牦牛和雄性不育犏牛睪丸ERK1、ERK2、P38基因mRNA水平的比較

雷杰雯， 黃林， 金素鈺， 鄭玉才

(西南民族大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院，成都610041)

牦牛和雄性不育犏牛睪丸ERK1、ERK2、P38基因mRNA水平的比較

雷杰雯， 黃林， 金素鈺， 鄭玉才*

(西南民族大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院，成都610041)

MAPK信號(hào)通路對(duì)哺乳動(dòng)物的精子發(fā)生與凋亡有重要的調(diào)節(jié)作用，被認(rèn)為是精子發(fā)生的重要決定因素之一。本研究通過(guò)比較MAPK信號(hào)通路中ERK1、ERK2、P38基因在牦牛及其雜交后代犏牛睪丸組織中的相對(duì)表達(dá)量，探索犏牛雄性不育的分子機(jī)制。實(shí)驗(yàn)從成年雄性牦牛(n=10)和犏牛(n=7)的睪丸組織中提取總RNA，采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)檢測(cè)牦牛和犏牛睪丸組織中ERK1、ERK2、P38基因mRNA水平。結(jié)果表明：牦牛睪丸中ERK1、ERK2基因的表達(dá)量極顯著高于犏牛(P<0.01)，P38基因在牦牛和犏牛睪丸中均有表達(dá)，但差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。提示ERK1、ERK2基因作為MAPK信號(hào)通路的重要成員，可能與犏牛睪丸精子發(fā)生障礙有一定關(guān)聯(lián)。

牦牛；犏牛；MAPK信號(hào)通路；ERK1；ERK2；P38；

絲裂原活化蛋白激酶(mitogen activated protein kinases, MAPKs)是在動(dòng)物細(xì)胞內(nèi)廣泛存在的一類絲/蘇氨酸蛋白激酶，重要的家族成員有：細(xì)胞外信號(hào)調(diào)節(jié)蛋白激酶(ERK1/2)、c-JNK末端激酶/應(yīng)激活化蛋白激酶(JNK/SAPK)、P38絲裂原活化蛋白激酶(P38 MAPK)和ERK5/大絲裂素活化蛋白激酶(BMK1)。ERK1/2和P38在MAPK中是2條相對(duì)獨(dú)立的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路，前者可被細(xì)胞因子、生長(zhǎng)因子、神經(jīng)遞質(zhì)和激素等激活，通過(guò)磷酸化胞漿蛋白、核轉(zhuǎn)錄因子、細(xì)胞骨架蛋白及酶類等促進(jìn)細(xì)胞的增殖、生長(zhǎng)和分化(Galabova-Kovacsetal.，2006；Roskoski，2012)；而P38 MAPK能被一些環(huán)境應(yīng)激、炎癥信號(hào)和生長(zhǎng)因子激活，促進(jìn)細(xì)胞凋亡、炎癥反應(yīng)、生長(zhǎng)抑制等(Lysiaketal.，2000；Gangwanietal.，2015)。大量文獻(xiàn)報(bào)道，MAPK信號(hào)通路對(duì)哺乳動(dòng)物生精細(xì)胞及精子的發(fā)生與凋亡、精子在附睪中的成熟、卵細(xì)胞受精前的精子獲能和頂體反應(yīng)等有重要的調(diào)節(jié)作用(Liuetal.，2014；Zhuetal.，2015)，被認(rèn)為是精子發(fā)生的重要決定因素之一(Alomg & Naor，2010)。

