戴夢紅,陸啟榮,程古月,李 麗,劉孟軻,郝海紅,王 旭,袁宗輝
?
畜禽動物中長鏈非編碼RNA的研究現(xiàn)狀
戴夢紅,陸啟榮,程古月,李 麗,劉孟軻,郝海紅,王 旭,袁宗輝*
(華中農(nóng)業(yè)大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院/國家獸藥殘留基準(zhǔn)實驗室(HZAU)/農(nóng)業(yè)部畜禽產(chǎn)品質(zhì)量安全風(fēng)險評估實驗室(武漢)/農(nóng)業(yè)部獸藥殘留檢測重點開放實驗室,武漢430070)
摘 要:長鏈非編碼RNA(Long noncoding RNAs,lncRNA)是一類轉(zhuǎn)錄本長度超過200nt的非編碼RNA分子,它們以RNA的形式在表觀遺傳調(diào)控、轉(zhuǎn)錄調(diào)控以及轉(zhuǎn)錄后調(diào)控等多層面調(diào)控基因的表達。它們參與細(xì)胞增殖、分化和凋亡等多種生物學(xué)過程。近年來,lncRNA在畜禽動物中的研究越來越受到人們的重視,人們發(fā)現(xiàn)lncRNA在動物生長發(fā)育中扮演著很重要的角色。本文對近十五年來畜禽動物如豬、雞、羊和牛中l(wèi)ncRNA的高通量篩選與鑒定、表達、在不同物種中的進化以及功能等研究現(xiàn)狀進行綜述。
關(guān)鍵詞:LncRNA;畜禽動物;高通量篩選;表達;進化;功能
高通量RNA測序(RNA sequencing,RNA-seq)技術(shù)的出現(xiàn),使人們認(rèn)識到大約83.5%的人類基因組是可以轉(zhuǎn)錄的,其中轉(zhuǎn)錄物中只有1%~3%編碼蛋白[1-2]。這些可以發(fā)生轉(zhuǎn)錄的基因中80%是由非編碼RNA組成,它們的序列分別與內(nèi)含子、順式調(diào)控元件和重復(fù)序列相對應(yīng)[3]?;蚪M中大量的非編碼RNA基因的存在,說明它們可能在生命活動中扮演著很重要的角色,并不是人們最開始認(rèn)為的那樣是基因轉(zhuǎn)錄過程中的“噪音”和“暗物質(zhì)”。在這些非編碼RNA中,長鏈非編碼RNA(Long noncoding RNAs,lncRNA)是其中一種很重要的組成部分。近年來,lncRNA在畜禽動物中的研究也越來越受到人們的重視,人們發(fā)現(xiàn)lncRNA在動物生長發(fā)育中扮演著很重要的角色。在本文中,我們對近十五年來畜禽動物如豬、雞、羊和牛中傳統(tǒng)印記lncRNA的功能、新lncRNA的鑒定和功能、高通量篩選、在不同物種中的進化規(guī)律等研究現(xiàn)狀進行綜述。
LncRNA是一類轉(zhuǎn)錄本長度超過200nt的RNA分子,它們并不編碼蛋白,而是以RNA的形式在多種層面上如表觀遺傳調(diào)控、轉(zhuǎn)錄調(diào)控以及轉(zhuǎn)錄后調(diào)控等調(diào)控基因的表達水平。
根據(jù)它們在基因組上相對于蛋白編碼基因的位置,可以將其分為正義鏈(Sense)、反義鏈(Antisense)、雙向(Bidirectional)、內(nèi)含子間(Intronic)、基因間(Intergenic)這5種類型[4]。這種位置關(guān)系對于推測lncRNA的功能有很大幫助。但是,因為其功能多樣,且相對于microRNA和蛋白質(zhì)而言其功能更加難以確定,目前并不能僅根據(jù)序列或者結(jié)構(gòu)來推測它們的功能。
根據(jù)lncRNA的作用形式,可將其分為信號分子(Signal molecule)、誘餌分子(Decoy molecule)、引導(dǎo)分子(Guide molecule)和骨架分子(Scaffold molecule)等4類分子[5]。
