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    金雀異黃素對尼羅羅非魚(Oreochromis niloticus)生長及生長軸相關(guān)基因表達的影響

    2016-01-09 02:39:06金秋燕
    飼料工業(yè) 2016年6期
    關(guān)鍵詞:生長影響

    ■陳 棟 金秋燕

    (青島理工大學(xué)環(huán)境與市政工程學(xué)院,山東青島 266033)

    魚粉是魚飼料中的主要蛋白源,過度捕撈和不良氣候致使世界魚粉的總產(chǎn)量逐步下降,而需求量又不斷加大,這種供需矛盾導(dǎo)致魚粉價格急劇上升[1]。而具有消化吸收率高、氨基酸組成好、價格低廉和資源豐富的大豆蛋白逐步成為首選替代品[2]。但大豆蛋白中富含大豆異黃酮,金雀異黃素、黃豆苷元和黃豆黃素是大豆異黃酮中含量最豐富的三種物質(zhì),它們在不同大豆源中的濃度大約為619.1~2 367.9、539.5~1 737.7、291.5~600.8 μg/g[3]。在實際生產(chǎn)中,金雀異黃素和黃豆苷元在大豆?jié)饪s蛋白中檢出量最高可達到5 900和1 990 μg/g[4],當(dāng)飼料中的50%魚粉完全被大豆?jié)饪s蛋白替代時,飼料中的金雀異黃素和黃豆苷元將分別接近3 000和1 000 μg/g。大豆異黃酮對魚類[5]、畜禽[6]和人類[7]均具有潛在的生物學(xué)作用。在畜禽中,黃豆苷元通常作為提高生殖性能、促進生長和增強機體免疫力的綠色添加劑廣泛應(yīng)用于畜禽飼料中[8];在魚類中,大豆異黃酮影響研究大多集中在用豆粉替代水產(chǎn)飼料中的魚粉后對魚類生長產(chǎn)生的間接影響上,而對魚類生長直接影響的研究報道比較少,研究結(jié)果之間的差異也比較大[9-12]。

    與高等脊椎動物相似,魚類生長的內(nèi)分泌調(diào)控模式也主要受到下丘腦-垂體-肝臟所組成的生長軸線的調(diào)控,即受到生長激素/胰島素樣生長因子軸(GH/IGF-I)的調(diào)控[13]。下丘腦分泌產(chǎn)生多種神經(jīng)內(nèi)分泌因子,調(diào)控腦垂體生長激素細胞合成并分泌GH,通過血液循環(huán),GH與肝細胞表面的GHR結(jié)合,刺激肝細胞釋放IGF-I,進而促進細胞的增殖和生長[14]。因此,GH、GHR和IGF-I是反映魚類生長性能的重要指標(biāo)。

    金雀異黃素是大豆異黃酮中含量最豐富、生物活性最強的一種物質(zhì)。因此,本文以含不同濃度金雀異黃素的餌料飼喂尼羅羅非魚(Oreochromis niloticus)幼魚,研究金雀異黃素對羅非魚生長性能的影響,并利用real-time PCR方法檢測其對GH/IGF-I生長軸中垂體GH、肝臟GHRs和肝臟IGF-I基因表達的影響,初步探討金雀異黃素對羅非魚生長的影響效應(yīng),為推廣以豆粉為蛋白源的新型魚飼料提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 飼料原料與配方

    以魚粉為主要蛋白源,魚油為脂肪源,小麥粉為糖源,制備4種等氮、等能的實驗飼料(見表1),分別向基礎(chǔ)飼料中添加0、30、300 μg/g和3 000 μg/g的金雀異黃素(購自深圳市美荷生物技術(shù)有限公司)。配制飼料前,各種飼料原料經(jīng)粉碎機預(yù)先粉碎后過80目篩。按表1所示均勻混合,再與水和魚油充分混勻,然后用雙螺桿擠條機(華南理工大學(xué),F-26(Ⅱ)型)加工成型,45℃烘干至水分含量在10%左右。飼料破碎過篩,制備成1.5 mm×3.0 mm大小的顆粒,顆粒飼料密封保存,-20℃?zhèn)溆谩?/p>

    表1 飼料組成及營養(yǎng)水平(干重)

    1.2 實驗動物及飼養(yǎng)管理

    實驗選用兩月齡的“新吉富”品系尼羅羅非魚(Oreochromis niloticus)幼魚,該魚購自國家級青島羅非魚良種場。實驗前,將該魚用基礎(chǔ)飼料(Diet 1)喂食2周以適應(yīng)實驗室內(nèi)養(yǎng)殖環(huán)境,馴養(yǎng)結(jié)束后,羅非魚禁食24 h。挑選體格健壯、規(guī)格一致的羅非魚[(10.47±1.24)g]隨機分配于12個玻璃水族箱(50 L,4個實驗處理組,每組3個重復(fù)),每箱15尾魚。每天上午9:00,下午4:00分2次投喂飼料,投餌量約為平均生物量的5%。投喂結(jié)束后1 h,清除殘餌及糞便。養(yǎng)殖實驗共進行8周,水溫26~30 ℃,溶解氧為6.9~7.1 mg/l,pH值7.4~7.8,14 h/10 h光暗比。