牦牛Bosgrunniens與普通牛雜交的后代——犏牛具有明顯的雜種優(yōu)勢(shì)，但雜種F1～F3代犏牛雄性不育，這嚴(yán)重阻礙了犏牛雜種優(yōu)勢(shì)的橫向保留和縱向遺傳。因此，探明犏牛雄性不育的機(jī)理是牦牛雜交育種與改良需要解決的重要科學(xué)問(wèn)題。本實(shí)驗(yàn)室前期對(duì)牦牛和犏牛睪丸組織差異表達(dá)miRNA的KEGG分析表明，富集最多的是MAPK通路(Lietal.，待發(fā)表)，提示該信號(hào)通路可能與犏牛雄性不育有關(guān)。有研究發(fā)現(xiàn)，ERK1、ERK2、P38 MAPK在不同階段的生精細(xì)胞中均有表達(dá)(Ranawat & Bansal，2009)。ERK1/2參與睪丸組織中細(xì)胞的增殖及精子發(fā)生過(guò)程中有絲分裂以及減數(shù)分裂的調(diào)控(Setteetal.，1999)，而P38 MAPK參與生精細(xì)胞的凋亡過(guò)程(Zhuetal.，2015)。F1代犏牛睪丸中的支持細(xì)胞、生殖細(xì)胞、間質(zhì)細(xì)胞數(shù)量較少，且精原細(xì)胞凋亡數(shù)量較多(張旭靜，2001)。因此，本研究的假設(shè)是：雄性不育犏牛與牦牛睪丸中MAPK通路中的相關(guān)基因可能存在表達(dá)差異。本研究采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)檢測(cè)牦牛和犏牛睪丸中ERK1、ERK2、P38基因mRNA的表達(dá)水平，以期從信號(hào)通路變化上探索犏牛雄性不育的分子機(jī)制。

1 材料與方法

1.1 樣品采集

于秋季在成都市青白江一屠宰場(chǎng)采集麥洼牦牛和犏牛(母麥洼牦牛與公黃牛的雜交后代)的睪丸樣品。實(shí)驗(yàn)動(dòng)物包括健康的成年雄性牦牛10頭和雄性犏牛7頭，在商業(yè)化屠宰時(shí)迅速采集新鮮睪丸，經(jīng)過(guò)適當(dāng)分割后置于干冰中冷凍，立即帶回實(shí)驗(yàn)室并保存于-80 ℃冰箱中。

1.2 主要試劑和儀器

主要試劑包括：Trizol Reagent(美國(guó)Ambion公司)，QuantiFast SYBR Green PCR Kit(德國(guó)QIAGEN公司)，RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit(美國(guó)Thermo Scientific公司)，Cycle-pure Kit(美國(guó)OMEGA公司)，Long Taq DNA Polymerase(美國(guó)GeneCopoeia公司)。

主要儀器包括：Biowave DNA紫外可見分光光度計(jì)(英國(guó)Biochrom公司)，CFX96 TouchTM熒光定量PCR儀(美國(guó)Bio-Rad公司)，CR21G高速冷凍離心機(jī)(日本日立公司)。

1.3 睪丸總RNA的提取及反轉(zhuǎn)錄

采用Trizol試劑按試劑盒說(shuō)明提取牦牛和犏牛睪丸組織的總RNA，紫外分光光度法測(cè)定濃度。根據(jù)反轉(zhuǎn)錄試劑盒RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit說(shuō)明書的步驟，以4 μg總RNA為模板進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄，得到cDNA。

1.4 引物設(shè)計(jì)與PCR擴(kuò)增

參照普通牛ERK1、ERK2、P38基因的預(yù)測(cè)序列(GenBank登錄號(hào)：NM_001110018、NM_175793、NM_001102174)，以及普通牛GAPDH、18s RNA基因的預(yù)測(cè)序列(GenBank登錄號(hào)：NM_001034034、NR_036642)，用Primer Premier 5.0分別設(shè)計(jì)目的基因和內(nèi)參基因的定量PCR引物(表1)，并由上海生工生物工程有限公司合成。

將反轉(zhuǎn)錄得到的牦牛睪丸組織cDNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增，本實(shí)驗(yàn)采用25 μL的PCR反應(yīng)體系：超純水9.5 μL，模板cDNA 1 μL，Long Taq DNA Polymerase 12.5 μL，上、下游引物各1 μL。PCR反應(yīng)條件：預(yù)變性(95 ℃ 4 min)；變性(95 ℃ 30 s)，退火(ERK1：66 ℃ 15 s；ERK2：66 ℃ 30 s；P38：68 ℃ 20 s)，延伸(72 ℃ 30 s)，35個(gè)循環(huán)；再72 ℃ 5 min，最后4 ℃保存。擴(kuò)增產(chǎn)物1.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。

表1 本實(shí)驗(yàn)引物信息Table 1 Primers used in this study

1.5 睪丸組織ERK1、ERK2、P38基因mRNA的定量PCR分析

分別對(duì)上述基因進(jìn)行PCR擴(kuò)增，根據(jù)PCR純化試劑盒說(shuō)明書步驟將產(chǎn)物純化后進(jìn)行10倍梯度稀釋，將稀釋梯度濃度為每毫升104～109拷貝數(shù)的產(chǎn)物作為模板，進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

