楊柳曉, 高 強(qiáng)
1.復(fù)旦大學(xué)附屬中山醫(yī)院重癥醫(yī)學(xué)科, 上?!?00032 2.復(fù)旦大學(xué)附屬中山醫(yī)院肝外科, 上海 200032
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·論著·
肝內(nèi)膽管細(xì)胞癌相關(guān)成纖維細(xì)胞的分離、純化及鑒定
楊柳曉1, 高強(qiáng)2*
1.復(fù)旦大學(xué)附屬中山醫(yī)院重癥醫(yī)學(xué)科, 上海200032 2.復(fù)旦大學(xué)附屬中山醫(yī)院肝外科, 上海200032
[摘要]目的: 探討肝內(nèi)膽管癌相關(guān)成纖維細(xì)胞(iCAFs)的分離、純化和鑒定方法,為后續(xù)研究奠定基礎(chǔ)。方法: 在無(wú)菌條件下,留取肝內(nèi)膽管細(xì)胞癌(iCCA)組織標(biāo)本,充分剪碎后置入含Ⅳ型膠原酶和透明質(zhì)酸酶的消化液中恒溫振蕩,將所得的單細(xì)胞懸液進(jìn)行免疫磁珠分選純化,分離出腫瘤相關(guān)成纖維細(xì)胞(CAFs)并培養(yǎng)。通過(guò)觀察細(xì)胞形態(tài),并經(jīng)免疫熒光和流式細(xì)胞儀測(cè)定,鑒定其是否為iCAFs。結(jié)果: iCAFs呈長(zhǎng)條形或紡錘形,胞質(zhì)透明,折光明顯,胞核單個(gè)、呈圓形或卵圓形, 細(xì)胞突起相互交錯(cuò)重疊形成網(wǎng)格狀排列、密集時(shí)呈現(xiàn) “峰-谷”樣表現(xiàn);免疫熒光檢測(cè)顯示,α平滑肌肌動(dòng)蛋白(+)、波形蛋白(+)、復(fù)合型角蛋白抗體(-);流式細(xì)胞儀檢測(cè)示,α平滑肌肌動(dòng)蛋白(+),同時(shí)CD34和CD45均為(-)。結(jié)論: 酶消化法聯(lián)合免疫磁珠分選可有效分離出高純度的iCAFs,為進(jìn)一步研究iCAFs的相關(guān)功能研究提供了良好的平臺(tái)。
[關(guān)鍵詞]肝內(nèi)膽管細(xì)胞癌;腫瘤相關(guān)成纖維細(xì)胞;分離;鑒定
腫瘤微環(huán)境中的成纖維細(xì)胞被活化后可以通過(guò)自分泌和(或)旁分泌途徑為上皮提供促癌信號(hào)、參與腫瘤血管的形成,促進(jìn)腫瘤侵襲轉(zhuǎn)移[1]。這類具有特殊表型及功能、存在于腫瘤間質(zhì)中的成纖維細(xì)胞群即被稱為腫瘤相關(guān)成纖維細(xì)胞(carcinoma-associated fibroblasts, CAFs)。研究[2]證實(shí),CAFs的聚集和活化可以影響多種實(shí)體腫瘤的發(fā)生、發(fā)展及侵襲。肝內(nèi)膽管細(xì)胞癌(intrahepatic cholangiocarcinoma, iCCA)是一種具有豐富間質(zhì)成分的原發(fā)性肝癌,其腫瘤間質(zhì)中富含的CAFs與肝內(nèi)膽管細(xì)胞癌的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)[3]。為能進(jìn)一步研究iCCA相關(guān)成纖維細(xì)胞(iCAFS)的生物學(xué)特性和影響腫瘤的機(jī)制,原代iCAFs的分離純化和培養(yǎng)擴(kuò)增是必要的。目前國(guó)內(nèi)外對(duì)CAFs的分離主要采用組織塊貼壁法和酶消化法。本研究采用酶消化法聯(lián)合免疫磁珠分選進(jìn)行原代iCAFs的分離、純化及培養(yǎng),證實(shí)具有可重復(fù)性及高純度獲得iCAFs的優(yōu)勢(shì),有助于后續(xù)實(shí)驗(yàn)的進(jìn)行,現(xiàn)報(bào)告如下。
1材料與方法
1.1主要儀器及試劑Ⅳ型膠原酶購(gòu)自美國(guó)Invitrogen公司、透明質(zhì)酸酶和牛血清蛋白(BSA)購(gòu)自美國(guó)Sigma公司;胎牛血清(FBS)、高糖DMEM培養(yǎng)液、0.25%胰蛋白酶、雙抗(青霉素、鏈霉素100 mg/L)、1×磷酸鹽緩沖液(PBS)等購(gòu)自美國(guó)Gibco公司;免疫組化及免疫熒光抗體α平滑肌肌動(dòng)蛋白(α-SMA)、波形蛋白(vimentin)、復(fù)合型角蛋白抗體(pan-CK)購(gòu)自英國(guó)Abcam公司,4’,6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)和二抗購(gòu)自上海碧云天生物技術(shù)有限公司;流式細(xì)胞實(shí)驗(yàn)用α-SMA-FITC、CD34-PE和CD45-APC抗體購(gòu)自美國(guó)R&D公司;免疫磁珠分選儀及anti-fibroblast MicroBeads試劑盒(130050601)購(gòu)自德國(guó)美天旎生物技術(shù)有限公司。