    1.3 樣品收集與分析

    養(yǎng)殖實驗結(jié)束后,禁食24 h,將羅非魚用75 mg/l MS-222(Sigma,St.Louis,MO,USA)麻醉,用吸水紙輕輕地擦凈魚體上的水分,用直尺測量羅非魚的體長(cm),精確至0.01 cm;用分析天平測量體重(g),精確至0.01 g。而后,選取每組15尾魚中的8尾,用剪刀從泄殖孔開始沿腹腔解剖,取出下丘腦、垂體和肝臟等組織,用生理鹽水清洗后,液氮速凍,-80℃保存,用以提取RNA。

    1.4 生長軸mRNA表達分析

    將凍存的組織取出勻漿后,按照Trizol(Invitrogen,Carlsbad,CA,USA)試劑盒說明提取總RNA,根據(jù)OD260值計算RNA樣品濃度,以O(shè)D260/280比值判斷RNA的純度。在反轉(zhuǎn)錄前用DNase I(Promega,Madison,WI,USA)去除痕量的DNA。用反轉(zhuǎn)錄試劑盒(Toyobo,Osaka)將總量為1 μg的RNA在20 μl的反應(yīng)體系中反轉(zhuǎn)錄成cDNA,而后向所得cDNA加入80 μl dH2O,稀釋5倍后保存于-20℃冰箱中備用。

    根據(jù)Genebank中已經(jīng)發(fā)表的基因序列,使用Primer premier 5.0軟件設(shè)計尼羅羅非魚GH、GHR1、GHR2、IGF-I以及內(nèi)參基因β-actin和18S rRNA等基因的引物(見表2),用于real-time PCR擴增。擴增在Eppendorf Mastercycler?ep realplex2(Eppendorf,Germany)real-time PCR儀中進行,所使用的熒光劑為SYBR green mix kit(TaKaRa,Dalian,China)。20 μl的Real-time PCR反應(yīng)體系為10 μl SYBR?Premix Ex TaqTM II,0.4 μl ROX 參考染料,各0.4 μl的上下游引物(10 μmol/l),4 μl cDNA 樣品和 4.8 μl dH2O。反應(yīng)條件為:95 ℃ 30 s,95 ℃ 5 s,60 ℃ 30 s,40個循環(huán)。采用內(nèi)參基因的△Ct法計算目的基因的相對表達量,Ct值表示每個反應(yīng)管內(nèi)基因的熒光信號達到設(shè)定閾值時的所經(jīng)歷的循環(huán)數(shù)。為了對反應(yīng)體系中的基因擴增進行均一化處理,使用β-actin和18S rRNA作為內(nèi)參基因,以兩個內(nèi)參基因Ct值的幾何平均數(shù)作為修正內(nèi)參基因的Ct值,目的基因表達值=log2(2Ct(修正內(nèi)參基因)-Ct(目的基因)+1)。

    表2 熒光實時定量PCR引物序列

    1.5 計算及數(shù)據(jù)分析

    羅非魚的特定生長率、存活率、攝食率和飼料系數(shù)參照以下公式計算。

    特定生長率(SGR,%/d)=100×(ln Wt-ln W0)/t;

    存活率(%)=100×Nt/N0;

    攝食率(FI,%BW/d)=100×Df/[(Wt+W0)/2×t)];

    飼料系數(shù)(FER)=(Wt-W0)/Df。

    式中:Wt——終體重(g);

    W0——初始體重(g);

    Nt——試驗?zāi)~尾數(shù);

    N0——試驗初魚尾數(shù);

    Df——總投飼量(g);

    t——養(yǎng)殖實驗時間(d)。

    將所有數(shù)據(jù)表示為“平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(Mean±SD)”,采用Spss16.0統(tǒng)計軟件對數(shù)據(jù)進行方差分析,采用Tukey's方法分析處理組和對照組數(shù)據(jù)之間的顯著性差異,其中P<0.05為差異顯著;P<0.01為差異極顯著。

    2 結(jié)果

    2.1 金雀異黃素對羅非魚生長性能的影響(見表3)

