陳魯杰,梁浩勤,賴露菊,趙宏偉,魏鎖成(西北民族大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅蘭州730030)
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不同培養(yǎng)條件對綿羊卵母細胞體外成熟和凋亡的影響
陳魯杰,梁浩勤,賴露菊,趙宏偉,魏鎖成*
(西北民族大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅蘭州730030)
摘要:目的,探討不同溫度和不同培養(yǎng)時間對綿羊卵母細胞體外培養(yǎng),成熟和凋亡的影響,選擇合適的溫度和培養(yǎng)時間為綿羊卵母細胞進行體外成熟提供技術(shù)支持。方法:在綿羊死亡30 min之內(nèi)取出卵巢4~6 h帶回實驗室,切割法收集卵母細胞。在5%CO2、飽和濕度等條件相同情況下,分別在36.0℃、37.0℃、37.5℃、38.0℃、38.5℃、39℃下培養(yǎng)24~26 h。實驗中獲得的結(jié)果數(shù)據(jù),采用t檢驗方法進行差異顯著性分析。結(jié)果:26 h的成熟率高于其他4個時間的成熟率,在培養(yǎng)22 h到26 h過程中,隨著培養(yǎng)時間的增加,卵母細胞的成熟率呈增高。但是在26 h過后,隨著培養(yǎng)時間增加,卵母細胞的成熟率呈遞減趨勢,至30 h卵母細胞的成熟率明顯低于22 h的成熟率。38.5℃時卵母細胞的成熟率最高,36℃是卵母細胞的凋亡率最高。卵母細胞成熟率的整體趨勢是隨著溫度的上升呈正相關(guān)。
關(guān)鍵詞:卵母細胞;成熟率;凋亡率;卵巢;體外培養(yǎng)
項目來源:西北民族大學(xué)研究生科研創(chuàng)新項目(編號:YCX14168)。
隨著胚胎工程技術(shù)的發(fā)展,對胚胎的需求量越來越大,如體外受精、轉(zhuǎn)基因、核移植、外源基因的倒入等均需要卵母細胞,而卵母細胞的成熟發(fā)育與胚胎有著緊密的聯(lián)系,卵母細胞的體外成熟技術(shù)日益受到重視[1]。Pincus等(1935)首先提出了卵母細胞的體外成熟(IVM),Edwards(1965)對動物的細胞進行了體外成熟研究。我國于1985年后20世紀(jì)80年代末期才開始研究家畜卵母細胞體外成熟培養(yǎng)技術(shù)。
21世紀(jì),對卵母細胞的體外成熟技術(shù)提出了更高要求,因為如果體外成熟技術(shù)不過關(guān),體外成熟卵母細胞質(zhì)量有問題,對以后哺乳動物體外受精、轉(zhuǎn)基因、核移植、外源基因的導(dǎo)入等會造成極大的影響。所以卵母細胞體外成熟培養(yǎng)體系的完善成了生物學(xué)家們最重視的科學(xué)技術(shù)。對綿羊卵母細胞體外成熟培養(yǎng)技術(shù)研究較晚也比較遲緩,導(dǎo)致培養(yǎng)技術(shù)缺乏。因此,開發(fā)和研究綿羊的卵巢卵母細胞體外成熟培養(yǎng)技術(shù),建立和完善一套完全在體外環(huán)境下快速生產(chǎn)和保存大量品質(zhì)優(yōu)良、價格低廉的卵母細胞的技術(shù)勢在必行。卵母細胞體外成熟培養(yǎng)受很多因素的影響,如:培養(yǎng)的時間、溫度、CO2濃度、濕度、培養(yǎng)基成分(如激素、生長因子等)、動物的年齡、卵巢采集的季節(jié)等。關(guān)于這些因素對卵母細胞的體外成熟的作用效果的研究不多見,雖然文獻記載單一因素的報道,但是多因素綜合作用的研究鮮見。