以反轉(zhuǎn)錄的牦牛和犏牛睪丸組織cDNA為模板，采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法檢測(cè)ERK1、ERK2、P38基因在牦牛和犏牛睪丸中的相對(duì)表達(dá)量。實(shí)時(shí)熒光定量PCR反應(yīng)體系同前。PCR反應(yīng)條件：預(yù)變性(95 ℃ 5 min)；變性(95 ℃ 15 s)，退火(ERK1：66 ℃ 15 s；ERK2：66 ℃ 20 s；P38：68 ℃ 20 s)；延伸(72 ℃ 15 s)，40個(gè)循環(huán)；65 ℃～95 ℃制作熔解曲線。每個(gè)樣品做2個(gè)重復(fù)。

1.6 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)

將牦牛睪丸目的基因的表達(dá)量作為對(duì)照，用雙內(nèi)參基因GAPDH和18s RNA的幾何平均數(shù)進(jìn)行校準(zhǔn)。2-△△Ct法計(jì)算ERK1、ERK2、P38基因在牦牛和

犏牛睪丸組織中的相對(duì)表達(dá)水平(Livak & Schmittgen，2001)。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)用平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示，定量結(jié)果用SPSS 19.0進(jìn)行單因素方差分析。

2 結(jié)果

2.1 牦牛睪丸ERK1、ERK2、P38基因的PCR擴(kuò)增結(jié)果

根據(jù)普通牛ERK1、ERK2、P38基因預(yù)測(cè)序列設(shè)計(jì)的定量PCR引物，均從牦牛睪丸cDNA中擴(kuò)增出特異性高的產(chǎn)物，條帶亮、無(wú)雜帶，且與預(yù)期片段長(zhǎng)度相符(圖1)。

圖1 牦牛睪丸ERK1、ERK2、P38基因的PCR擴(kuò)增結(jié)果

Fig. 1 Amplification ofERK1，ERK2 andP38 genes of yak testis

M. DL2000 Marker，A： 1～4.ERK1基因, B： 1～3.P38基因， 4.ERK2基因。

M. DL2000 Marker，A： 1～4.ERK1 gene, B： 1～3.P38 gene， 4.ERK2 gene.

2.2ERK1、ERK2、P38基因?qū)崟r(shí)熒光定量PCR標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立

以GAPDH和18s RNA為內(nèi)參基因，對(duì)牦牛和犏牛睪丸中ERK1、ERK2、P38基因mRNA水平進(jìn)行了實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)，ERK1、ERK2、P38基因擴(kuò)增效率依次為98.6%、93.8%和98.2%，擴(kuò)增效率均在CFX96 TouchTM熒光定量PCR儀要求的有效范圍內(nèi)(92%～105%)。3個(gè)目的基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線線性關(guān)系好(R2>0.99)，且熔解曲線峰單一，表明它們均被特異性擴(kuò)增(圖2)。

2.3 牦牛和犏牛睪丸ERK1、ERK2、P38基因mRNA水平分析

實(shí)時(shí)熒光定量PCR結(jié)果顯示，ERK1、ERK2基因在牦牛睪丸中的表達(dá)量極顯著高于犏牛(P<0.01)，其中牦牛的ERK1基因表達(dá)是犏牛的6倍，牦牛的ERK2基因表達(dá)是犏牛的2.4倍，而P38基因表達(dá)差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(圖3)。