根據(jù)http://www.noncode.org/提供的NONCODE數(shù)據(jù)庫的最新記錄,目前已經(jīng)發(fā)現(xiàn)的lncRNA達210 831條,其中人lncRNA為92 343條,小鼠的為67 628條。然而,根據(jù)LncRNA Disease數(shù)據(jù)庫的記錄,目前有功能和相關(guān)疾病報道的lncRNA只有1 600條左右,人們對其余99%以上的lncRNA的功能以及與人類疾病和動物發(fā)育的關(guān)系一無所知。雖然近年來關(guān)于lncRNA的研究進展迅猛,但是絕大部分lncRNA的功能仍然是不清楚的。
畜禽動物中早期的研究主要集中在與人和鼠同源的印記基因如H19、胰島素樣生長因子2(Insu-lin-like growth factor 2,IGF2)、X染色體滅活特異轉(zhuǎn)錄體(X-chromosome inactivation-specific transcript,XIST/Xist)、基因捕獲座位2(Gene trap locus 2,GTL2)、X染色體-關(guān)聯(lián)的單胺氧化酶A(X-linked monoamine oxidase type A,MAOA)等基因上,這些印記基因的表觀遺傳調(diào)控、表達和甲基化模式分析分別在畜禽如豬[6]、黃牛和野牛[7]、克隆綿羊[8]、克隆牛[9]、綿羊[10]、雞[11]等胚胎和組織中均有研究報道。
哺乳動物為二倍體生物,每個基因都是雙拷貝,一些基因的表達取決于來自父本還是母本,這種現(xiàn)象稱為基因印記,該現(xiàn)象涉及基因表達調(diào)控的遺傳。IGF2和H19基因參與了基因印記[12-13]。C.Li等對豬H19和IGF2這2個基因在13個組織中的印記狀況進行了探討,發(fā)現(xiàn)IGF2P1在所有組織中呈現(xiàn)雙等位基因表達,大多數(shù)的IGF2基因表達于啟動子2~4中,參與基因印記,而H19基因廣泛地表達于所有組織中的母本等位基因中[14]。這2個基因的甲基化模式研究在活的克隆豬和死豬的胎盤[15]、28天生長豬的單性胚胎和胎盤[16]、正常受精的豬胚胎和單性胚胎干細(xì)胞[17]也有報道。M.H.Braunschweig等闡明了豬IGF2印記狀態(tài)與H19甲基化結(jié)構(gòu)域(DMD)和IGF2甲基化區(qū)域1、2 (DMR1和DMR2)的DNA甲基化的關(guān)系[18]。有研究指出,牛印記基因H19的表達、H19/IGF2印記控制區(qū)(Imprinting control region,ICR)的甲基化模式與人的相似[19],IGF2-H19基因座的甲基化狀態(tài)不影響雜交公牛的生育能力[20],但它們在利用體細(xì)胞核轉(zhuǎn)移技術(shù)生產(chǎn)的克隆牛中具有低甲基化趨勢[21]。還有很多研究針對利用體細(xì)胞核轉(zhuǎn)移克隆技術(shù)(Somatic cell nuclear transfer,SCNT)生產(chǎn)的克隆動物中的印記基因的甲基化模式進行研究。在應(yīng)用該技術(shù)產(chǎn)生的發(fā)生流產(chǎn)的轉(zhuǎn)基因克隆羊中H19和IGF2R基因產(chǎn)生了高甲基化模式,而存活克隆羊中的甲基化模式與自然生產(chǎn)羊的相似[22]。異常甲基化頻繁發(fā)生在克隆牛的3個印記基因IGF2、H19和XIST而不是衛(wèi)星基因座上[23]。在含有β乳球蛋白(BLG)基因的克隆牛胎兒的耳朵成纖維細(xì)胞系(blg+/-)中,6個基因(Beta-actin、VEGF、oct4、TERT、H19和Igf2)的DNA甲基化現(xiàn)象普遍存在,只是甲基化程度不一樣,這些變化可能會影響到基因的表達最終導(dǎo)致胎兒晚期發(fā)育的畸形和死亡[24]。在自然流產(chǎn)的克隆牛中4個印記基因(Peg3、MAOA、Xist和Peg10)的DNA甲基化異常,表現(xiàn)出不同程度的異常甲基化印記,說明印記基因的甲基化異常是導(dǎo)致克隆牛高流產(chǎn)率和發(fā)育異常的部分原因[25]。