自從1878年德國科學(xué)家Scherk對家兔和豚鼠進行了體外受精的嘗試以來,許多的科學(xué)家對此進行了研究[1]。過去若干年里,人們?yōu)樘剿髟缙谂咛プ罴训捏w外培養(yǎng)系統(tǒng)做了大量工作[2]?,F(xiàn)在已應(yīng)用卵母細胞體外成熟(in vitromaturation,IVM)和體外受精技術(shù)體外生產(chǎn)胚胎[3]。經(jīng)過研究者不斷地努力已被世界各國實驗室所采用,并且已在世界上進行了商業(yè)性應(yīng)用(1987年在愛爾蘭建立的商業(yè)性卵子公司集團Ovamass Ltd.,主要生產(chǎn)肉牛、羊胚胎),產(chǎn)生了重大的經(jīng)濟效益[4,5]。目前,體外受精的各個步驟:卵母細胞的體外成熟、精子的體外獲能、卵母細胞的體外受精、受精卵的體外發(fā)育以及配子和胚胎的冷凍保存等,都可在體外進行[6]。哺乳動物早期胚胎體外培養(yǎng)效果已經(jīng)可以為胚胎生產(chǎn)產(chǎn)業(yè)化服務(wù),但是最適合卵母細胞體外生長發(fā)育的條件還沒有完全確定[7,8]。蘭州大尾羊是蘭州地區(qū)的特有羊品種,然而,蘭州大尾羊的數(shù)量目前只有3 000~4 000只,屬瀕危品種,被列入中國畜禽遺傳資源目錄和國家級畜禽種質(zhì)資源保存目錄。因此其數(shù)量遠遠不能滿足市場需求,養(yǎng)殖技術(shù)較落后,沒有形成規(guī)模,也還不是畜牧業(yè)養(yǎng)殖的支柱畜種,對當(dāng)?shù)剞r(nóng)民致富也沒有明顯的帶動作有,急需要改良,對其擴繁和保護已刻不容緩。通過超數(shù)排卵技術(shù)和胚胎移植技術(shù)的推廣應(yīng)用,可以提高繁殖能力和生產(chǎn)性能,提升產(chǎn)羔率,達到年產(chǎn)2胎,增加存欄量和出欄數(shù),力爭數(shù)量在5年內(nèi)翻一番,加快生長發(fā)育,增加產(chǎn)毛量,毛皮質(zhì)量明顯提高,具有廣闊的市場前景和顯著地經(jīng)濟效益[9]。
卵母細胞的體外培養(yǎng)是胚胎移植技術(shù)的關(guān)鍵步驟。但是,蘭州大尾羊卵母細胞體外保存的合適溫度還不清楚,培養(yǎng)的合適溫度還沒確定等一系列問題,對胚胎移植技術(shù)有一定影響。本研究就是為了解決此類問題。對蘭州大尾羊卵母細胞的體外培養(yǎng)進行進一步研究,為蘭州大尾羊胚胎移植技術(shù)中的卵母細胞體外培養(yǎng)提供理論基礎(chǔ)。
1.1材料
1.1.1實驗材料2~3歲成年綿羊卵巢,采自蘭州市小西湖馬忠華定點屠宰場。
1.1.2實驗試劑與藥品NaCl,KCl,CaCl·2H2O,KH2PO4,MgCl2·2H2O,Na2HPO4·12H2O,NaHCO3,丙酮酸鈉,葡萄糖,青霉素,鏈霉素,M199,LH(促黃體素,規(guī)格:4μg×10支),F(xiàn)SH(促卵泡素,規(guī)格:100單位×10支),E2(雌二醇,規(guī)格:4 mg×10支)三種激素均為寧波市三生藥業(yè)有限公司產(chǎn)品,發(fā)情羊血清。