    表3 金雀異黃素對羅非魚生長性能的影響

    由表3可見,8周后,對照組羅非魚平均體重為(43.75±1.64)g,當(dāng)向飼料中添加30、300 μg/g金雀異黃素時,羅非魚平均體重與對照組相比沒有顯著變化,而添加3 000 μg/g時,比對照組顯著降低,為(36.83±1.80)g(P<0.05)。對照組羅非魚特定生長率為(2.52±0.07)%/d,30、300 μg/g飼料組羅非魚特定生長率與對照組相比無顯著變化,而3 000 μg/g飼料組顯著降低至(2.21±0.09)%/d(P<0.05)。各處理組羅非魚的存活率、攝食率和飼料系數(shù)與對照組相比沒有顯著差異(P>0.05)。

    2.2 金雀異黃素對羅非魚垂體GH mRNA表達的影響(見圖1)

    圖1 金雀異黃素對垂體GH基因表達水平的影響

    如圖1所示,隨著金雀異黃素含量增加,羅非魚垂體GH mRNA水平逐步降低,3 000 μg/g組比對照組顯著降低(P<0.05),而30、300 μg/g組與對照組沒有顯著差異(P>0.05)。

    2.3 金雀異黃素對羅非魚肝臟GHR1、GHR2 mRNA表達的影響(見圖2~圖3)

    圖2 金雀異黃素對肝臟GHR1基因表達水平的影響

    如圖2、圖3所示,各處理組羅非魚肝臟GHR1 mRNA表達水平與對照組相比,沒有顯著差異(P>0.05),而隨著飼料中金雀異黃素添加量的增加,羅非魚肝臟GHR2 mRNA表達水平逐步降低,當(dāng)添加量為3 000 μg/g時,GHR2 mRNA表達水平比對照組顯著降低(P<0.05),而30、300 μg/g組GHR2 mRNA表達水平與對照組沒有顯著差異(P>0.05)。

    圖3 金雀異黃素對肝臟GHR2基因表達水平的影響

    2.4 金雀異黃素對羅非魚肝臟IGF-I mRNA表達的影響(見圖4)

    圖4 金雀異黃素對肝臟IGF-I基因表達水平的影響

    如圖4所示,隨著飼料中金雀異黃素添加量的增加,羅非魚肝臟IGF-I mRNA表達水平呈現(xiàn)下降的趨勢,且當(dāng)添加量為3 000 μg/g時,IGF-I mRNA表達水平比對照組顯著降低(P<0.05),而30、300 μg/g組IGFI mRNA表達水平與對照組沒有顯著差異(P>0.05)。

    3 討論

    本研究中配制的四組飼料蛋白質(zhì)含量均達到了45%,能夠滿足羅非魚對蛋白質(zhì)的營養(yǎng)需求[15]。目前,豆類產(chǎn)品中金雀異黃素最大含量大約為5 900 μg/g[4],因此,當(dāng)用豆粉完全替代魚粉時,飼料中金雀異黃素的最高含量大約3 000 μg/g,所以本實驗中金雀異黃素的最大添加量為3 000 μg/g。一些研究表明,豆粉中存在皂苷、寡糖、凝集素和蛋白酶抑制因子等諸多抗?fàn)I養(yǎng)因子[16],這些因子會通過影響飼料的適口性而降低魚類的食欲,減少魚類的攝食量,進而抑制魚類的生長[17],所以本研究選擇直接向基礎(chǔ)飼料中添加不同濃度的金雀異黃素,進而排除其它抗?fàn)I養(yǎng)因子的影響。實驗結(jié)果也表明,與對照組相比,各處理組羅非魚的攝食率和飼料系數(shù)均沒有顯著變化,羅非魚生長性能的差異主要是由不同濃度金雀異黃素的影響而產(chǎn)生的。

    本研究表明,向飼料中添加較低濃度的金雀異黃素(0~300 μg/g),羅非魚的生長沒有顯著變化,這一結(jié)果與許多研究結(jié)果基本一致,Rodriguez[18]和Catherine等[19]分別發(fā)現(xiàn),500 μg/g的金雀異黃素對尼羅羅非魚(Oreochromis niloticus)和虹鱒魚(Oncorhynchus mykiss)的生長均沒有顯著影響,而Kinarm等[20]也觀察到750 μg/g的金雀異黃素對黃金鱸魚(Perca flavescens)的生長沒有顯著影響。而當(dāng)添加3 000 μg/g的金雀異黃素時,則顯著抑制了羅非魚幼魚的生長,其最終平均體重和特定生長率分別降低了15.82%和12.30%。與此類似,蔡英華[21]也發(fā)現(xiàn),含金雀異黃素3 100 μg/g的飼料顯著抑制了牙鲆(Paralichthys olivaceus)的生長。張偉[5]觀察到,用金雀異黃素含量為7 200 μg/g的飼料飼喂異育銀鯽(Carassius auratus gibelio×Cyprinus carpio)時,其最終平均體重與對照組相比顯著降低了10.4%。但Pollack等[22]的研究卻表明,8 000 μg/g的金雀異黃素對條紋鱸魚(Morone chrysops)的生長沒有顯著影響。以上研究結(jié)果的較大差異可能與實驗魚的種類、發(fā)育階段和魚的性別等因素相關(guān)。盡管金雀異黃素對魚類生長的抑制濃度在不同的研究中差別較大,但根據(jù)已有的研究結(jié)果可以看出,當(dāng)金雀異黃素的含量在mg/g水平時或許才對魚類的生長有潛在的抑制作用。