近年來,隨著國際和國內(nèi)對lncRNA研究的重視,畜牧行業(yè)的國內(nèi)外研究者對該領(lǐng)域的關(guān)注度日益增高,lncRNA在畜禽方面的研究從十年前對典型印記基因的表觀遺傳調(diào)控研究逐漸轉(zhuǎn)向近年來對新lncRNA的鑒定和功能研究。有研究報道,在豬的胎兒滋養(yǎng)層鑒定出一種新的長鏈非編碼RNA,稱為TncRNA,并揭示了其染色體定位和二級結(jié)構(gòu)。這種lncRNA在豬胎兒骨骼肌中上調(diào)表達,對豬胎兒骨骼肌的發(fā)育有顯著性影響[26]。豬lncRNA XIST的全長序列被鑒定出來,其基因全長25 215 bp,由7個外顯子組成,包括2個物種保守的和2個豬特異的重復(fù)區(qū)域。該基因存在于雌性細(xì)胞中,并受到其啟動子區(qū)域低水平CpG甲基化影響[27]。在豬克隆體細(xì)胞中XIST基因5′端存在一個差異甲基化區(qū)域,DNMT1抑制劑DNMTi scriptaid單獨或與組蛋白去乙?;敢种苿〩DACi RG108合用,可以改變XIST基因的轉(zhuǎn)錄和甲基化水平[28]。與此同時,在來自亞洲的Meishan豬和西方國家的White Composite(WC)豬的胎盤中鑒別出了一個具有種屬差異的lncRNA XIST同分異構(gòu)體,與雌豬X染色體劑量補償效應(yīng)有關(guān)[29]。最近,豬PU.1反義lncRNA(PU.1AS lncRNA)的作用機制被闡明,PU.1反義lncRNA通過形成PU.1mRNAPU.1AS lncRNA復(fù)合物促進豬脂肪的生成[30]。新的雞lncRNA的結(jié)構(gòu)和功能也不斷地被發(fā)現(xiàn)和鑒定。Gomafu(也叫做RNCR2/MIAT)是一個非編碼RNA,是神經(jīng)元的一個重要組成部分。研究表明,雞Gomafu RNA含有串連重復(fù)序列UACUAAC,該重復(fù)序列以很高的親和力結(jié)合到SF1剪接因子,影響到體外的剪接反應(yīng)動力學(xué)[31]。雞lncRNA MHM在雞胚胎發(fā)育包括性腺發(fā)育中起作用[32],而雞成年lncRNAα-球蛋白轉(zhuǎn)錄物(lncRNA-αGT)在雞發(fā)育晚期上調(diào)表達,可以完全激活成熟的α(D)球蛋白基因的表達并維持染色質(zhì)的轉(zhuǎn)錄活性,說明lncRNA-αGT是α(D)球蛋白基因表達從胚胎到成熟過程中重要的一部分[33]。同期,在奶牛和水牛中發(fā)現(xiàn)了一個lncRNA LOC100848215。該基因只存在于奶牛和水牛中,在野生型角芽胚胎組織中高表達,這說明其參與牛角芽的形成[34]?,F(xiàn)有的文獻表明,牛lncRNA可能參與牛母體早期胚胎發(fā)育的物質(zhì)儲備[35-36]、牛胎兒的晚期發(fā)育[24]等。
近4年來研究者開始從全基因組角度對lncRNA進行高通量篩選。A.Esteve-Codina等利用高通量的RNA sequencing技術(shù)和生物信息學(xué)分析,在2種表型極端不同的公豬即Iberian和Large White基因組中鑒定出了2 047種lncRNAs,其中469種與人同源,但未對這些基因進行深入的功能分析[37]。2012年,W.Huang等利用已公布的牛特定的表達序列標(biāo)簽,在405個基因間隔區(qū)篩選了449種lncRNAs,通過特征分析,結(jié)果表明這些lncRNAs一般以組織特異性方式表達,其GC含量高于隨機選擇的基因間序列,但比蛋白編碼基因的低,且在哺乳動物中比較保守[38]。T.Li等利用RNASeq技術(shù)和生物信息學(xué)分析,在雞基因組中鑒定了281種新的基因間lncRNAs,這些lncRNAs與雞骨骼肌發(fā)育相關(guān),其序列保守性低于編碼基因序列[39]。