1.1.3主要儀器設(shè)備體視顯微鏡(LEICA DMIL產(chǎn)自北京悅昌行科技有限公司);倒置顯微鏡(LEICA S8APO產(chǎn)自北京悅昌行科技有限公司);超凈工作臺(產(chǎn)自蘇州智凈凈化設(shè)備有限公司);CO2培養(yǎng)箱(STIK,型號IL- 161CT產(chǎn)自施都凱儀器設(shè)備(上海)有限公司);電子天天平(FA2004N產(chǎn)自上海精密科學(xué)儀器有限公司);恒溫水浴鍋(上海精宏實驗設(shè)備限公司);高壓滅菌鍋(上海博訊實業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠);一次性培養(yǎng)皿(35 mm×10 mm);吸胚針;注射器及手術(shù)刀等。
1.1.4培養(yǎng)液的配制雙抗(P/S)制備:青霉素160萬單位,加上80 ml的超純水,變成青霉素2萬單位/ml;鏈霉素100萬單位,加上50 ml的超純水,變成鏈霉素2萬單位/ml;青霉素和鏈霉素各取50 ml,再用超純水稀釋100倍,使得培養(yǎng)基中每毫升青霉素鏈霉素100個單位。
PBS液:NaCl 800 mg/100 ml,KCl 20 mg/100ml,CaCl2取13 mg/100ml,MgCl2取10 mg/100 ml,磷酸氫二鈉289.8 mg/ml,丙酮酸鈉3.6 mg/100 ml,C6H1206取5.56 mmol/L,定容至100 ml的超純水中,用一次性過濾器過濾除菌后,放置4℃冰箱內(nèi)保存,以待備用。
M199基礎(chǔ)液:M199 0.22 g,NaHCO30.95 g,三蒸水定容100 ml。用0.4 μm的過濾器過濾除菌,4℃保存。
洗卵液(撿卵液):M199基礎(chǔ)液99 ml,丙酮酸鈉0.22 μg/ml,1%雙抗。用0.4 μm的過濾器過濾除菌,4℃保存。
發(fā)情羊血清(ESS)的制備:從甘肅省臨夏市和政縣泰祥三谷產(chǎn)業(yè)園采回發(fā)情羊血清,血樣必須在于4℃冰箱內(nèi)放置1~2h后,再用離心機用2 500 r/min的轉(zhuǎn)速離心20 min,取其中的血清。將分離好的血清在56℃條件下,滅活30 min,最后進行過濾分裝。
成熟液:M199基礎(chǔ)液8 ml,LH(促黃體素)50 μg,F(xiàn)SH(促卵泡素)5 μg,E2(雌二醇)10(取1 ml用三蒸水稀釋20倍,取1 ml),發(fā)情羊血清1 ml,雙抗0.1 ml。用0.4 μm的過濾器過濾除菌,4℃保存。
1.2方法
1.2.1綿羊卵巢的采集在綿羊宰殺30 min之內(nèi)取出卵巢,放入事先準(zhǔn)備好的裝有35~37℃的含有0.9%的青、鏈霉素的生理鹽水的保溫瓶中,4~6 h內(nèi)帶回實驗室進行實驗。卵巢置于含青、鏈霉素的35~37℃生理鹽水的培養(yǎng)皿中,用滅菌的37℃的生理鹽水沖洗卵巢2~3遍,剔除卵巢表面及周圍的脂肪、結(jié)締組織和系膜。一只手持鑷子固定卵巢,另一手拿眼科剪將卵巢表面的卵泡剪破,使卵泡液流出。較小的卵泡則將其所在卵巢表面剪碎,但不完全剪碎卵巢,盡可能地減少組織塊。最后再用PBS液沖洗剪碎的卵巢表面,使附著在上面的卵母細胞流入PBS液中。然后靜置1~2 min后在體視顯微鏡下用吸胚針進行撿卵。
1.2.2卵母細胞的收集卵巢經(jīng)過處理后用切割法收集卵母細胞。在倒置顯微鏡下用吸胚針挑出卵丘細胞層完整、包裹致密,卵母細胞胞質(zhì)顏色均勻的卵丘——卵母細胞復(fù)合體(cumulus- oocyte- complexes,COCs)用于體外成熟培養(yǎng)。COCs在洗卵液中清洗3~4遍。最后,從洗卵液中把COCs移至預(yù)平衡2~4h的微滴中培養(yǎng)。