1.2標(biāo)本來(lái)源及采集用于原代分離的腫瘤標(biāo)本來(lái)自iCCA根治性切除的患者。在標(biāo)本手術(shù)切除離體后15 min內(nèi),用無(wú)菌手術(shù)刀片切取體積大于1 cm3的組織塊,盡量選取活性好、典型的腫瘤區(qū)域,避開(kāi)壞死、出血區(qū)域及血管,置于含DMEM+1%雙抗的50 mL離心管內(nèi),于4℃條件轉(zhuǎn)移至實(shí)驗(yàn)室。
1.3細(xì)胞分離及純化
1.3.1細(xì)胞酶消化法分離在超凈臺(tái)中,用含有雙抗的PBS液反復(fù)漂洗癌組織標(biāo)本多次,以去除血細(xì)胞;待沖洗液清亮后,用眼科剪修剪掉其他組織及肉眼可見(jiàn)的血管結(jié)構(gòu);用無(wú)菌手術(shù)刀片及眼科剪機(jī)械法將組織塊盡量剪碎至<1 mm3,置于預(yù)先配制好的消化液(DMEM+0.1%BSA+1%雙抗+500 U/mL Ⅳ型膠原酶+100 U/mL透明質(zhì)酸酶,用0.22 μm孔徑一次性無(wú)菌抽濾器過(guò)濾除菌)中,注意將組織完全浸沒(méi),于37℃恒溫振蕩儀內(nèi)振蕩30 min(200 次/min)。消化后經(jīng)過(guò)400目篩網(wǎng)過(guò)濾,將濾液離心(800×g, 5 min)以分離上皮細(xì)胞和成纖維細(xì)胞,棄去沉淀的細(xì)胞團(tuán),將含有成纖維細(xì)胞的上清懸液再離心(100×g,10 min),得到的沉淀細(xì)胞團(tuán)用DMEM反復(fù)漂洗2~3次,重懸再離心(300×g,10 min)后進(jìn)行免疫磁珠分選。
1.3.2細(xì)胞免疫磁珠分選純化將分離所得細(xì)胞計(jì)數(shù)后,以每107個(gè)重懸于80 μL分選緩沖液中,加入20 μL的anti-fibroblast磁珠抗體,充分混合后避光置于室溫(19~25℃)孵化30 min。用1~2 mL的分選緩沖液重懸后再離心(300×g,10 min),所得細(xì)胞團(tuán)重懸于500 μL的分選緩沖液中,按照免疫磁珠分選說(shuō)明書(shū),使用免疫磁珠分選器及LS柱進(jìn)行陽(yáng)性細(xì)胞的分選純化。純化后的細(xì)胞用培養(yǎng)液(DMEM+10%FBS+1%雙抗)重懸后置于25 mL培養(yǎng)瓶,常規(guī)培養(yǎng)、傳代。
1.4細(xì)胞鑒定
1.4.1形態(tài)學(xué)觀察使用倒置相差顯微鏡每日觀察細(xì)胞的貼壁情況,貼壁后的生長(zhǎng)狀況及形態(tài)變化。
1.4.2免疫熒光檢測(cè)將已消毒的24 mm×24 mm蓋玻片置于細(xì)胞培養(yǎng)六孔板的培養(yǎng)孔中,按1×105個(gè)/mL的細(xì)胞密度將細(xì)胞接種于培養(yǎng)孔中進(jìn)行細(xì)胞爬片,2 d后進(jìn)行免疫熒光鑒定。除去培養(yǎng)液,用PBS(1 mL/孔)漂洗3次(每次5 min);加入1 mL 4%多聚甲醛(用PBS配制),室溫固定30 min,PBS洗3次(每次5 min);加入0.5% TritonX-100(用PBS配制)室溫孵育20 min,PBS洗3次(每次5 min);加入5%山羊血清室溫封閉30 min,去除血清,加一抗(α-SMA、vimentin、pan-CK),4℃過(guò)夜,PBS洗3次(每次5 min);加熒光二抗(1∶1 000)室溫反應(yīng)30 min,PBS洗3次(每次5 min);DIPA染核,加熒光封片液封片,于熒光顯微鏡下觀察。
1.4.3流式細(xì)胞儀檢測(cè)將分離培養(yǎng)的細(xì)胞制備成1×106個(gè)/mL的懸液,加入1 mL破膜固定液于4℃遮光孵育30~60 min,離心重懸,經(jīng)BSA封閉后加入流式抗體(α-SMA-FITC、CD34-PE、CD45-APC及同型對(duì)照)混勻,于4℃冰箱孵育20~30 min后,混勻離心棄上清,重懸后上機(jī)檢測(cè)。
2結(jié)果