R.Weikard等采用深度RNA sequencing方法分別對色素沉著和非色素沉著牛皮膚進行轉(zhuǎn)錄組測序,發(fā)現(xiàn)了4 848種lncRNAs,其中4 365種可能為基因間lncRNA,這些基因可能調(diào)控牛的皮膚色素沉著過程[40]。2014年中國科學(xué)院昆明動物研究所張亞平院士課題組通過整合NCBI EST數(shù)據(jù)和已發(fā)表的RNA-seq數(shù)據(jù),鑒定了4 515個長鏈基因間非編碼RNAs(Large intergenic noncoding RNA,lincRNA)基因(6 621個lincRNAs轉(zhuǎn)錄本)。通過分析家豬和野豬的大腦表達數(shù)據(jù),發(fā)現(xiàn)30個lincRNA基因在家豬和野豬大腦表現(xiàn)為表達差異,可能與從野豬到家豬的馴化行為轉(zhuǎn)變有關(guān),其中l(wèi)incsscg2561可能參與調(diào)控性情相關(guān)基因DNMT3A的表達。該研究為豬的基因組學(xué)研究以及家養(yǎng)動物馴化的分子機制研究提供重要信息[41]。胎牛、成年公牛、成年小母牛和成年去勢公牛4個文庫被構(gòu)建用于Illumina二代測序,以對不同年齡不同性別牛脂肪組織發(fā)育過程中的轉(zhuǎn)錄復(fù)合體進行鑒定。結(jié)果發(fā)現(xiàn),每個文庫鑒定出超過4 000個新的轉(zhuǎn)錄體,其中70%的為非編碼RNA,為后期的lncRNA研究提供了大量的信息[42]。Limousin公牛小腿最長肌中l(wèi)incRNA也通過末端配對的RNA sequencing技術(shù)得以鑒定,鑒定出584種不同的lincRNAs,其中418種在所有9個肌肉樣品中均存在。這些lincRNAs具備跟其他哺乳動物中發(fā)現(xiàn)的lincRNAs一樣的特征:即與編碼基因比較,它們的長度相對較短、外顯子數(shù)量較少、表達量低得多。進一步分析發(fā)現(xiàn),肌肉組織中部分基因間長鏈非編碼RNA位于跟肉品質(zhì)相關(guān)的基因座上[43]。鄭竹清等以山羊肌內(nèi)脂肪細(xì)胞成熟前后轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù),結(jié)合CPC(Coding potential calculator)與CPAT(Coding potential assessment tool)來預(yù)測lncRNA,并對其序列、結(jié)構(gòu)與功能進行分析。結(jié)果表明,通過預(yù)測得到1 472個山羊肌內(nèi)脂肪細(xì)胞中表達的lncRNA,其中29個lncRNA在成熟前后具有顯著差異,它們主要在細(xì)胞分泌、生長調(diào)節(jié)和細(xì)胞形態(tài)變化等方面發(fā)揮著重要作用[44]。這些研究結(jié)果為從lncRNAs的角度來研究家畜主要經(jīng)濟性狀相關(guān)基因的功能和動物的生長發(fā)育機制開辟了新的途徑。
LncRNA在不同物種中均有發(fā)現(xiàn),它們在不同物種中的進化規(guī)律也引起了人們的關(guān)注。有研究發(fā)現(xiàn),在脊椎動物中,高度保守元件(HCEs)與調(diào)控基因的3′不譯區(qū)、穩(wěn)定基因deserts以及在中度保守的非編碼序列中富含的兆堿基大小區(qū)域相關(guān),非編碼的高度保守元件(HCEs)RNA的二級結(jié)構(gòu)比較保守[45]。在雞的一段含有哺乳動物Ascl2/Mash2、Ins2和Igf2同源物的490kb基因組序列中未找到印記基因H19及其調(diào)控元件,但雞中與哺乳動物基因同源的ASCL2/CASH4和INS表現(xiàn)出雙等位基因表達,表明在哺乳動物和禽類動物中存在著印記進化[46]。