1.2.3卵母細胞的分級標(biāo)準(zhǔn)將不同采集方法收集到的卵泡液置于體視顯微鏡下進行觀察,收集卵母細胞,并對收集到的卵母細胞進行分級評價。根據(jù)包被卵母細胞的卵丘細胞完整性、卵丘細胞層數(shù)以及卵母細胞的胞質(zhì)均勻性將卵母細胞分為4級:A級,卵丘細胞三層以上,胞質(zhì)均勻;B級,1~2層卵丘細胞,胞質(zhì)均勻;C級,裸卵或卵丘細胞不完整;D級是死亡退化的卵母細胞。A/B級卵母細胞為可用的卵母細胞。
1.2.4綿羊卵母細胞體外成熟培養(yǎng)本實驗采用微滴培養(yǎng)方法:取一35 mm培養(yǎng)皿,先在培養(yǎng)皿中用成熟培養(yǎng)液做成80 μl的微滴,每個培養(yǎng)皿均勻分布4~5滴;然后加入1 ml滅菌石蠟油均勻覆蓋住微滴,在培養(yǎng)箱中平衡2h以上。COCs洗凈后穿破石蠟油放入微滴中,每微滴培養(yǎng)卵母細胞15~30枚左右,數(shù)量過多或過少均會影響卵母細胞的體外成熟。
在38.5℃、5%CO2、飽和濕度條件下培養(yǎng)。培養(yǎng)一定時間后,用透明質(zhì)酸將COCs經(jīng)移液槍反復(fù)吹打分離卵母細胞及卵丘細胞,并用PBS清洗2~3遍收集卵母細胞,看第一極體排出的情況。卵母細胞成熟的一個重要指標(biāo)就是卵丘細胞的擴散,將卵母細胞成熟后的卵丘細胞擴散程度分為4級(圖1)。
圖1 電鏡下的卵母細胞a:1級;b:2級;c:3級(10×10).
1.2.5實驗設(shè)計實驗一為在5%CO2濃度與飽和濕度等條件相同情況下,分別在36.0℃、37.0℃、37.5℃、38.0℃、38.5℃、39℃下培養(yǎng)24~26 h。
實驗二是在5%CO2濃度與培養(yǎng)溫度(38.5℃)相同條件下,培養(yǎng)22 h、24 h、26 h、28 h和30 h。
最后放在透明質(zhì)酸酶中反復(fù)吹打去除顆粒細胞,并用PBS液清洗2~3遍收集卵母細胞,統(tǒng)計第一極體的排出情況。
1.2.6成熟卵母細胞的判定卵細胞的成熟包括核成熟和胞漿成熟。第一極體的排出是卵母細胞體外培養(yǎng)成熟的標(biāo)志,也是細胞核成熟的標(biāo)志,胞質(zhì)成熟的是以卵丘細胞擴散為標(biāo)志。
細胞核成熟的判定方法:卵母細胞成熟培養(yǎng)20~24 h后,挑選卵丘層擴散良好的COCs,放在含有0.3% BSA(Sigma)的HEPES- TALP液中,旋渦振蕩5 min,徹底去除卵丘細胞,在體視鏡下觀察第一極體排出情況。取部分卵放到四角滴有石蠟油:凡士林(1∶9)的載玻片上,加蓋玻片,在顯微鏡下邊觀察邊逐漸輕輕向下壓,直到卵胞質(zhì)充滿卵腔為止。放入無水乙醇:冰乙酸(3∶1)固定液中固定24 h以上,再用1%的醋酸地衣紅(45%醋酸配制)染色1~2 min,倒置顯微鏡下觀察卵母細胞核形態(tài)。
圖2 成熟前后不同時期的綿羊卵母細胞A.綿羊未成熟卵母細胞(×100),周圍有3~4層顆粒細胞包裹,同時有一薄層完整的透明帶形成;B.綿羊成熟卵母細胞(×100),完成第二次減數(shù)分裂,顆粒細胞層明顯膨大,以卵母細胞為中心呈放射狀向四周擴散;C.排出第一極體的綿羊卵母細胞(×200),透明帶明顯增厚,細胞核被擠到一邊,第一極體排出。
1.2.7結(jié)果統(tǒng)計實驗中獲得的結(jié)果數(shù)據(jù),采用t檢驗方法進行差異顯著性分析。
