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    低胰蛋白酶抑制劑全豆豆?jié){的研制

    2015-12-22 07:42:24霍建冶王建光吳超義成玉梁江南大學食品學院江蘇無錫214122
    安徽農(nóng)業(yè)科學 2015年14期
    關(guān)鍵詞:豆?jié){中性蛋白酶

    霍建冶,王建光,吳超義,錢 和,成玉梁(江南大學食品學院,江蘇無錫214122)

    不排豆渣的全豆豆?jié){是利用超微粉碎技術(shù)實現(xiàn)大豆營養(yǎng)全利用的豆?jié){,口感細膩,富含大豆蛋白、膳食纖維等營養(yǎng)物質(zhì)。大豆蛋白是一種理想的植物蛋白,氨基酸種類齊全,其中人體所必需的8種氨基酸的含量基本上與聯(lián)合國衛(wèi)生組織所建議的相近[1]。但是,大豆蛋白中有抗營養(yǎng)因子胰蛋白酶抑制劑[2]。胰蛋白酶抑制劑對人體的危害主要表現(xiàn)在抑制人體胰蛋白酶活性,食用未完全除去胰蛋白酶抑制劑的豆制品時,不僅會抑制人體對蛋白質(zhì)的消化吸收,還會引起胰腺腫大等中毒癥狀[3]。研究表明,當大豆中的胰蛋白酶抑制劑含量降低90%以上時才被認為可放心食用。主要的去除方法包括物理處理法、化學處理法和生物處理法等。其中物理法鈍化是研究最廣泛的,而熱失活是常用的鈍化大豆胰蛋白酶抑制劑的方法。但過度加熱將導致大豆中某些氨基酸,尤其是賴氨酸、精氨酸和色氨酸等堿性氨基酸利用率下降[4]?;瘜W處理方法主要有尿素處理、乙醇處理等。操作方便,但有化學物質(zhì)殘留,應(yīng)用較少。生物學方法主要有酶制劑處理法、微生物發(fā)酵法、發(fā)芽處理法等。大豆胰蛋白酶抑制劑可以被蛋白酶水解,改變活性中心而失活[5]。應(yīng)用酶法消除大豆蛋白中的胰蛋白酶抑制劑具有效率高,保護營養(yǎng)成分,安全無殘留等優(yōu)點。筆者創(chuàng)新性地在打漿階段加入中性蛋白酶,研究其對胰蛋白酶抑制劑的鈍化效果,以期為工業(yè)化生產(chǎn)提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 材料與試劑。東北大豆;中性蛋白酶(活力大于1 600 AZO/g);牛胰蛋白酶;氫氧化鈉;甲醛溶液;苯甲酰-DL-精氨酸-p-硝基酰替苯胺鹽酸鹽(BAPA);Tris;氯化鈣;鹽酸溶液;冰醋酸;β-環(huán)糊精。

    1.1.2 主要設(shè)備。打漿機,膠體磨,恒溫磁力攪拌器,高壓均質(zhì)機,激光粒度分析儀,分光光度計,水浴鍋。

    1.2 試驗方法

    1.2.1 全豆豆?jié){制備方法。大豆除殘、除雜、清洗后,按1∶3的豆水質(zhì)量比于4℃下浸泡18 h。將浸泡完全的大豆瀝干,置于沸騰的0.5%(W/V)的NaHCO3溶液中進行熱燙處理6 min。

    將熱燙后的濕豆沖洗至中性后和一定溫度去離子水按一定比例混合,加入一定量的中性蛋白酶,打漿機粗粉碎2 min后靜置讓蛋白酶充分反應(yīng)。酶解片刻后迅速將豆?jié){加熱至80℃保溫10 min滅酶。

    滅酶后的豆?jié){使用膠體磨粉碎1 min,然后使用高壓均質(zhì)機進一步細化豆?jié){,最終得到口感細膩的全豆豆?jié){。

    1.2.2 胰蛋白酶抑制劑含量的測定。將樣品稀釋,使其產(chǎn)生40%~60%的抑制百分率。分別加溶液于下面4個10 ml具塞玻璃離心管中:(a)標準空白。5 ml BAPA溶液,3 ml去離子水,1 ml 5.3 mol/L醋酸。(b)標準溶液。5 ml BAPA溶液,3 ml去離子水。(c)樣品空白。5 ml BAPA溶液,1 ml樣品稀釋液,2 ml去離子水,1 ml 5.3 mol/L醋酸。(d)樣品溶液。5 ml BAPA溶液,1 ml樣品稀釋液,2 ml去離子水。將各離心管充分混勻后置于37℃恒溫水浴鍋中溫育10 min。然后各離心管均加入1 ml胰蛋白酶工作液,混勻,繼續(xù)溫育10 min±5 s后于(b)管和(d)管中分別加入1 ml 5.3 mol/L醋酸終止反應(yīng)。充分混合上述溶液,用分光光度計在410 nm用10 mm比色皿測定溶液吸光度(用標準空白調(diào)零)。該溶液能夠保持穩(wěn)定至少2 h[6]。