在哺乳動物人、小鼠和牛的3′末端多聚腺苷酸位點上游存在著大約3 000種比較長的(30~500nt)非編碼保守片段,甚至在與哺乳動物親緣關(guān)系非常遠的動物鴨嘴獸中也存在著上千種這樣的片段。數(shù)量如此之大,即使這些序列的功能未知,但說明它們不可能作為蛋白質(zhì)的識別位點(通?!?5 nt),可能與染色質(zhì)易接近性(Chromatin accessibility)有關(guān)[47]。2014年A.Necsulea等對11種四足動物lncRNA的大規(guī)模進化和表達模式研究進行了系統(tǒng)分析,鑒定出了11 000個靈長類動物特有的lncRNAs和2 500個高度保守的lncRNAs,其中大約400個lncRNAs可能起源于3億年前[48]。對人lincRNAs在6個不同哺乳動物的9個不同組織中的進化史研究表明,在1 898種人lincRNAs中,80%的在黑猩猩,63%的在獼猴,39%的在牛,38%的在小鼠體內(nèi)發(fā)現(xiàn)了同源物,并且表現(xiàn)出非常保守的組織特異性[49]。
LncRNA在家畜中的研究起步較晚,特別是功能與調(diào)控機制的研究剛剛起步。雖然lncRNA在遺傳信息中的作用日益受到研究人員的重視,但目前其在調(diào)控動物發(fā)育生長上的研究大都局限于表觀遺傳調(diào)控和克隆動物上,未見文獻對新發(fā)現(xiàn)的lncRNA在細(xì)胞生長調(diào)控以及與藥物作用的關(guān)系方面進行報道。對于畜禽lncRNA的研究可通過構(gòu)建有共同特征的lncRNA文庫,利用RNA-seq技術(shù)對具有不同經(jīng)濟性狀動物組織和細(xì)胞中的非編碼RNA測序和篩選,利用生物信息學(xué)方法預(yù)測lncRNA的結(jié)構(gòu)特征,通過原位雜交技術(shù)FISH、過表達技術(shù)、RNAi技術(shù)來發(fā)現(xiàn)更多新的lncRNA,研究其對家畜生長或經(jīng)濟性狀相關(guān)基因的調(diào)控作用機理,為加快家畜生長性狀改良,加快家畜育種進程提供一定的理論依據(jù)。我們相信隨著高通量測序技術(shù)的發(fā)展,越來越多的lncRNA被發(fā)現(xiàn)和注釋。然而,絕大多數(shù)lncRNA的功能效應(yīng)及效應(yīng)機制尚不得而知,探索這一廣闊的未知領(lǐng)域正逐漸成為生命科學(xué)研究的一個新熱點。
參考文獻(References):
[1] HANGAUER M J,VAUGHN I W,MCMANUS M T.Pervasive transcription of the human genome produces thousands of previously unidentified long intergenic noncoding RNAs[J].PLoS Genet,2013,9(6):e1003569.
[2] DJEBALI S,DAVIS C A,MERKEL A,et al.Landscape of transcription in human cells[J].Nature,2012,489(7414):101-108.
[3] CORDAUX R,BATZER M A.The impact of retrotransposons on human genome evolution[J].Nat Rev Genet,2009,10(10):691-703.
[4] ZHU S,ZHANG X O,YANG L.Panning for Long Noncoding RNAs[J].Biomolecules,2013,3(1):226-241.
[5] WANG K C,CHANG H Y.Molecular mechanisms of long noncoding RNAs[J].Mol Cell,2011,43(6):904-914.