1.3實驗結(jié)果
表1 培養(yǎng)條件綿羊卵母細胞體外成熟的影響
卵母細胞培養(yǎng)不同時間后的成熟率見表1和圖2。26 h的成熟率高于其他4個時間的成熟率,在培養(yǎng)22 h 到26 h過程中,隨著培養(yǎng)時間的增加,卵母細胞的成熟率呈增高。但是在26 h過后,隨著培養(yǎng)時間增加,卵母細胞的成熟率呈遞減趨勢,至30 h卵母細胞的成熟率明顯低于22 h的成熟率。
圖3 培養(yǎng)溫度與卵母細胞成熟率和凋亡率
根據(jù)表1和圖2均顯示培養(yǎng)溫度越高,細胞成熟率越高。經(jīng)過許多研究證明,產(chǎn)生這種情況的原因主要是由于細胞內(nèi)活性物質(zhì)的活性決定的。在動物正常的生理溫度范圍內(nèi),卵母細胞的代謝強度與溫度成正比,溫度升高,酶、激素等活性物質(zhì)的活性也隨之升高,細胞代謝也增強,成熟率就會升高。但是溫度過高或過低均會影響卵母細胞的生長和成熟。當(dāng)溫度過高到達一定限度時會導(dǎo)致酶、激素等的失活,同時會破壞細胞膜的結(jié)構(gòu),導(dǎo)致滲透性改變,甚至引起細胞死亡[10]。當(dāng)溫度略低于正常溫度時,對卵母細胞沒有重大影響,但是會引起細胞內(nèi)活性物質(zhì)的活性降低,細胞代謝減弱,導(dǎo)致卵母細胞的生長發(fā)育受到抑制,所以產(chǎn)生了36~37.5℃的成熟率較低的情況。實驗結(jié)果顯示綿羊在39.0℃時成熟率最高,可能是細胞內(nèi)的各種酶和激素等物質(zhì)的活性最強,細胞代謝旺盛,所以成熟率最高。經(jīng)過查證大量資料顯示在培養(yǎng)溫度高于綿羊正常體溫時,由于破壞了細胞結(jié)構(gòu),細胞成熟率會降低。所以反證本實驗培養(yǎng)溫度越高,細胞成熟率越高;39.0℃在綿羊正常體溫范圍(38.3~39.9℃)內(nèi)成熟率最高,符合以前的研究成果。
適宜的培養(yǎng)溫度是哺乳動物卵母細胞體外成熟培養(yǎng)成功的一項重要因素,然而不同的哺乳動物卵母細胞培養(yǎng)的最適溫度也不相同。經(jīng)Lenz(1983)研究顯示牛卵母細胞對溫度的敏感性很強,Wang通過組合實驗證明在38~39℃是牛的卵母細胞體外成熟的最適溫度。Eng(1986)指出豬的卵母細胞在39℃下體外培養(yǎng)成熟率比在37℃下高。戴榮亮等人也證實了體外培養(yǎng)溫度在山羊正常體溫(38.5~39.7℃)范圍內(nèi)變動,對卵母細胞成熟率無顯著影響[11]。本實驗證實,只要在綿羊正常體溫范圍(38.3~39.9℃)內(nèi)變動,則對成熟率無顯著影響,符合以前的研究成果。雖然在實際生產(chǎn)活動中的培養(yǎng)環(huán)境遠遠不如實驗室嚴(yán)密和完備,但是只要控制在綿羊的正常生理溫度范圍內(nèi),卵母細胞的成熟率是可以保證。
2.1不同溫度對綿羊卵母細胞的體外成熟影響