3 討論

本研究從牦牛睪丸總RNA中分別特異性擴(kuò)增出ERK1、ERK2、P38基因。實(shí)時(shí)熒光定量PCR結(jié)果顯示，ERK1、ERK2基因在牦牛睪丸中的表達(dá)量極顯著高于犏牛，提示這2個(gè)基因可能與牦牛睪丸精子的發(fā)生有密切聯(lián)系。根據(jù)相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)道，犏牛睪丸組織中與精子發(fā)生相關(guān)的以及與哺乳動(dòng)物精母細(xì)胞減數(shù)分裂相關(guān)的SYCP3基因、Dmart7基因、DDX4基因mRNA水平均極顯著低于牦牛(屈旭光等，2008；金帥等，2013；周陽(yáng)等，2013)。本實(shí)驗(yàn)室前期研究也發(fā)現(xiàn)，參與精母細(xì)胞減數(shù)分裂的基因如Msch4基因，在犏牛睪丸組織中mRNA水平極顯著低于牦牛(曾琴等，2013)。但牦牛睪丸組織這些基因高表達(dá)于犏牛睪丸組織的原因尚不清楚。ERK1在小鼠精母細(xì)胞減數(shù)分裂中G2/M過(guò)渡期被特異激活，有助于促成熟因子機(jī)制的激活，是減數(shù)分裂中期染色體凝集必不可少的(Setteetal.，1999)。在精母細(xì)胞減數(shù)分裂中的染色體凝集，需要通過(guò)ERK1/2信號(hào)通路激活細(xì)胞周期調(diào)控蛋白激酶家族，促進(jìn)細(xì)胞正常分裂的進(jìn)行(Di Agostinoetal.，2002)。這表明ERK1、ERK2基因參與生殖細(xì)胞減數(shù)分裂的調(diào)控，對(duì)精子的發(fā)生具有十分關(guān)鍵的作用。因此，推測(cè)犏牛睪丸中ERK1、ERK2基因下調(diào)可能影響其正常的精子發(fā)生。

A

(a)標(biāo)準(zhǔn)曲線(b) 熔解曲線

B

(a)標(biāo)準(zhǔn)曲線(b) 熔解曲線

C

(a)標(biāo)準(zhǔn)曲線(b) 熔解曲線圖2 ERK1、ERK2、P38基因的熒光定量PCR標(biāo)準(zhǔn)曲線和熔解曲線Fig. 2 The standard curve and melting curve for fluorescence quantitative PCR of ERK1， ERK2 and P38 genes

A、B、C依次為ERK1、ERK2和P38基因熒光定量PCR的標(biāo)準(zhǔn)曲線(a)和熔解曲線(b); (a) y軸表示Cq值， x軸表示起始模板量， (b) y軸表示隨時(shí)間推移的相對(duì)熒光單位， x軸表示溫度。

A， B， C are the standard curve (a) and melting curve (b) for fluorescence quantitative PCR ofERK1，ERK2 andP38 genes， respectively; (a) y-axis： value of Cq， x-axis： log starting quantity， (b) y-axis： the rate of change of the relative fluorescence， x-axis： temperature.

Ge等(2014)報(bào)道，激活ERK1/2通路能促進(jìn)小鼠睪丸支持細(xì)胞株的生長(zhǎng)。Nan等(2014)研究發(fā)現(xiàn)，抑制ERK1/2的活化可顯著抑制大鼠睪丸支持細(xì)胞的增殖。由此可見ERK信號(hào)通路的激活是睪丸支持細(xì)胞及生殖細(xì)胞增殖所必需的。另外，

圖3ERK1、ERK2、P38基因在牦牛和犏牛睪丸中的相對(duì)表達(dá)量

Fig. 3 Relative expression ofERK1，ERK2 andP38 genes in

the testes of yaks and cattle-yaks

**P<0.01.

ERK1/2信號(hào)通路參與促性腺激素釋放激素誘導(dǎo)的促卵泡素和促黃體素生成，二者是調(diào)節(jié)精子發(fā)生的重要激素(Guretal.，2001)。促卵泡素可激活ERK1/2級(jí)聯(lián)反應(yīng)，誘導(dǎo)小鼠睪丸支持細(xì)胞的膠質(zhì)細(xì)胞源性神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子(GDNF)的表達(dá)，進(jìn)而促進(jìn)生精細(xì)胞增殖，抑制精原干細(xì)胞分化(Hasegawaetal.，2013)。睪丸間質(zhì)細(xì)胞MEK/ERK信號(hào)通路缺失導(dǎo)致睪丸間質(zhì)細(xì)胞發(fā)育不全和高促性腺激素性性腺功能減退癥(Yamashitaetal.，2011)。犏牛睪丸中ERK基因mRNA水平極顯著低于牦牛，可能會(huì)直接或通過(guò)影響與生殖有關(guān)的激素的合成，導(dǎo)致犏牛睪丸組織細(xì)胞異常，影響精子的發(fā)生。