    結(jié)果計算:

    ①胰蛋白酶抑制百分率。公式如下:

    式中,I為胰蛋白酶抑制百分率;Ar為標準溶液的吸光度;As為樣品溶液的吸光度;Abs為樣品空白吸光度。

    ②胰蛋白酶抑制劑活性。只有樣品提取液胰蛋白酶抑制百分率在40%~60%范圍內(nèi)時,樣品溶液吸光度可用于胰蛋白酶抑制劑活性計算。計算胰蛋白酶抑制劑活性,用每克樣品抑制的胰蛋白酶毫克數(shù)表示,結(jié)果精確至0.1 mg/g。

    式中,TIA為胰蛋白酶抑制劑活性(mg/g);AI=Ar-(As-Abs)為吸光度變化值;V是樣品提取液體積(ml);m是測試樣品的質(zhì)量(g);0.019是1 μg純牛胰蛋白酶在410 nm波長的吸光度;D是樣品的稀釋倍數(shù)。

    ③胰蛋白酶抑制劑鈍化率的計算。計算公式:

    式中,TIA0為根據(jù)未處理大豆折算的豆?jié){中胰蛋白酶抑制劑活性,TIA1為酶解后豆?jié){中胰蛋白酶抑制劑。

    1.2.3 豆?jié){水解度的測定。取水解滅酶后5.0 ml酶解液,置于200 ml燒杯中,加入60 ml無CO2水,開動磁力攪拌器,加少量堿液調(diào)節(jié)pH為8.20,再加入10 ml中性甲醛溶液,用0.5 mol/L NaOH標準溶液調(diào)節(jié)體系pH至9.20,記錄消耗NaOH標準溶液體積為V(ml)。同時取未酶解相同濃度蛋白質(zhì)溶液5.0 ml,按上述方法作空白試驗,記錄消耗NaOH標準溶液體積為V0(ml)。

    式中,C為 NaOH標準溶液濃度(mol/L);V為酶解液消耗NaOH標準溶液體積(ml);V0為空白液消耗NaOH標準溶液體積(ml);0.014為氮毫克當量;N為底物樣品總氮含量(g)。

    1.2.4 酶法鈍化胰蛋白酶抑制劑的單因素試驗。分別考察打漿豆水比:1∶5~1∶9、打漿溫度:30~70℃、蛋白酶添加量:0~20 μl/g、酶解時間:0~30 min對豆?jié){水解度和胰蛋白酶抑制劑鈍化率的影響。

    1.2.5 酶法鈍化胰蛋白酶抑制劑條件的正交試驗優(yōu)化。采用正交試驗對酶解條件進行優(yōu)化,根據(jù)單因素試驗結(jié)果,研究豆水比、打漿溫度、加酶量和酶解時間4個因素對試驗結(jié)果的影響。通過單因素試驗確定4個因素的取值水平范圍,以胰蛋白酶抑制劑鈍化率為指標,以確定最佳水解條件組合。正交試驗組合見表1。

    1.2.6 豆?jié){脫苦效果的感官評定。向酶解完成后的豆?jié){中加入不同質(zhì)量的β-環(huán)糊精,80℃下保溫10 min,經(jīng)過超微粉碎后由10名感官評定員進行評定。表2為感官評定標準。

    2 結(jié)果與分級

    2.1 打漿豆水比對豆?jié){水解度和胰蛋白酶抑制劑鈍化率的影響 打漿時的豆水比影響著底物濃度,豆水比太低,底物濃度低,酶與底物接觸的幾率小,水解度低。豆水比過高,底物濃度高,蛋白質(zhì)分子會通過疏水作用和二硫鍵作用,形成網(wǎng)狀聚合體,降低酶解效率[7]。

    表1 正交試驗因素水平設(shè)計

    表2 感官評分標準

    豆水比分別為 1∶5、1∶6、1∶7、1∶8、1∶9,加酶量為 6 μl/g蛋白,打漿溫度50℃,酶解15 min,結(jié)果如圖1、圖2所示,胰蛋白酶抑制劑(TI)的鈍化率與水解度呈正相關(guān)趨勢。當豆水比1∶7時,豆?jié){水解度和TI鈍化率最高。

    圖1 豆水比對豆?jié){水解度的影響

    圖2 豆水比對胰蛋白酶抑制劑鈍化率的影響

    2.2 打漿溫度對豆?jié){水解度和胰蛋白酶抑制劑鈍化率的影響 保持豆水比1∶7,加酶量為6 μl/g蛋白酶解時間15 min時,研究不同的打漿溫度對水解度和TI鈍化率的影響。如圖3、圖4所示,打漿溫度從30℃提高到50℃,酶解反應(yīng)速度相應(yīng)提高,但是打漿溫度超過50℃后,水解度和胰蛋白酶抑制劑鈍化率降低。