適宜的培養(yǎng)溫度是成功進行卵母細胞體外成熟培養(yǎng)的重要因素,然而不同的哺乳動物卵母細胞培養(yǎng)的最適溫度也不相同。在這項研究中,卵母細胞的成熟率,隨著培養(yǎng)溫度從36.0℃升至38.5℃,逐漸增加。最大的成熟率和最小細胞凋亡率在38.5℃時出現(xiàn)。許多研究證明,產(chǎn)生這種情況的原因主要是由于細胞內(nèi)活性物質(zhì)的活性決定的。在動物正常的生理溫度范圍內(nèi),卵母細胞的代謝強度與溫度成正比,溫度升高,酶、激素等活性物質(zhì)的活性也隨之升高,細胞代謝也增強,成熟率就會升高。但是溫度過高或過低均會影響卵母細胞的生長和成熟。當(dāng)溫度過高到達一定限度時會導(dǎo)致酶、激素等的失活,同時會破壞細胞膜的結(jié)構(gòu),導(dǎo)致滲透性改變,甚至引起細胞死亡[10]。有實驗結(jié)果顯示綿羊在39.0℃時成熟率最高。戴榮亮等證實生理體溫(38.5~39.7℃)范圍內(nèi)變動對山羊卵母細胞體外成熟率無顯著影響[12]。綿羊母細胞體外成熟率在正常體溫范圍(38.3~39.9℃)也無明顯差異[10]。Eng等研究發(fā)現(xiàn),39℃時豬卵母細胞的成熟率為71.0%,37℃時為35%。劉靈39℃時培養(yǎng)山羊卵母細胞,獲得79.4%的成熟率。張涌等在38.5℃的條件下培養(yǎng)山羊卵母細胞,成熟率為68.4%[12]。
2.2培養(yǎng)時間對卵母細胞體外成熟培養(yǎng)的影響
徐燕霞等(2014)報道培養(yǎng)20 h的卵母細胞的成熟率為57.8%,培養(yǎng)22 h的成熟率為63.6%,培養(yǎng)24 h 為64.4%,培養(yǎng)26h為72.5%,培養(yǎng)20 h和22 h的成熟率差異顯著;培養(yǎng)20 h和24 h、26 h的成熟率差異極顯著;培養(yǎng)22 h和24 h成熟率差異不顯著;培養(yǎng)24 h和26 h差異極顯著。隨著培養(yǎng)時間的延長,卵母細胞的成熟率在提高,但是時間太長,卵母細胞就會老化,不利于卵母細胞的體外受精。王超(2007)和楊志杰等(2008)的研究結(jié)果顯示培養(yǎng)24 h、26 h的卵母細胞成熟率顯著高于18 h和20 h的。呂麗華等(2009)研究了山羊培養(yǎng)24 h、27 h、30 h后卵母細胞的成熟率,結(jié)果顯示培養(yǎng)27 h卵母細胞成熟率顯著高于其他2組。不同物種卵母細胞成熟時間不同,牛卵母細胞需要24 h就成熟,但是豬卵母細胞的成熟需要培養(yǎng)42~48 h。卵母細胞體外培養(yǎng)時間對卵母細胞的成熟及其之后的體外受精和早期胚胎的發(fā)育非常重要,卵母細胞培養(yǎng)時間太短不易成熟,但是時間太長容易造成卵母細胞透明帶硬化,從而不適合受精。因此卵母細胞的成熟培養(yǎng)時間對卵母細胞的成熟和體外受精非常重要,具有深遠的意義。本試驗結(jié)果說明,綿羊的卵母細胞培養(yǎng)22~24 h成熟率高且利于體外受精。
試驗結(jié)果表明,用切卵法收集卵母細胞之后,在5%CO2,培養(yǎng)26 h,飽和濕度的條件下培養(yǎng)溫度38.5℃時綿羊卵母細胞的成熟率最高、凋亡率最低。在5% CO2,培養(yǎng)溫度38.5℃,飽和濕度的條件下培養(yǎng)26 h時綿羊卵母細胞的成熟率是37.3%最高,凋亡率是25.4%最低。
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(編輯:高真貞)
中圖分類號:S814.4
文獻標(biāo)識碼:B
文章編號:1006- 799X(2016)05- 0076- 05
作者簡介:陳魯杰(1986-),男,河南商水人,在讀碩士研究生,主要從事動物醫(yī)學(xué)生殖技術(shù)研究。
通訊作者:魏鎖成(1962-),男,甘肅甘谷人,教授,主要從事動物生殖生物技術(shù)的教學(xué)和科研工作。