方杰,胡昔權(quán)
?
運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對(duì)腦梗死大鼠室管膜下區(qū)神經(jīng)新生的影響①
方杰1,胡昔權(quán)2
[摘要]目的探討大鼠腦梗死后跑籠訓(xùn)練對(duì)室管膜下區(qū)神經(jīng)新生及神經(jīng)功能恢復(fù)的影響。方法成年雄性Sprague-Dawley大鼠48只,線栓法阻塞左側(cè)大腦中動(dòng)脈建立腦梗死模型,隨機(jī)分為對(duì)照組(n=24)和訓(xùn)練組(n=24),兩組再分為3 d、7 d、14 d和21 d亞組,每個(gè)亞組6只。對(duì)照組于普通籠內(nèi)飼養(yǎng),不做任何針對(duì)性訓(xùn)練;訓(xùn)練組予跑籠訓(xùn)練每天2次,共3周。各亞組于預(yù)定時(shí)間采用神經(jīng)功能損傷嚴(yán)重程度量表(NSS)評(píng)估神經(jīng)功能,取材行Ki67免疫熒光染色。結(jié)果14 d和21 d時(shí),訓(xùn)練組Ki67陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)較對(duì)照組增多(P<0.05)。7 d后,訓(xùn)練組NSS評(píng)分低于對(duì)照組(P<0.05)。結(jié)論腦梗死后跑籠訓(xùn)練可促進(jìn)大鼠室管膜下區(qū)神經(jīng)新生,可能在腦梗死后神經(jīng)功能恢復(fù)的過(guò)程中發(fā)揮重要作用。
[關(guān)鍵詞]腦梗死;運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練;神經(jīng)新生;大鼠
作者單位:1.廣州醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院康復(fù)醫(yī)學(xué)科,廣東廣州市510260;2.中山大學(xué)附屬第三醫(yī)院康復(fù)醫(yī)學(xué)科,廣東廣州市510630。作者簡(jiǎn)介:方杰(1984-),男,漢族,安徽淮南市人,碩士,主治醫(yī)師,主要研究方向:康復(fù)醫(yī)學(xué)與理療學(xué)。通訊作者:胡昔權(quán),教授,博士生導(dǎo)師。E-mail: xiquhu@hotmail.com。
[本文著錄格式]方杰,胡昔權(quán).運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對(duì)腦梗死大鼠室管膜下區(qū)神經(jīng)新生的影響[J].中國(guó)康復(fù)理論與實(shí)踐, 2016, 22(1): 8-12.
CITED AS: Fang J, Hu XQ. Effect of wheel running on neurogenesis in subventricular zone of adult rats post cerebral ischemia [J]. Zhongguo Kangfu Lilun Yu Shijian, 2016, 22(1): 8-12.