2.1細(xì)胞形態(tài)及傳代將分離的細(xì)胞接種于25 mL培養(yǎng)瓶1~2 h后即可見(jiàn)貼壁,初始貼壁細(xì)胞常為圓形;24~48 h后逐漸伸展成長(zhǎng)條形,胞膜同時(shí)形成多個(gè)大小不一的突起,胞質(zhì)透明,折光明顯,胞核單個(gè)、呈圓形或卵圓形(圖1A);此后這些突起不斷向周邊延伸擴(kuò)展,并相互交錯(cuò)重疊形成網(wǎng)格狀排列(圖1B);當(dāng)細(xì)胞鋪滿培養(yǎng)瓶時(shí),顯微鏡下呈現(xiàn)典型的“峰-谷”樣表現(xiàn)(圖1C)。初代培養(yǎng)需每2~3 d更換培養(yǎng)液,通常經(jīng)過(guò)1周左右即可傳代;第3代以后細(xì)胞增殖迅速,3~4 d即可傳代。細(xì)胞所能傳的代數(shù)受供體個(gè)體差異影響較大。
圖1 顯微鏡下iCAFs的形態(tài)A:生長(zhǎng)第2天的iCAFs(100×);B: 生長(zhǎng)第10天的iCAFs (100×);C:生長(zhǎng)第10天的iCAFs (40×)
2.2細(xì)胞免疫熒光染色特點(diǎn)將分離的細(xì)胞進(jìn)行免疫熒光染色,由圖2可見(jiàn),細(xì)胞形態(tài)如前所述,pan-CK染色陰性,排除其上皮來(lái)源的可能性;而α-SMA和vimentin染色強(qiáng)陽(yáng)性,高倍鏡下可見(jiàn)細(xì)胞質(zhì)內(nèi)條索狀纖維組織染色均勻,胞核清晰完整。Vimentin染色陽(yáng)性通常提示細(xì)胞來(lái)源于間葉組織,而α-SMA是CAFs的特征性標(biāo)志物。
2.3流式細(xì)胞儀鑒定結(jié)果用流式細(xì)胞儀檢測(cè)分離培養(yǎng)的細(xì)胞α-SMA、 CD34、 CD45的表達(dá)情況。細(xì)胞主要表現(xiàn)為α-SMA(+)、同時(shí)CD34(-)和CD45(-)的特征。以同型對(duì)照為參照,α-SMA陽(yáng)性表達(dá)的細(xì)胞達(dá)99.1%,提示其成纖維細(xì)胞的特征;而CD34和CD45基本不表達(dá),證明其不是來(lái)源于內(nèi)皮和(或)髓源性細(xì)胞系(圖3)。
圖2 iCAFs免疫熒光染色的結(jié)果
圖3 iCAFs流式細(xì)胞檢測(cè)結(jié)果A:設(shè)門圈定檢測(cè)的iCAFs細(xì)胞,F(xiàn)SC為前向角度散射,SSC為側(cè)向角散射;B:iCAFs表現(xiàn)為α-SMA(+)CD45(-);C:iCAFs表現(xiàn)為α-SMA(+)CD34(-)
3討論
3.1CAFs分離純化的方法CAFs是腫瘤微環(huán)境重要的組成成分之一,其與腫瘤細(xì)胞之間的相互作用可以影響腫瘤的發(fā)生、發(fā)展及預(yù)后。一般認(rèn)為,CAFs具有促進(jìn)腫瘤生長(zhǎng)、侵襲及轉(zhuǎn)移的能力[2]。但由于其來(lái)源及構(gòu)成的多樣性,目前也有研究者認(rèn)為其功能存在異質(zhì)性,甚至具有抑制腫瘤的作用[4-6]。而針對(duì)iCAFs的研究也正從功能研究深入至iCCA靶點(diǎn)治療等方面[7]。為進(jìn)一步了解iCAFs影響腫瘤的作用機(jī)制,原代iCAFs的分離純化和培養(yǎng)擴(kuò)增是必要的。
目前,常見(jiàn)的CAFs的原代分離方法有組織塊貼壁法和酶消化法。組織塊貼壁法是將腫瘤組織剪碎成小塊狀,貼于培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)皿壁上,加入適量培養(yǎng)基,待細(xì)胞從組織塊邊緣慢慢爬出。此方法簡(jiǎn)便易行,無(wú)需特殊的試劑和材料,便于推廣。但也存在如下缺點(diǎn)[8]:(1)周期長(zhǎng),細(xì)胞從組織塊邊緣爬出一般需要10~15 d,同時(shí)剛爬出的細(xì)胞擴(kuò)增能力差,3~4周左右才能長(zhǎng)滿瓶底;(2)純度差,在細(xì)胞爬出過(guò)程中,會(huì)摻雜有其他種類細(xì)胞;(3)效率低,成功率僅約60%。