[6] AMARGER V,NGUYEN M,VAN LAERE A S,et al.Comparative sequence analysis of the INS-IGF2-H19gene cluster in pigs[J].Mamm Genome,2002,13 (7):388-398.
[7] DINDOT S V,KENT K C,EVERS B,et al.Conservation of genomic imprinting at the XIST,IGF2,and GTL2loci in the bovine[J].Mamm Genome,2004,15 (12):966-974.
[8] YOUNG L E,SCHNIEKE A E,MCCREATH K J,et al.Conservation of IGF2-H19and IGF2Rimprinting in sheep:effects of somatic cell nuclear transfer[J].Mech Dev,2003,120(12):1433-1442.
[9] XUE F,TIAN X C,DU F,et al.Aberrant patterns of X chromosome inactivation in bovine clones[J].Nat Genet,2002,31(2):216-220.
[10] NAIMEH L G,SCHUTTE B C,HAMILTON W S,et al.Ontogeny of the H19gene in sheep and effect of maternal fasting on its expression in the fetus[J].Endocr Res,2001,27(4):417-431.
[11] SZABóP E,TANG S H,REED M R,et al.The chicken beta-globin insulator element conveys chromatin boundary activity but not imprinting at the mouse Igf2/H19domain[J].Development,2002,129 (4):897-904.
[12] SCHOENHERR C J,LEVORSE J M,TILGHMAN S M.CTCF maintains differential methylation at the Igf2/H19locus[J].Nat Genet,2003,33(1):66-69.
[13] HARK A T,SCHOENHERR C J,KATZ D J,et al.CTCF mediates methylation-sensitive enhancer-blocking activity at the H19/Igf2locus[J].Nature,2000,405(6785):486-489.
[14] LI C,BIN Y,CURCHOE C,et al.Genetic imprinting of H19and IGF2in domestic pigs(Sus scrofa)[J].Anim Biotechnol,2008,19(1):22-27.
[15] WEI Y,ZHU J,HUAN Y,et al.Aberrant expression and methylation status of putatively imprinted genes in placenta of cloned piglets[J].Cell Reprogram,2010,12(2):213-222.
[16] HAN X,OUYANG H,CHEN X,et al.Aberrant expression of Igf2/H19in porcine parthenogenetic fetuses and placentas[J].Anim Reprod Sci,2013,139(1-4):101-108.
[17] UH K J,PARK C H,CHOI K H,et al.Analysis of imprinted IGF2/H19gene methylation and expression in normal fertilized and parthenogenetic embryonic stem cells of pigs[J].Anim Reprod Sci,2014,147(1-2):47-55.
[18] BRAUNSCHWEIG M H,OWCZAREK-LIPSKA M,STAHLBERGER-SAITBEKOVA N.Relationship of porcine IGF2imprinting status to DNA methylation at the H19DMD and the IGF2DMRs 1and 2[J].BMC Genet,2011,12:47.
[19] ROBBINS K M,CHEN Z,WELLS K D,et al.Expression of KCNQ1OT1,CDKN1C,H19,and PLAGL1and the methylation patterns at the KvDMR1 and H19/IGF2imprinting control regions is conserved between human and bovine[J].J Biomed Sci,2012,19:95.
[20] JENA S C,KUMAR S,RAJPUT S,et al.Differential methylation status of IGF2-H19locus does not affect the fertility of crossbred bulls but some of the CTCF binding sites could be potentially important[J].Mol Reprod Dev,2014,81(4):350-362.
[21] CURCHOE C L,ZHANG S,YANG L,et al.Hypomethylation trends in the intergenic region of the imprinted IGF2and H19genes in cloned cattle[J].Anim Reprod Sci,2009,116(3-4):213-225.
[22] MENG L,WAN Y,SUN Y,et al.Generation of five human lactoferrin transgenic cloned goats using fibroblast cells and their methylation status of putative differential methylation regions of IGF2Rand H19imprinted genes[J].PLoS One,2013,8(10):e77798.