一直以來(lái),成年哺乳動(dòng)物神經(jīng)元被認(rèn)為是永久性細(xì)胞,受損后無(wú)法恢復(fù),僅能通過(guò)膠質(zhì)細(xì)胞填充,并且隨著年齡增長(zhǎng)逐漸退化和減少。1992年,Reynolds等從成年小鼠紋狀體分離出能在體外不斷分裂增殖、具有多種分化潛能的細(xì)胞群,提出了神經(jīng)干細(xì)胞(neural stem cells, NSCs)的概念[1]。成年哺乳動(dòng)物的NSCs主要存在于側(cè)腦室的室管膜下區(qū)(subventricular zone, SVZ)、紋狀體和海馬齒狀回(dentategyrus,DG)。已有研究證實(shí),腦缺血等病理刺激可激活成體腦內(nèi)NSCs增殖[2]。
目前國(guó)內(nèi)外研究大多側(cè)重于腦缺血對(duì)NSCs激活的影響,也有少數(shù)研究針對(duì)腦缺血后運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對(duì)海馬齒狀回NSCs增殖的影響。本研究探討腦梗死后運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對(duì)室管膜下區(qū)NSCs增殖的影響。
1.1實(shí)驗(yàn)動(dòng)物與分組
清潔級(jí)雄性成年Sprague-Dawley大鼠70只,由廣東省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,合格證號(hào)SCXK(粵) 2008-0002,體質(zhì)量230~250g,3月齡。造模后符合納入標(biāo)準(zhǔn)的大鼠48只,隨機(jī)數(shù)字表法分為對(duì)照組、訓(xùn)練組各24只,再分為術(shù)后3 d、7 d、14 d和21 d,每時(shí)間點(diǎn)6只。所有動(dòng)物均普通籠飼養(yǎng),予充足飲食,每天日照12 h,室溫(25±3)℃。
1.2模型制備
大鼠術(shù)前禁食12 h。采用Longa等的線栓法[3]制作永久性左側(cè)大腦中動(dòng)脈閉塞模型。3.5%水合氯醛350 mg/kg腹腔注射麻醉,取頸正中切口,鈍性分離皮下筋膜及甲狀腺,將左側(cè)甲狀腺外翻并保護(hù)固定。充分暴露視野,分離大鼠左側(cè)頸總動(dòng)脈、頸外動(dòng)脈和頸內(nèi)動(dòng)脈,結(jié)扎頸外動(dòng)脈主干和頸總動(dòng)脈近心端,并在頸總動(dòng)脈遠(yuǎn)心端備線,分離頸內(nèi)動(dòng)脈至翼腭動(dòng)脈,動(dòng)脈夾夾閉頸內(nèi)動(dòng)脈近心端,在頸總動(dòng)脈主干分叉處剪一約0.2 mm的“V”形切口,插入頂端稍有膨大的尼龍線栓(北京沙東生物科技有限公司),緩慢推進(jìn)至線栓頂端有阻力感,插入深度從頸總動(dòng)脈分叉處計(jì)算約(18±0.5) mm,使線栓經(jīng)頸總動(dòng)脈分叉部順利通過(guò)頸內(nèi)動(dòng)脈,越過(guò)大腦中動(dòng)脈開(kāi)口處,到達(dá)大腦前動(dòng)脈起始部。結(jié)扎備線,復(fù)位甲狀腺,關(guān)閉縫合切口。麻醉清醒后回籠,自由進(jìn)食。
動(dòng)物清醒后采用改良Bederson標(biāo)準(zhǔn)[4]進(jìn)行神經(jīng)功能評(píng)分:0分,無(wú)神經(jīng)功能缺失體征;1分,提尾時(shí)損傷對(duì)側(cè)前肢屈曲;2分,前肢屈曲及對(duì)側(cè)抵抗力下降;3分,向?qū)?cè)轉(zhuǎn)圈;4分,向?qū)?cè)轉(zhuǎn)圈及意識(shí)障礙。選擇蘇醒后出現(xiàn)左眼Honer氏征陽(yáng)性、Bederson評(píng)分1~3分的大鼠納入研究。
1.3運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練
采用自行研發(fā)的實(shí)驗(yàn)動(dòng)物跑籠訓(xùn)練器。跑籠直徑20 cm,長(zhǎng)40 cm,由電動(dòng)馬達(dá)帶動(dòng),控制器設(shè)定轉(zhuǎn)速、時(shí)間或路程。訓(xùn)練組造模48 h后開(kāi)始訓(xùn)練,采用階梯式遞增訓(xùn)練法,初始轉(zhuǎn)速5 r/min,每次15 min,每天2次。7 d后逐步增加為5 r/min,10 min;10 r/min,5 min;15 r/min,10 min;每天2次。14 d后逐步增加為15 r/min,10 min;20 r/min,10 min;15 r/min,10 min;每天2次。