有研究發(fā)現(xiàn)，大鼠睪丸內(nèi)溫度的升高和睪丸激素水平的降低都可激活P38 MAPK，加速精子凋亡(Jiaetal.，2009)。輸精管結(jié)扎后的大鼠初級(jí)精母細(xì)胞發(fā)生凋亡，且其凋亡與P38的激活存在時(shí)間和空間上的關(guān)系，表明P38與生精細(xì)胞的凋亡密切相關(guān)(Zhuetal.，2015)。本研究中P38基因mRNA在牦牛和犏牛睪丸中均有表達(dá)，但表達(dá)量差異不顯著，這可能與P38 MAPK主要參與炎性刺激所引發(fā)的細(xì)胞凋亡及熱誘導(dǎo)精子損傷有關(guān)(Rahmanetal.，2014)。有報(bào)道表明，犏牛睪丸中細(xì)胞凋亡顯著高于牦牛(張旭靜，2001；Louetal.，2014)，但本研究結(jié)果提示，犏牛睪丸中生精細(xì)胞的凋亡可能并不依賴于P38 MAPK信號(hào)通路。

金帥， 郭憲， 包鵬甲， 等. 2013. 牦牛和犏牛Dmrt7基因序列分析及其在睪丸組織中的表達(dá)水平[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)， 46(5)： 1036-1043.屈旭光， 李齊發(fā)， 劉振山， 等. 2008. 牦牛、犏牛睪丸組織中SYCP3基因mRNA表達(dá)水平研究[J]. 畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào)， 39(8)： 1132-1136.

曾琴， 黃林， 金素鈺， 等. 2013. 牦牛和犏牛睪丸組織Msh4基因mRNA表達(dá)差異的研究[J]. 黑龍江畜牧獸醫(yī)， 11： 62-64.

張旭靜. 2001. 牦牛和普通牛種間雜種公牛睪丸的組織學(xué)觀測(cè)與研究[J]. 畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào)， 32(4)： 314-318.

周陽(yáng)， 駱驊， 李伯江， 等. 2013. 牦牛和犏牛睪丸組織DDX4基因mRNA表達(dá)水平與啟動(dòng)子區(qū)甲基化[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)， 46(3)： 630-638.

Alomg T， Naor Z. 2010. The role of mitogen activated protein kinase (MAPK) in sperm functions[J]. Molecular and Cellular Endocrinology， 314(2)： 239-243.

Di Agostino S， Rossi P， Geremia R，etal. 2002. The MAPK pathway triggers activation of Nek2 during chromosome condensation in mouse spermatocytes[J]. Development， 129(7)： 1715-1727.

Galabova-Kovacs G， Kolbus A， Matzen D，etal. 2006. ERK and beyond： insights from B-Raf and Raf-1 conditional knockouts[J]. Cell Cycle， 5(14)： 1514-1518.

Gangwani MR， Kumar A. 2015. Multiple protein kinases via activation of transcription factors NF-κB， AP-1 and C/EBP-δ regulate the IL-6/IL-8 production by HIV-1 Vpr in astrocytes[J]. PLoS ONE， 10(8)： e0135633.

Ge LC， Chen ZJ， Liu HY，etal. 2014. Involvement of activating ERK1/2 through G protein coupled receptor 30 and estrogen receptor α/β in low doses of bisphenol A promoting growth of sertoli TM4 cells[J]. Toxicology Letters， 226(1)： 81-89.

Gur G， Bonfil D， Safarian H，etal. 2001. GnRH receptor signaling in tilapia pituitary cells： role of mitogen-activated protein kinase (MAPK) [J]. Comparative Biochemistry and Physiology B-Biochemistry & Molecular Biology, 129(2-3)： 517-524.

Hasegawa K， Namekawa SH， Saga Y. 2013. MEK/ERK signaling directly and indirectly contributes to the cyclical self-renewal of spermatogonial stem cells[J]. Stem Cells， 31(11)： 2517-2527.

Jia Y， Castellanos J， Wang C. 2009. Mitogen-activated protein kinase signaling in male germ cell apoptosis in the rat[J]. Biology of Reproduction， 80(4)： 771-780.