[23] SHEN C J,LIN C C,SHEN P C,et al.Imprinted genes and satellite loci are differentially methylated in bovine somatic cell nuclear transfer clones[J].Cell Reprogram,2013,15(5):413-424.
[24] LIN L,XU W,DAI Y,et al.DNA methylation changes in cell line from beta-lactoglobulin gene targeted fetus[J].Anim Reprod Sci,2009,112(3-4):402-408.
[25] LIU J H,YIN S,XIONG B,et al.Aberrant DNA methylation imprints in aborted bovine clones[J].Mol Reprod Dev,2008,75(4):598-607.
[26] REN H,LI Y,TANG Z,et al.Genomic structure,chromosomal localization and expression profile of a porcine long non-coding RNA isolated from long SAGE libraries[J].Anim Genet,2009,40(4):499-508.
[27] HWANG J Y,KIM E B,KA H,et al.Identification of the porcine XIST gene and its differential CpG methylation status in male and female pig cells[J].PLoS One,2013,8(9):e73677.
[28] XU W,LI Z,YU B,et al.Effects of DNMT1and HDAC inhibitors on gene-specific methylation reprogramming during porcine somatic cell nuclear transfer[J].PLoS One,2013,8(5):e64705.
[29] BISCHOFF S R,TSAI S Q,HARDISON N E,et al.Differences in X-chromosome transcriptional activity and cholesterol metabolism between placentae from swine breeds from Asian and Western origins[J].PLoS One,2013,8(1):e55345.
[30] WEI N,WANG Y,XU R X,et al.PU.1antisense lncRNA against its mRNA translation promotes adipogenesis in porcine preadipocytes[J].Anim Genet,2015,46(2):133-140.
[31] TSUIJI H,YOSHIMOTO R,HASEGAWA Y,et al.Competition between a noncoding exon and introns:Gomafu contains tandem UACUAAC repeats and associates with splicing factor-1[J].Genes Cells,2011,16(5):479-490.
[32] ROESZLER K N,ITMAN C,SINCLAIR A H,et al.The long non-coding RNA,MHM,plays a role in chicken embryonic development,including gonadogenesis[J].Dev Biol,2012,366(2):317-326.
[33] ARRIAGA-CANON C,F(xiàn)ONSECA-GUZMáN Y,VALDES-QUEZADA C,et al.A long non-coding RNA promotes full activation of adult gene expression in the chicken alpha-globin domain[J].Epigenetics,2014,9(1):173-181.
[34] WIEDEMAR N,TETENS J,JAGANNATHAN V,et al.Independent polled mutations leading to complex gene expression differences in cattle[J].PLoS One,2014,9(3):e93435.
[35] MACAULAY A D,GILBERT I,CABALLERO J,et al.The gametic synapse:RNA transfer to the bovine oocyte[J].Biol Reprod,2014,91(4):90.
[36] CABALLERO J,GILBERT I,F(xiàn)OURNIER E,et al.Exploring the function of long non-coding RNA in the development of bovine early embryos[J].Reprod Fertil Dev,2014,27(1):40-52.
[37] ESTEVE-CODINA A,KOFLER R,PALMIERI N,et al.Exploring the gonad transcriptome of two extreme male pigs with RNA-seq[J].BMC Genomics,2011,12:552.
[38] HUANG W,LONG N,KHATIB H.Genome-wide identification and initial characterization of bovine long non-coding RNAs from EST data[J].Anim Genet,2012,43(6):674-682.
[39] LI T,WANG S,WU R,et al.Identification of long non-protein coding RNAs in chicken skeletal muscle using next generation sequencing[J].Genomics,2012,99(5):292-298.
[40] WEIKARD R,HADLICH F,KUEHN C.Identification of novel transcripts and noncoding RNAs in bovine skin by deep next generation sequencing[J].BMC Genomics,2013,14:789.
[41] ZHOU Z Y,LI A M,ADEOLA A C,et al.Genomewide identification of long intergenic noncoding RNA genes and their potential association with domestication in pigs[J].Genome Biol Evol,2014,6(6):1387-1392.