對(duì)照組不進(jìn)行干預(yù),自由活動(dòng)。
1.4神經(jīng)功能評(píng)分
術(shù)后3 d、7 d、14 d和21 d采用神經(jīng)功能損傷嚴(yán)重程度量表(neurological severity scores, NSS)[5]進(jìn)行評(píng)定。該量表包括運(yùn)動(dòng)功能、感覺(jué)功能、平衡和反射缺失、異常運(yùn)動(dòng)4部分,共18分。1~6分為輕度損傷,7~12分為中度損傷,13~18分為重度損傷。
1.5免疫熒光染色
大鼠3.5%水合氯醛350 mg/kg腹腔注射麻醉,剪開(kāi)前胸壁,縱向剪開(kāi)心包,充分暴露心臟。肝素鈉0.2 μl抗凝,在心尖偏左處左心室插管至升主動(dòng)脈,止血鉗固定針頭,剪開(kāi)右心耳,快速滴入4℃生理鹽水50~100 ml沖洗,4℃4%多聚甲醛200~250 ml灌注固定,先快后慢,40 min灌注完。立即開(kāi)顱取腦,組織塊后固定在4%多聚甲醛中。腦組織分別置20%、30%、40%梯度蔗糖磷酸鹽緩沖溶液內(nèi),直到組織塊沉底。取出組織,恒冷箱切片機(jī)由顱至尾依次連續(xù)切片,片厚20 μm,隔4片取1片,裱于玻片上,行免疫熒光染色。
冰凍切片晾干后,0.01 mol/L PBS (pH=7.4)漂洗3次,每次5 min;置煮沸的0.01 mol/L檸檬酸鈉抗原修復(fù)液中(pH=6.0),微波加熱持續(xù)煮沸20 min,室溫冷卻;0.01 mol/L PBS漂洗3次,每次5 min;3% H2O2室溫5 min;0.01 mol/L PBS漂洗3次,每次5 min;1% TritonX-100室溫下破膜30 min,0.01 mol/L PBS漂洗3次,每次5 min;加入山羊血清,室溫封閉30 min;棄去血清,加入兔Ki67單克隆抗體(ABACAM,1∶1000),4℃過(guò)夜,棄去一抗;0.01 mol/L PBS漂洗3次,每次5 min;加入山羊抗兔Cy3 (PROTEINTECH,1∶100),避光孵育1 h;0.01 mol/L PBS漂洗3次,每次5 min;室溫下晾干??篃晒獯銣绶馄悍馄?,熒光顯微鏡下觀察。每只動(dòng)物取3張切片,400倍鏡下隨機(jī)取3個(gè)視野,使用Image-pro plus 6.0軟件計(jì)數(shù)Ki67陽(yáng)性細(xì)胞。
1.6統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
所有數(shù)據(jù)采用SPSS 16.0版軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析。數(shù)據(jù)以(±s)表示,行單因素方差分析(One-way analysis of variance)。顯著性水平α=0.05。
兩組造模3 d后NSS評(píng)分逐漸下降。術(shù)后3 d時(shí),兩組間評(píng)分無(wú)顯著性差異(P>0.05);從術(shù)后7 d開(kāi)始,訓(xùn)練組NSS評(píng)分低于對(duì)照組(P<0.05)。組內(nèi)比較,對(duì)照組3 d和7 d的NSS評(píng)分無(wú)顯著性差異(P>0.05),14 d后降低(P<0.05);訓(xùn)練組術(shù)后7 d即有降低(P< 0.05)。見(jiàn)表1。
兩組從術(shù)后3 d開(kāi)始出現(xiàn)Ki67陽(yáng)性細(xì)胞,7 d達(dá)到高峰,14 d后增殖水平逐漸下降(圖1)。術(shù)后3 d和7 d,兩組間Ki67陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)無(wú)顯著性差異(P>0.05);術(shù)后14 d和21 d,訓(xùn)練組Ki67陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)多于對(duì)照組(P<0.05)。組內(nèi)比較,訓(xùn)練組術(shù)后3 d與14 d時(shí),Ki67陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)無(wú)顯著性差異(P>0.05),其余各時(shí)間間均有顯著性差異(P<0.05);對(duì)照組各時(shí)間點(diǎn)間Ki67陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)均有顯著性差異(P<0.05)。見(jiàn)表2。
