 214122)

    [Objective] To improve the dissolved oxygen expression ofStreptomycesactuosusby overexpressing hemoprotein Gene fromSinorhizobiummeliloti, and to enhance the yield of nosiheptide. [Method]Sinorhizobiummelilotihemoglobin gene (sm) was obtained through the whole gene synthesis method, which were cloned into the plasmid pIB139 to construct expression vectors pIB139-sm. The plasmid containingsmwas introduced intoStreptomycesactuosusthrough conjugal transfer betweenE.coliandStreptomces. The transformants were verified by PCR, and then were purified by several cycles of single-colony screen. [Result] The expression and activity of SmfHb was confirmed by SDS-PAGE and CO-difference spectrum analysis, respectively. Flask culture experiment results showed that the nosiheptide yield in SmfHb-overexpressing strain (1 245.7 μg/mL) was increased by 39.6% (P< 0.05) compared with the control strain (892.5 μg/mL). [Conclusion] Overexpressingsmgene is superior tovhbin enhancing the yield of nosiheptide yield.

    Sinorhizobiummeliloti;Streptomycesactuosus; Nosiheptide

    莫秋燕(1990- ),女,浙江杭州人,碩士研究生,研究方向:食品生物技術(shù)。*通訊作者,教授,博士,博士生導(dǎo)師,從事微生物功能脂質(zhì)研究。

    2016-04-25

    S 188

    A

    0517-6611(2016)24-157-03

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