李思維 牛國棟 劉忠軍 宋純理 張克冷慧杰
(北京大學(xué)第三醫(yī)院骨科,北京100191)
·基礎(chǔ)研究·
1α,25(OH)2D3調(diào)控關(guān)節(jié)軟骨Ⅱ型膠原降解的實驗研究*
李思維 牛國棟 劉忠軍 宋純理 張克**冷慧杰**
(北京大學(xué)第三醫(yī)院骨科,北京100191)
背景:維生素D代謝水平與關(guān)節(jié)炎的關(guān)系仍存在爭議,且維生素D對關(guān)節(jié)軟骨Ⅱ型膠原代謝的調(diào)控機制尚不明晰。深入了解維生素D對骨關(guān)節(jié)炎軟骨代謝的作用,有助于了解骨關(guān)節(jié)炎的病因及發(fā)病機制,為預(yù)防、治療骨關(guān)節(jié)炎提供參考。
目的:在細胞水平和組織塊水平,探討維生素D對關(guān)節(jié)軟骨Ⅱ型膠原代謝的調(diào)控作用。
方法:使用炎癥因子OSM和TNF-α誘導(dǎo)軟骨Ⅱ型膠原降解,對大鼠關(guān)節(jié)軟骨細胞以及牛關(guān)節(jié)軟骨組織塊分別進行1α, 25(OH)2D3干預(yù),通過ELISA檢測細胞上清中Ⅱ型膠原羧基末端肽(CTX-Ⅱ)水平,從而評估維生素D對軟骨Ⅱ型膠原代謝的調(diào)控作用。
結(jié)果:1α,25(OH)2D3可以提高未經(jīng)OSM和TNF-α誘導(dǎo)的以及OSM和TNF-α誘導(dǎo)后的軟骨細胞的活性。在細胞水平,1α,25(OH)2D3對正常細胞上清中的CTX-Ⅱ的水平?jīng)]有顯著影響。OSM和TNF-α誘導(dǎo)顯著增加了細胞上清中CTX-Ⅱ的水平。1α,25(OH)2D干預(yù)降低了OSM和TNF-α誘導(dǎo)的軟骨細胞上清中CTX-Ⅱ的水平。在組織塊水平,對于正常軟骨組織塊,1α,25(OH)2D3增加了CTX-Ⅱ水平。OSM和TNF-α誘導(dǎo)顯著增加了體外培養(yǎng)關(guān)節(jié)軟骨組織塊軟骨的降解,細胞上清中CTX-Ⅱ水平顯著增高。對于OSM和TNF-α誘導(dǎo)的軟骨組織塊,1α,25(OH)2D3干預(yù)降低了軟骨組織塊Ⅱ膠原的降解,CTX-Ⅱ水平顯著降低。
結(jié)論:1α,25(OH)2D3能夠抑制OSM和TNF-α誘導(dǎo)的Ⅱ型膠原降解作用。維生素D可能通過抑制關(guān)節(jié)炎軟骨的降解起到保護關(guān)節(jié)軟骨的作用。
維生素D;關(guān)節(jié)炎;軟骨細胞;軟骨組織塊培養(yǎng);Ⅱ型膠原羧基末端肽
Background:ound:Disagreementon the relationship between vitam in Dmetabolism and osteoarthritis(OA)stillexists in the literatures.Investigating the role of vitam in D in OA cartilagemetabolism w ill help to well understand the etiology and pathogenesisof OA,andw ill contribute to improvement in the prevention and treatmentof OA.
Objective:tive:To investigate themodulation of vitamin D on collagen typeⅡdegradation atcelland tissue levels.
Methods:hods:Rat articular chondrocytes and bovine articular cartilage explantsw ere stimulated by inflammatory factors(OSM and TNF-α)to imitateOA cartilage chondrocytes,thenwere treated by 1α,25(OH)2D3.C term inal fragmentsof typeⅡcollagen(CTX-Ⅱ)expression in supernatantwasmeasured by ELISA to evaluate degradation of collagenⅡ.
Results:ults:At cellular level,the combined effects of OSM and TNF-αincreased CTX-Ⅱ level in supernatant.1α,25(OH)2D3decreased theCTX-Ⅱ levelw hich was induced by OSM plus TNF-α.A t the tissue level,the stimulation of OSM plus TNF-α increased CTX-Ⅱ level in the supernatant.1α,25(OH)2D3increased the CTX-Ⅱ levels in the normal cartilage tissue.1α,25 (OH)2D3decreased CTX-Ⅱlevels in cartilage tissuew ith OSM plus TNF-αstimulation.