表1 兩組不同時(shí)間點(diǎn)NSS評(píng)分比較
表2 兩組不同時(shí)間點(diǎn)Ki67陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)比較
圖1 各組不同時(shí)間點(diǎn)Ki67表達(dá)(免疫熒光染色, bar=50 μm)
NSCs是來(lái)源于神經(jīng)系統(tǒng),具有自我維持或自我更新能力,并可向神經(jīng)組織多細(xì)胞系(神經(jīng)元、星形膠質(zhì)細(xì)胞、少突膠質(zhì)細(xì)胞)分化的細(xì)胞。目前,利用NSCs修復(fù)缺血性腦損傷主要有兩種途徑:移植外源性NSCs和激活內(nèi)源性NSCs。NSCs移植面臨成瘤風(fēng)險(xiǎn)、毒性、免疫排斥以及社會(huì)倫理等問(wèn)題,應(yīng)用受到限制;誘導(dǎo)內(nèi)源性NSCs逐漸成為研究熱點(diǎn)。
哺乳動(dòng)物成年后,NSCs主要存在于側(cè)腦室壁室管膜下區(qū)和海馬齒狀回的顆粒細(xì)胞層。一般認(rèn)為,腦室下區(qū)-頭側(cè)突起-嗅球系統(tǒng)中,腦室下區(qū)新生的NSCs由神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞包裹,并沿腹側(cè)遷移通路向嗅球方向遷移,形成成熟的中間神經(jīng)元[6]。在顆粒細(xì)胞下區(qū)-顆粒細(xì)胞層系統(tǒng)中,顆粒細(xì)胞下區(qū)新生的NSCs在遷移過(guò)程中,逐漸分化為前體細(xì)胞進(jìn)入顆粒細(xì)胞層,進(jìn)一步形成神經(jīng)細(xì)胞[7]。
目前鑒定NSCs最常用的方法是免疫組化示蹤法,利用細(xì)胞增殖標(biāo)記物,如胸腺嘧啶核苷類似物5-溴2-脫氧尿嘧啶核苷(5-bromo 2-deoxyuridine, BrdU),多由腹腔注射至動(dòng)物體內(nèi)[8]。BrdU可在細(xì)胞周期的S期摻入細(xì)胞核DNA內(nèi),通過(guò)免疫組化染色進(jìn)行檢測(cè)。
但這種方法存在著一些爭(zhēng)議和不足。首先,此種標(biāo)記方法屬于有創(chuàng)性操作,對(duì)動(dòng)物產(chǎn)生一定的刺激,僅限用于活體動(dòng)物;而且隨著操作人員的技術(shù)、方法以及劑量掌握而存在差異,增加了實(shí)驗(yàn)的干擾因素。其次,BrdU的摻入只意味著有DNA合成,不一定存在細(xì)胞分裂,受損的DNA在進(jìn)行修復(fù)時(shí),或處于即將衰老凋亡的細(xì)胞周期,核苷類似物也可以摻入其內(nèi),BrdU無(wú)法區(qū)分正處于修復(fù)、即將死亡和增殖細(xì)胞[9]。此外,注射入動(dòng)物體內(nèi)的BrdU是否會(huì)隨著細(xì)胞的分裂增殖而衰減或被稀釋,也存在一定爭(zhēng)議。
隨著NSCs研究的深入,Ki67開(kāi)始逐漸廣泛應(yīng)用于NSCs的研究中[10-12]。Ki67在細(xì)胞周期的G1后期、S期、G2期和M期細(xì)胞核表達(dá),是內(nèi)源性抗原,可直接進(jìn)行免疫組化檢測(cè);相比外源性注射抗原,表達(dá)部位和表達(dá)量更加穩(wěn)定;且只表達(dá)于增殖中的細(xì)胞,不會(huì)出現(xiàn)于修復(fù)期或即將衰亡的細(xì)胞中,是理想的NSCs鑒定標(biāo)記物之一。
成年哺乳動(dòng)物體內(nèi)NSCs數(shù)量極少,僅依賴自發(fā)的內(nèi)源性NSCs修復(fù)腦損傷遠(yuǎn)遠(yuǎn)不夠。提高內(nèi)源性NSCs的增殖水平,是缺血后神經(jīng)再生的基礎(chǔ)。目前研究認(rèn)為,激活NSCs的因素如下。
內(nèi)源性因素指可以對(duì)外界信號(hào)發(fā)生反應(yīng),并通過(guò)一系列信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),調(diào)節(jié)自身NSCs的因素,包括一些NSCs內(nèi)的蛋白成分、神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子等。另外,一些轉(zhuǎn)錄因子和基因的激活與沉默也可介導(dǎo)NSCs向特定的終末方向分化。各種生長(zhǎng)相關(guān)的因子、離子、激素以及神經(jīng)介質(zhì),也都是NSCs賴以存在和分化的必要因素。