    圖3 打漿溫度對豆?jié){水解度的影響

    打漿過程為升溫過程,打漿結(jié)束后豆?jié){的終溫會影響蛋白酶分子穩(wěn)定性,這是因為蛋白酶分子的肽鍵具有特定的空間結(jié)構(gòu),如果反應(yīng)溫度過高,會引起次級鍵解離,從而使蛋白酶喪失或部分喪失催化活性;但是若反應(yīng)溫度過低,則會大大降低體系內(nèi)分子運動的激烈程度,從而降低蛋白酶與底物的碰撞機率[8]。

    圖4 打漿溫度對胰蛋白酶抑制劑鈍化率的影響

    2.3 蛋白酶添加量對豆?jié){水解度和胰蛋白酶抑制劑鈍化率的影響 保持豆水比1∶7,打漿溫度50℃,蛋白酶解時間15 min時,考察中性蛋白酶添加量對水解度和胰蛋白酶抑制劑鈍化率的影響,結(jié)果如圖5、圖6所示。當添加量大于14 μl/g蛋白時,水解度和胰蛋白酶抑制劑鈍化率變化平緩。

    隨著中性蛋白酶用量增加,酶的催化位點與蛋白分子相應(yīng)位點接觸幾率增多,水解度升高。當這些位點快全部斷裂時,即使繼續(xù)加入蛋白酶,肽鍵都難以再斷裂。

    圖5 中性蛋白酶添加量對豆?jié){水解度的影響

    2.4 酶解時間對豆?jié){水解度和胰蛋白酶抑制劑鈍化率的影響 保持豆水比1∶7,打漿溫度50℃,添加6 μl/g蛋白的中性蛋白酶,考察水解時間對豆?jié){水解度和胰蛋白酶抑制劑鈍化率變化的影響,結(jié)果如圖7、圖8所示。15 min內(nèi)水解度和胰蛋白酶抑制劑迅速上升,20 min后水解度和胰蛋白酶抑制劑鈍化率的變化趨勢平緩。

    圖6 中性蛋白酶添加量對胰蛋白酶抑制劑鈍化率的影響

    圖7 酶解時間對豆?jié){水解度的影響

    圖8 酶解時間對胰蛋白酶抑制劑鈍化率的影響

    2.5 胰蛋白酶抑制劑鈍化條件的優(yōu)化 該試驗采用L9(34)的正交表設(shè)計,正交試驗結(jié)果和極差分析見表2。用SPSS軟件對結(jié)果進行分析處理,建立鈍化率與因素的數(shù)學模型,以胰蛋白酶抑制劑鈍化率為指標,通過對模型分析獲得最佳工藝條件。由表2可知,影響鈍化率的主次關(guān)系為:豆水比>水解溫度>酶用量>酶解時間。最佳組合為豆水比1∶7、水解溫度50℃、酶用量16 μl/g、酶解時間20 min,在此基礎(chǔ)上進行驗證試驗,胰蛋白酶抑制劑鈍化率為90.5%,符合要求。

    2.6 酶解后豆?jié){的脫苦 結(jié)果如表3所示,當添加3.0%的β-環(huán)糊精時,感官評分最高。當?shù)鞍踪|(zhì)水解時,隨著肽鏈解離,可呈現(xiàn)苦味的疏水性氨基酸殘基或其形成小肽游離出來,產(chǎn)生苦味[9]。β-環(huán)狀糊精是由7個葡萄糖分子連接成的環(huán)狀結(jié)構(gòu)化合物,主體構(gòu)型像個中間有空洞,兩端不封閉的筒[10]。圓筒上部的廣口排列著12個C2,C3的羥基,底部狹窄處有6個C6羥基。因而從整體上看環(huán)糊精是親水的,但是由于環(huán)的內(nèi)側(cè)被C-H所覆蓋,與外側(cè)相比有較強的疏水性。當溶液中同時存在親水和疏水性物質(zhì)時,疏水物質(zhì)則被環(huán)內(nèi)疏水基團吸附而形成包含化合物。對于疏水性多肽來說,該機理的實際效果則是對苦味起到“包埋”作用[11]。另外,β-環(huán)狀糊精本身也帶有淡淡的甜味[12]。

    表2 正交結(jié)果分析

    表3 β-環(huán)糊精用量對豆?jié){感官評定的影響

    3 結(jié)論

    該研究給出了一種利用濕法超微粉碎技術(shù),并在打漿時添加中性蛋白酶來生產(chǎn)低胰蛋白酶抑制劑的全豆豆?jié){的方法,為其工業(yè)化大生產(chǎn)提供了參考。試驗結(jié)果表明,豆?jié){的胰蛋白酶抑制劑鈍化率和水解度呈正相關(guān)趨勢,苦味也會隨著水解度的提高而提高。豆水比1∶7,打漿溫度50℃,加入16 μl/g蛋白質(zhì)的中性蛋白酶,酶解20 min后滅活,可鈍化90%以上的胰蛋白酶抑制劑。添加3.0%的β-環(huán)糊精可以完全掩蔽酶解后豆?jié){的苦味。

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