酶消化法是將腫瘤組織碾碎后,添加各種消化酶,經(jīng)過(guò)振蕩消化,將細(xì)胞從組織中分離出來(lái)形成單細(xì)胞懸液,再進(jìn)行過(guò)濾、離心、接種的方法。此方法相較于組織塊貼壁法具有周期短、重復(fù)性強(qiáng)、效率高等優(yōu)勢(shì)。目前使用較多的消化酶包括胰蛋白酶和膠原酶。胰蛋白酶適于消化細(xì)胞間質(zhì)較少的組織,對(duì)于iCCA這類組織內(nèi)間質(zhì)豐富的腫瘤,胰蛋白酶的消化效率則大大下降。本研究借鑒Mazzocca等[9]分離肝細(xì)胞肝癌相關(guān)成纖維細(xì)胞的經(jīng)驗(yàn),采用Ⅳ型膠原酶、透明質(zhì)酸酶及BSA制備的消化液,對(duì)細(xì)胞恒溫震蕩消化,可以快速?gòu)哪[瘤組織中分離出大量單細(xì)胞,且能更大程度保證細(xì)胞的活性。
在體外培養(yǎng)原代細(xì)胞時(shí),通常需要實(shí)驗(yàn)的一致性和可重復(fù)性,這樣才能保證這一細(xì)胞生物學(xué)特性研究結(jié)果的可靠性,因而細(xì)胞的純化就成為原代細(xì)胞分離培養(yǎng)中關(guān)鍵的一步。無(wú)論是組織貼壁法還是酶消化法,所得的原代細(xì)胞中通?;祀s有其他類型的細(xì)胞,因此在后續(xù)的培養(yǎng)傳代中還需要通過(guò)自然純化法、時(shí)間差酶消化法、機(jī)械刮除或反復(fù)貼壁等方法來(lái)進(jìn)一步純化[10]。這些方法大多需要經(jīng)過(guò)多次傳代,而代次的增加會(huì)影響原代細(xì)胞的生物學(xué)特性。本研究將酶消化法所得的單細(xì)胞懸液通過(guò)梯度離心去除大部分上皮細(xì)胞后,再進(jìn)行免疫磁珠分選,用anti-fibroblast的磁珠抗體和LS柱陽(yáng)性分選CAFs,所得細(xì)胞經(jīng)流式細(xì)胞儀檢測(cè),顯示其純度達(dá)99.1%。免疫磁珠分選可以迅速純化細(xì)胞,縮短整個(gè)原代細(xì)胞分離培養(yǎng)的時(shí)間,其缺點(diǎn)為:免疫磁珠抗體費(fèi)用昂貴,且分選過(guò)程可能造成部分原代細(xì)胞的裂解或活力下降。
3.2iCAFs分離培養(yǎng)的關(guān)鍵問(wèn)題原代iCAFs在分離培養(yǎng)過(guò)程中除需要注意無(wú)菌等原代細(xì)胞的分離培養(yǎng)的一般問(wèn)題外,還要注意以下幾個(gè)關(guān)鍵問(wèn)題。(1)腫瘤組織的取材和運(yùn)輸:在腫瘤組織標(biāo)本離體后應(yīng)即刻取材,以免細(xì)胞的活性降低;切取的組織于冰上運(yùn)輸以保證組織新鮮。(2)組織塊的剪切:所取的腫瘤組織盡量剪碎成肉糜狀,以利于組織表面與消化液充分接觸,縮短消化時(shí)間。(3)選擇合適的消化酶:以往的報(bào)道顯示乳腺癌、口腔癌等CAFs的原代分離通常用胰蛋白酶或Ⅰ型膠原酶[11-12],但iCCA較這些腫瘤含有更多的間質(zhì)成分。因此,本研究配置了含DMEM、0.1%BSA、1%雙抗、500 U/mL Ⅳ型膠原酶、100 U/mL透明質(zhì)酸酶的消化液。其中Ⅳ型膠原酶包含至少7種蛋白酶,可以消化多種組織;透明質(zhì)酸酶可以降低細(xì)胞間質(zhì)的黏性,利于單個(gè)細(xì)胞的析出;而B(niǎo)SA可以提高細(xì)胞消化過(guò)程中所需的營(yíng)養(yǎng)。(4)恰當(dāng)?shù)南瘯r(shí)間:不同的腫瘤組織在不同的消化液濃度下所需要的消化時(shí)間也不同。本研究早期根據(jù)國(guó)外研究[8]的經(jīng)驗(yàn)消化16 h,發(fā)現(xiàn)細(xì)胞均死亡,無(wú)法貼壁生長(zhǎng)。而消化時(shí)間太短又無(wú)法獲得足夠量的單細(xì)胞。通過(guò)不斷摸索,本研究確定于37℃恒溫箱內(nèi)以200 次/min持續(xù)震蕩消化30~45 min基本可以獲得滿意的單細(xì)胞懸液。具體的消化時(shí)間根據(jù)需消化的組織量來(lái)決定。(5)免疫磁珠分選時(shí)注意動(dòng)作輕柔,以避免細(xì)胞因發(fā)生機(jī)械性擠壓而破裂、死亡。
綜上所述,采用Ⅳ型膠原酶加透明質(zhì)酸酶消化法聯(lián)合免疫磁珠分選原代iCAFs,具有可重復(fù)性及高純度獲得的優(yōu)勢(shì),為后續(xù)實(shí)驗(yàn)提供了良好的平臺(tái)。
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[本文編輯]姬靜芳
Isolation, purification, and identification of intrahepatic cholangiocarcinoma associated fibroblasts
YANG Liu-xiao1, GAO Qiang2*