[42] ZHOU Y,SUN J,LI C,et al.Characterization of transcriptional complexity during adipose tissue development in bovines of different ages and sexes[J].PLoS One,2014,9(7):e101261.
[43] BILLEREY C,BOUSSAHA M,ESQUERRéD,et al.Identification of large intergenic non-coding RNAs in bovine muscle using next-generation transcriptomic sequencing[J].BMC Genomics,2014,15:499.
[44] 鄭竹清,杜 琛,付紹印,等.山羊肌內(nèi)脂肪細(xì)胞lncRNA鑒別及特征分析[J].畜牧獸醫(yī)學(xué)報,2014,45 (12):1924-1931.ZHENG Z Q,DU C,F(xiàn)U S Y,et al.Identification and characterization analysis of long non-coding RNA from RNA-seq data of intramuscular adipocytes in goats[J].Acta Veterinaria et Zootechnica Sinica,2014,45(12):1924-1931.(in Chinese)
[45] SIEPEL A,BEJERANO G,PEDERSEN J S,et al.Evolutionarily conserved elements in vertebrate,insect,worm,and yeast genomes[J].Genome Res,2005,15(8):1034-1050.
[46] YOKOMINE T,SHIROHZU H,PURBOWASITO W,et al.Structural and functional analysis of a 0.5-Mb chicken region orthologous to the imprinted mammalian Ascl2/Mash2-Igf2-H19region[J].Genome Res,2005,15(1):154-165.
[47] HO E S,GUNDERSON S I.Long conserved fragments upstream of Mammalian polyadenylation sites [J].Genome Biol Evol,2011,3:654-666.
[48] NECSULEA A,SOUMILLON M,WARNEFORS M,et al.The evolution of lncRNA repertoires and expression patterns in tetrapods[J].Nature,2014,505 (7485):635-640.
[49] WASHIETL S,KELLIS M,GARBER M.Evolutionary dynamics and tissue specificity of human long noncoding RNAs in six mammals[J].Genome Res,2014,24(4):616-628.
(編輯 郭云雁)
The Progress on Long Noncoding RNAs in Farm Animals
DAI Meng-h(huán)ong,LU Qi-rong,CHENG Gu-yue,LI Li,LIU Meng-ke,HAO Hai-h(huán)ong,WANG Xu,YUAN Zong-h(huán)ui*
(National Reference Laboratory of Veterinary Drug Residues(Huazhong Agricultural University)/Laboratory for Risk Assessment of Quality and Safety of Livestock and Poultry Products(Wuhan)of Ministry of Agriculture/Key Laboratory for Detection of Veterinary Drug Residues of Ministry of Agriculture/College of Veterinary Medicine,Huazhong Agricultural University,Wuhan 430070,China)
Abstract:Long noncoding RNAs(lncRNAs)are a class of noncoding RNAs with longer in length than 200nucleotides that function is multifaceted in epigenetic regulation,transcriptional regulation and post-transcriptional regulation.LncRNAs have important roles in many biological processes including cell proliferation,differentiation and apoptosis.In recent years,more and more attention has been paid to the research of lncRNAs in farm animals.It is found that lncRNAs play important role in the growth and development of animals.In this review,we highlight the advances on the high throughput screening,identification,expression,evolution and function of lncRNAs in important farm animal species,such as pig,chicken,sheep and cattle in the past 15years.
Key words:long noncoding RNAs;farm animals;high throughput screening;expression;evolution;function
中圖分類號:S813.3
文獻標(biāo)志碼:A
文章編號:0366-6964(2016)05-0864-06
doi:10.11843/j.issn.0366-6964.2016.05.002
收稿日期:2015-09-15
基金項目:國家重點基礎(chǔ)研究發(fā)展計劃“973”計劃(2013CB127201)
作者簡介:戴夢紅(1975-),女,湖北紅安人,副教授,博士,主要從事細(xì)菌耐藥性和抗菌藥物分子作用機理研究,E-mail:daimenghong@mail.hzau.edu.cn
*通信作者:袁宗輝,教授,博士生導(dǎo)師,E-mail:yuan5802@mail.hzau.edu.cn