外源性因素包括葡萄糖、氨基酸、維生素等,是維持細(xì)胞存活的基本元素,任何物質(zhì)的缺乏都會(huì)導(dǎo)致NSCs功能喪失甚至死亡。細(xì)胞間各種因素的協(xié)調(diào)平衡、滲透壓、pH值、氧濃度和溫度等都對(duì)NSCs的增殖、遷移以及分化產(chǎn)生重要影響。病理狀態(tài)如腦缺血也是NSCs的激活因素[13]。有研究發(fā)現(xiàn),腦缺血后10 d 和30 d分別在室管膜下區(qū)和腹側(cè)遷移通路出現(xiàn)細(xì)胞增殖高峰,在30 d和60 d可在嗅球檢測(cè)到BrdU和NeuN雙陽(yáng)性細(xì)胞,提示NSCs的增殖、遷移和分化[14]。越來(lái)越多的研究發(fā)現(xiàn),給予腦梗死動(dòng)物運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練、豐富環(huán)境、電針[15]等刺激,也可以提高NSCs的增殖水平。
給予成年小鼠運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練后,可提高運(yùn)動(dòng)功能、學(xué)習(xí)記憶能力[16]。該作用與激活海馬區(qū)神經(jīng)新生、改善突觸可塑性有關(guān)。本研究顯示,腦缺血發(fā)生后早期,對(duì)照組及訓(xùn)練組大鼠室管膜下區(qū)均出現(xiàn)大量Ki67陽(yáng)性細(xì)胞,可能與損傷后的缺血缺氧狀態(tài)激活腦內(nèi)源性神經(jīng)新生有關(guān)。一段時(shí)間后,隨著細(xì)胞水腫的減輕、腦內(nèi)側(cè)支微循環(huán)的建立以及膠質(zhì)細(xì)胞填充、分泌一些神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子,運(yùn)動(dòng)功能逐漸恢復(fù),同時(shí)神經(jīng)新生的增殖水平也明顯下降。而運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練有助于維持大鼠室管膜下區(qū)Ki67陽(yáng)性細(xì)胞水平,雖然14 d時(shí)細(xì)胞的增殖水平較前有所下降,但仍明顯高于對(duì)照組。這一促進(jìn)作用可能與激活某些細(xì)胞信號(hào)通路,如Wnt通路等有關(guān)[17];也有研究發(fā)現(xiàn),腦缺血后運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練可通過(guò)激活基質(zhì)細(xì)胞衍生因子-1及其受體(SDF-1α/CXCR4)軸,促進(jìn)NSCs增殖、遷移至損傷部位,發(fā)揮修復(fù)作用。相比訓(xùn)練組,對(duì)照組在14 d時(shí),大鼠室管膜下區(qū)細(xì)胞增殖水平較7 d時(shí)已明顯下降,21 d時(shí)進(jìn)一步下降,說(shuō)明腦缺血損傷刺激對(duì)室管膜下區(qū)神經(jīng)新生的激活作用有限,無(wú)法發(fā)揮有效的修復(fù)作用。
神經(jīng)功能評(píng)估也發(fā)現(xiàn),7 d、14 d和21 d訓(xùn)練組神經(jīng)功能優(yōu)于對(duì)照組。我們前期的研究顯示,運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練能促進(jìn)腦梗死大鼠運(yùn)動(dòng)功能的恢復(fù),且明顯優(yōu)于自然恢復(fù)[18-19]。結(jié)合本研究的發(fā)現(xiàn),提示腦梗死大鼠神經(jīng)功能的恢復(fù)可能與運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練促進(jìn)腦缺血后室管膜下區(qū)神經(jīng)新生有關(guān)。
綜上所述,腦缺血后運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練可激活室管膜下區(qū)神經(jīng)新生,促進(jìn)NSCs增殖、遷移和分化,對(duì)受損的神經(jīng)系統(tǒng)進(jìn)行修復(fù)。今后應(yīng)加強(qiáng)對(duì)影響腦缺血后NSCs增殖、遷移和分化因素的研究,選擇合適的訓(xùn)練方式、訓(xùn)練強(qiáng)度以及訓(xùn)練介入時(shí)間,提高NSCs增殖水平和存活能力,促進(jìn)其向受損部位的遷移能力和向神經(jīng)元方向分化,重建正確的神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)。