1.Department of Intensive Care Unit, Zhongshan Hospital, Fudan University, Shanghai 200032, China 2.Department of Hepatic Surgery, Zhongshan Hospital, Fudan University, Shanghai 200032, China
[Abstract]Objective: To explore the methods of isolation, purification, and identification of intrahepatic cholangiocarcinoma (iCCA) associated fibroblasts (iCAFs), which could facilitate further functional and pharmacological evaluation.Methods: Under aseptic conditions the tissue specimens of iCCA were obtained, minced, and digested in the digestive medium supplemented with collagenase Ⅳ and hyaluronidase. The single-cell suspension underwent immunomagnetic separation and purification, and carcinoma-associated fibroblasts (CAFs) were separated and cultured. Through morphological observation, immunofluorescent staining and flow cytometry analysis, whether the cells were iCAFs or not.Results: Morphologically, iCAFs were elongated or fusiform, with transparent cytoplasm, obvious refraction, single round or ovoid nucleus. Cellular processes overlap to form grids and show the "peak-valley" pattern. Under immunofluorescence, the typical iCAFs showed positive staining for alpha smooth muscle actin (α-SMA) and vimentin, and negative staining for pan-cytokeratin. Under flow cytometry detection, they were positive for α-SMA and negative for both CD34 and CD45.Conclusions: Enzyme digestion in combination with immunomagnetic separation can effectively separate iCAFs with high purity, providing a good platform for further studies on the roles of iCAFs in the pathogenesis of iCCA.
[Key Words]intrahepatic cholangiocarcinoma; carcinoma-associated fibroblasts; isolation; identification
[中圖分類號(hào)]R 735.9
[文獻(xiàn)標(biāo)志碼]A
[作者簡(jiǎn)介]楊柳曉,博士,主治醫(yī)師. E-mail: yang.liuxiao@zs-hospital.sh.cn*通信作者(Corresponding author). Tel: 021-64041990, E-mail: gao.qiang@zs-hospital.sh.cn
[基金項(xiàng)目]國(guó)家自然科學(xué)基金(81372648, 81502028). Supported by National Natural Science Foundation of China(81372648, 81502028).
[收稿日期]2016-01-22[接受日期]2016-02-25