Liu Z， Wang B， He R，etal. 2014. Calcium signaling and the MAPK cascade are required for sperm activation inCaenorhabditiselegans[J]. Biochimica et Biophysica Acta， 1843(2)： 299-308.

Livak KJ， Schmittgen TD. 2001. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2 (-Delta Delta C(T)) method[J]. Methods， 25(4)： 402-408.

Lou YN， Liu WJ， Wang CL，etal. 2014. Histological evaluation and Prdm9 expression level in the testis of sterile male cattle-yaks[J]. Livestock Science， 160： 208-213.

Lysiak JJ， Turner SD， Turner TT. 2000. Molecular pathway of germ cell apoptosis following ischemia/reperfusion of the rat testis[J]. Biology of Reproduction， 63(5)： 1465-1472.

Nan Y， Zhang X， Yang G，etal. 2014. Icariin stimulates the proliferation of rat sertoli cells in an ERK1/2-dependent mannerinvitro[J]. Andrologia， 46(1)： 9-16.

Rahman MB， Vandaele L， Rijsselaere T，etal. 2014. Bovine spermatozoa react toinvitroheat stress by activating the mitogen-activated protein kinase 14 signalling pathway[J]. Reproduction Fertility and Development, 26(2)： 245-257.

Ranawat P， Bansal MP. 2009. Apoptosis induced by modulation in selenium status involves p38 MAPK and ROS： implications in spermatogenesis[J]. Molecular and Cellular Biochemistry， 330(1-2)： 83-95.

Roskoski RJ. 2012. ERK1/2 MAP kinases： structure， function， and regulation[J]. Pharmacological Research， 66(2)： 105-143.

Sette C， Barchi M， Bianchini A，etal. 1999. Activation of the mitogen-activated protein kinase ERK1 during meiotic progression of mouse pachytene spermatocytes[J]. Journal of Biological Chemistry， 274(47)： 33571-33579.

Yamashita S， Tai P， Charron J，etal. 2011. The leydig cell MEK/ERK pathway is critical for maintaining a functional population of adult leydig cells and for fertility[J]. Molecular Endocrinology， 25(7)：1211-1222.

Zhu M， Sun WJ， Wang YL，etal. 2015. P38 participates in spermatogenesis and acrosome reaction prior to fertilization in Chinese mitten crabEriocheirsinensis[J]. Gene， 559(2)： 103-111.

Comparison of the mRNA Expression Level ofERK1，ERK2 andP38 Genes in the Testes of Yaks and Sterile Cattle-yaks

LEI Jiewen， HUANG Lin， JIN Suyu， ZHENG Yucai*

(College of Life Science and Technology， Southwest University for Nationalities， Chengdu 610041， China)

MAPK signaling pathway plays an important role in the regulation of spermatogenesis and sperm apoptosis in mammals， and it is considered to be one of the important determinants of spermatogenesis. To explore the molecular mechanism of male sterility of cattle-yaks， the expression levels ofERK1，ERK2 andP38 genes [the mitogen-activated protein kinase (MAPK) pathway] in the testes of yaks and cattle-yaks were compared in this study. Total RNA was extracted from the testes of yaks (n=10) and cattle-yaks (n=7). The expression levels ofERK1，ERK2 andP38 genes in the testes of yaks and cattle-yaks were examined by real-time fluorescence quantitative PCR. The mRNA expression levels ofERK1 andERK2 genes in the testes of yaks were very significantly higher than those of cattle-yaks (P<0.01). Moreover， although the expression ofP38 gene was detected in both testes of yaks and cattle-yaks， no significant difference was found. The results of this study suggested thatERK1 andERK2 may be associated with the abnormal spermatogenesis in cattle-yak testes through MAPK signaling pathway.

yak; cattle-yak; MAPK signaling pathway;ERK1;ERK2;P38

2016-05-02 接受日期：2016-06-15

國(guó)家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(31240053); 西南民族大學(xué)研究生創(chuàng)新項(xiàng)目(CX2015SZ083)

雷杰雯(1992—)， 女， 碩士研究生， 研究方向?yàn)閯?dòng)物功能基因組學(xué)， E-mail：jiewenlei@yeah.net

*通信作者Corresponding author， E-mail：yucaizheng65@hotmail.com

10.11984/j.issn.1000-7083.20160109

Q959.8; Q78

A

1000-7083(2016)05-0666-06