    魚類的生長主要受到GH/IGF-I生長軸線的調(diào)控[23],GH和IGF-I是該軸線中的核心因子。在正常的環(huán)境條件下,魚類的生長狀況與體內(nèi)GH水平成正相關(guān),處于快速生長期的羅非魚血漿中的GH含量顯著升高[24]。但在某些脅迫條件下,魚體的生長狀況與體內(nèi)的GH水平也可能成負相關(guān)。Fox等[25]將莫桑比克羅非魚禁食4周后,發(fā)現(xiàn)其最終平均體重和特定生長率均顯著降低,但血漿GH含量及垂體GH mRNA表達量卻顯著升高;尼羅羅非魚在含有久效磷農(nóng)藥的水中暴露3周后,其生長受到了顯著的抑制,但其GH水平卻顯著升高[26]。本研究發(fā)現(xiàn),羅非魚垂體GH mRNA的表達水平與羅非魚體生長狀況趨勢一致,均隨著金雀異黃素含量的增加而逐步降低,3 000 μg/g的金雀異黃素顯著抑制了垂體GH mRNA的表達,進而抑制了魚體的生長。

    IGF-I通過調(diào)控細胞代謝,促進細胞的有絲分裂、分化而介導(dǎo)GH的促生長作用,與GH相比,魚體的生長狀況與IGF-I水平有更高的相關(guān)性。在不同的溫度條件下,尼羅羅非魚的最終平均體重與肝臟IGF-I mRNA表達量呈顯著正相關(guān)[27]。莫桑比克羅非魚禁食2周后,其最終平均體重和特定生長率均顯著下降,與此同時,其血漿IGF-I含量及肝臟IGF-I mRNA表達量也顯著降低[28]。而且,魚類垂體GH可以促進肝臟IGF-I基因的表達,并能提高血漿IGF-I濃度[29]。本研究中,3 000 μg/g金雀異黃素顯著抑制了垂體GH mRNA的表達,這與肝臟IGF-I mRNA表達量和魚體生長狀況的變化趨勢一致,均是隨著金雀異黃素含量的增加而逐步降低,且3 000 μg/g飼料組比對照組顯著降低。因此,金雀異黃素可通過抑制垂體GH而抑制肝臟IGF-I的合成,進而抑制羅非魚的生長。

    GH與肝臟表面的GHR結(jié)合后,刺激肝細胞合成并分泌IGF-I,因此GHR對IGF-I有重要的調(diào)控作用,其表達水平在某種程度上能夠反映動物的生長狀況。鄭艷研究表明,GHR2是介導(dǎo)GH促生長作用的主要因子,其對GH的親和力遠高于GHR1[26]。本研究也發(fā)現(xiàn),3 000 μg/g金雀異黃素顯著抑制了GHR2 mRNA的表達,而對GHR1 mRNA的表達沒有顯著影響。由此可見,由于GHR2表達量的下降引起了IGFI表達水平的降低,進而抑制了羅非魚的生長。

    具有雌激素活性物質(zhì)能夠影響魚類GHRs的表達。Lori(2009)研究表明,E2能夠顯著抑制雄性羅非魚GHR1和GHR2的表達;o,p’-DDE能夠顯著抑制GHR2的表達,而對GHR1表達沒有影響;七氯同樣能夠顯著抑制GHR2的表達,但對GHR1表達有顯著的促進作用[30]。關(guān)于這些雌激素活性物質(zhì)調(diào)控GHRs表達的機理是通過與ERs結(jié)合還是通過影響甲狀腺激素或神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)揮作用目前還不清楚,有待進一步研究。

    4 結(jié)論

    ①30、300 μg/g金雀異黃素對羅非魚終末均重和特定生長率均未產(chǎn)生顯著影響,3 000 μg/g金雀異黃素顯著降低了羅非魚的生長,各處理組對羅非魚的攝食率和飼料系數(shù)均未產(chǎn)生顯著影響。

    ②隨著金雀異黃素含量的增加,羅非魚垂體GH和肝臟IGF-I mRNA表達量逐步降低,3 000 μg/g飼料組顯著降低。各處理組對羅非魚肝臟GHR1 mRNA表達量沒有顯著影響,3 000 μg/g飼料組顯著降低了GHR2 mRNA表達量。

    ③高濃度金雀異黃素可通過抑制尼羅羅非魚生長軸相關(guān)基因的表達,進而抑制魚類的生長。

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