Conclusions:ions:1α,25(OH)2D3can inhibit the degradation of collagenⅡin articular chondrocytes stimulated by OSM plus TNF-α.Vitamin Dmay play a protective role in articular cartilage through regulation of cartilage turnover.
骨關(guān)節(jié)炎(osteoarthritis,OA)是一種慢性退行性關(guān)節(jié)疾病。以關(guān)節(jié)軟骨Ⅱ型膠原纖維降解、蛋白多糖進行性耗損為主要特征。關(guān)節(jié)軟骨Ⅱ型膠原纖維降解主要是由于軟骨組織分解代謝和合成代謝的紊亂,打破了軟骨組織的代謝穩(wěn)態(tài)。這種持續(xù)的異常的軟骨組織代謝紊亂導(dǎo)致關(guān)節(jié)軟骨分解代謝增加和
關(guān)節(jié)炎病理過程的激活,最終形成不可逆的關(guān)節(jié)軟骨破壞和功能障礙[1-3]。
維生素D是一種脂溶性維生素,具有重要的生理作用。研究表明,維生素D缺乏時可導(dǎo)致骨質(zhì)疏松、佝僂病、軟骨病、糖尿病、心血管疾病、多發(fā)硬化、風濕性關(guān)節(jié)炎,甚至結(jié)腸癌、乳腺癌、前列腺癌等[4-8]。維生素D缺乏(血清25-(OH)D3<37.5 nmol/L)是一種常見的全球性疾患,尤其是在北半球的國家和地區(qū)[9]。多項臨床大樣本的流行病研究顯示,低水平血清維生素D3與骨關(guān)節(jié)炎的發(fā)生和進展密切相關(guān)[10-12],但有部分流行病學(xué)實驗發(fā)現(xiàn)維生素D3水平與骨關(guān)節(jié)炎的發(fā)生無相關(guān)性[13,14]。導(dǎo)致這種爭議的原因可能在于實驗設(shè)計、環(huán)境、飲食、生活習慣、種族等多種因素的影響。越來越多的實驗證據(jù)支持維生素D對關(guān)節(jié)軟骨具有積極的保護作用。有實驗表明維生素受體表達于人關(guān)節(jié)軟骨細胞,這說明關(guān)節(jié)軟骨是維生素D的靶組織[15]。動物實驗研究表明25-羥維生素D 1α羥化酶(25-hydroxyvitam in D 1α-hydroxylase)基因敲除直接導(dǎo)致了小鼠顳下頜關(guān)節(jié)炎的進展[16]。在維生素D缺乏的情況下,補充維生素D可顯著降低生長板軟骨膠原酶的活動[17]。而膠原酶是導(dǎo)致軟骨細胞外基質(zhì)降解的重要酶類。維生素D補充也可改善膠原誘導(dǎo)和交叉韌帶離所斷誘導(dǎo)的骨關(guān)節(jié)炎[18,19]。
目前,維生素D對于骨關(guān)節(jié)炎發(fā)病和發(fā)展作用的機理尚不清楚。本研究通過細胞培養(yǎng)和組織塊培養(yǎng),旨在從多個層面探索維生素D在關(guān)節(jié)軟骨Ⅱ型膠原降解中的調(diào)控作用,進一步理解維生素D保護關(guān)節(jié)的機制。
1.1 實驗材料及主要試劑儀器
大鼠膝關(guān)節(jié)軟骨細胞來自新生Sprague-Daw ley大鼠,新鮮牛關(guān)節(jié)軟骨來自北京屠宰場。本研究得到北京大學(xué)醫(yī)學(xué)部倫理委員會批準。主要實驗試劑及儀器如下:1α,25(OH)2D3(Selleck,美國);Ⅱ型膠原酶(Sigma,美國);CCK 8試劑盒(Dojindo,日本);CTX-Ⅱ ELISA試劑盒(HCB,加拿大);0.25%胰蛋白酶,低糖DMEM培養(yǎng)基,胎牛血清,雙抗(Corning,美國);制瘤素M(OSM)(Sino Biological,中國);腫瘤壞死因子-α(TNF-α)(PEPROTRCH,美國)。