[參考文獻(xiàn)]
[1] Reynolds BA, Weiss S.generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system [J]. Science, 1992, 255(5052): 1707-1710.
[2] Lichetenwalner RI, Parent JM. Adult neurogenesis and the ischemic forebrain [J]. J Cereb Blood Flow Metab, 2006, 26(1): 1-20.
[3] Longa EZ, Weinstein PR, Carlson S, et al. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats [J]. Stroke, 1989, 20(1): 84-91.
[4] Bederson JB, Pitts LH, Tsuji M. Rat middle cerebral artery occlusion: evaluation of the model and development of neurologic examination [J]. Stroke, 1986, 17(3): 472-476.
[5] Chen J, Sanberg PR, Li Y, et al. Intravenous administration of human umbilical cord blood reduces behavioral deficits after stroke in rats [J]. Stroke, 2001, 32(11): 2682-2688.
[6]gritti A, Bonfanti L, Doetsch F, et al. Multipotent neural stem cells reside into the rostral extension and olfactory bulb of adult rodents [J]. J Neurosci, 2002, 22(2): 437-445.
[7] Kornack DR, Rskic P. Continuation of neurogenesis in the hippocampus of the adult macaque monkey [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 1999, 96(10): 5768-5773.
[8] Donovan MH, Yamaguchi M, Eisch AJ. Dynamic expression of TrkB receptor protein on proliferating and maturing cells in the adult mouse dentategyrus [J]. Hippocampus, 2008, 18(5): 435-439.
[9] Leuner B,glasper ER,gould E. Thymidine analog methods for studies of adult neurogenesis are not equally sensitive [J]. J Comp Neurol, 2009, 517(2): 123-133.
[10] Vega RNM, FernándezgA, Ramírez RG, et al. Effect of sub-optimal doses of fluoxetine plus estradiol on antidepressant-like behavior and hippocampal neurogenesis in ovariectomized rats [J]. Psychoneuroendocrinology, 2015, 57: 113-124.
[11] Egan KJ, Janssen H, Sena ES, et al. Longley L1 exercise reduces infarct volume and facilitates neurobehavioral recovery: results from a systematic review and meta-analysis of exercise in experimental models of focal ischemia [J]. Neurorehabil Neural Repair, 2014, 28(8): 800-812.
[12] Sibbe M, Kuner E, Althof D, et al. Stem- and progenitor cell proliferation in the dentategyrus of the reeler mouse [J]. PLoS One, 2015, 10(3): 1-9.
[13] Kawai T, Takagi N, Miyake-Takagi K, et al. Characterization of BrdU-positive neurons induced by transientglobal ischemia in adult hippocampus [J]. J Cereb Blood Flow Metab, 2004, 24 (5): 548-555.
[14] Iwai M, Sato K, Kamada H, et al. Temporal profile of stem cell division, migration, andgerbils [J]. J Cereb Blood Flow Metab, 2003, 23(3): 331-341.
[15]劉喆,賴新生.電針對(duì)局灶性腦缺血大鼠神經(jīng)干細(xì)胞巢蛋白表達(dá)的影響[J].中華物理醫(yī)學(xué)與康復(fù)雜志, 2005, 27(10): 591-594.
[16]gibbons TE, Pence BD, Petrg, et al. Voluntary wheel running, but not a diet containing (-)-epigallocatechin-3-gallate and β- alanine, improves learning, memory and hippocampal neurogenesis in aged mice [J]. Behav Brain Res, 2014, 272: 131-140.
[17] Yu JL, Ma L, Ma L, et al. Voluntary wheel running enhances cell proliferation and expression levels of BDNF, IGF1 and WNT4 in dentategyrus of adult mice [J]. Sheng Li Xue Bao, 2014, 66(5): 559-568.
[18]羅婧,胡昔權(quán),張麗穎,等.運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對(duì)腦梗死大鼠側(cè)腦室室管膜下區(qū)內(nèi)源性神經(jīng)干細(xì)胞遷移的影響及其機(jī)制[J].中國(guó)康復(fù)醫(yī)學(xué)雜志, 2014, 29(4): 299-305.
[19]李莉莉,胡昔權(quán),張麗穎,等.運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對(duì)腦缺血大鼠神經(jīng)功能及梗死邊緣區(qū)細(xì)胞增殖與凋亡的影響[J].中國(guó)康復(fù)醫(yī)學(xué)雜志, 2013, 28(6): 528-532.
Effect of Wheel Running on Neurogenesis in Subventricular Zone of Adult Rats post Cerebral Ischemia
FANG Jie1, HU Xi-quan2
1. Department of Rehabilitation, The Second Affiliated Hospital ofguangzhou Medical University,guangzhou,guangdong 510260, China; 2. Department of Rehabilitation, The Third Affiliated Hospital of Sun Yat-sen University,guangzhou,guangdong 510630, China
Correspondence to HU Xi-quan. E-mail: xiquhu@hotmail.com
Abstract:Objective To observe the effect of wheel running exercise on subventricular zone neurogenesis and the neural function in rats post cerebral ischemia. Methods 48 adult male Sprague-Dawley rats were induced cortical infarcts with left middle artery occlusion and were housed in either standard (controlgroup, n=24) or wheel running (exercisegroup, n=24). They were assessed with neurological severity scores (NSS), and the expression of Ki67 was determined with immunofluorescence, 3, 7, 14 and 21 days after training. Results Compared with the controlgroup, the number of Ki67-labeled cells in subventricular significantly increased in the exercisegroup 14 and 21 days after ischemia (P<0.05), and the NSS decreased since 7 days after ischemia (P<0.05). Conclusion Wheel running may promote the neurogenesis in subventricular of adult rats after cerebral infarction, which may associate with the recovery of neural function.
Key words:cerebral infarction; exercise; neurogenesis; rats
(收稿日期:2015-05-17修回日期:2015-09-30)
[中圖分類號(hào)]R743.32
[文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼]A
[文章編號(hào)]1006-9771(2016)01-0008-05
基金項(xiàng)目:1.國(guó)家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(No.81071607);2.廣東省科技計(jì)劃項(xiàng)目(No.2011B060300013)。
DOI:10.3969/j.issn.1006-9771.2016.01.002