1.2 大鼠關(guān)節(jié)軟骨細胞分離與培養(yǎng)
將5只出生24 h內(nèi)的Sprague-Daw ley大鼠脫頸處死,75%乙醇浸泡5m in后取出。用眼科剪和眼科鑷分離膝關(guān)節(jié)的透明軟骨,放入盛有含有雙抗的PBS培養(yǎng)皿中。剔除殘余的軟組織,轉(zhuǎn)移至新的培養(yǎng)皿中,PBS洗4次,每次2m in,棄上清。洗凈的軟骨塊移入6孔板中,用眼科剪將軟骨塊剪碎,加入約2m l的Ⅱ型膠原酶。用吸管充分吹打混勻后,置于37℃、5%CO2、飽和濕度的培養(yǎng)箱中孵育2 h,每隔30m in用塑料吸管吹打一次并收取細胞。加入10%FBS完全培養(yǎng)液終止消化,充分吹打混勻后收集至15m l的離心管中,以800 g/m in的速度,離心5m in,棄上清。加入5m l完全培養(yǎng)基,充分吹打混勻,終止消化,取混懸液分至2個中皿中,置培養(yǎng)箱培養(yǎng)。此后隔日換液。顯微鏡下觀察細胞生長情況,當細胞生長面積達到培養(yǎng)皿底部的80%時進行細胞傳代[20]。
1.3 大鼠關(guān)節(jié)軟骨細胞鑒定
1.3.1 甲苯胺藍染色:取出細胞爬片,PBS洗2次,每次5m in。4%多聚甲醛室溫下固定1 h,再以PBS洗2次,每次5m in。加入1%甲苯胺藍染液,37℃孵育2 h。去除多余的染液,PBS洗2次,每次5m in。最后脫水透明,封片。
1.3.2 Ⅱ型膠原免疫熒光染色:取出細胞爬片,PBS洗2次,每次5m in。4%多聚甲醛固定10m in,PBS洗2次,每次5m in。PBST(PBS加0.1%TritonX100)通透20~30m in,5%BSA室溫封閉1 h。加入Ⅱ型膠原抗體(稀釋度為1∶200),4℃孵育過夜。PBS洗3次,每次5m in,加入異硫氰酸熒光素(FITC)標記的抗兔二抗(稀釋度為1∶200),室溫避光孵育1 h。PBST洗3次,每次5m in,加入10μg/LDAPI室溫避光孵育5m in。熒光顯微鏡下觀察細胞并拍照。
1.4 CCK CCK88法檢測11α,,2525(OH)(OH)22D D33對關(guān)節(jié)軟骨細胞活性的作用
在96孔板上,每孔種植2.5×104個軟骨細胞;過夜,使細胞得以黏附、延伸,具體分組及干預(yù)方式如下:①對照組,0 nmol/L 1α,25(OH)2D3;②無誘導(dǎo)低劑量組,10 nmol/L 1α,25(OH)2D3;③無誘導(dǎo)高劑量組,100nmol/L 1α,25(OH)2D3;④誘導(dǎo)組,20 ng/m l TNF-α,10 ng/m l OSM,0 nmol/L 1α,25(OH)2D3;⑤誘導(dǎo)后低劑量組,20ng/m l TNF-α,10 ng/m lOSM,10 nmol/L 1α, 25(OH)2D3;⑥誘導(dǎo)后高劑量組,20 ng/m l TNF-α,10 ng/m l OSM,100 nmol/L 1α,25(OH)2D3。每組6個復(fù)孔。5%CO2,37℃孵育,倒置顯微鏡下觀察。24 h后每孔內(nèi)加入CCK-8溶液20μl,繼續(xù)孵育3 h,終止培養(yǎng)。檢測以上不同濃度的1α,25(OH)2D3作用后各組軟骨細胞在490 nm波長處的吸光度值(OD值)。
1.5 11α,,2525(OH)(OH)22D D33對大鼠關(guān)節(jié)軟骨細胞Ⅱ型膠原的降解作用
在24孔板上,每孔種植5×104個軟骨細胞,過夜,使細胞貼壁增殖,具體干預(yù)方式如下:①對照組,0 nmol/L 1α,25(OH)2D3;②無誘導(dǎo)低劑量組,10nmol/L 1α,25(OH)2D3;③無誘導(dǎo)高劑量組,100 nmol/L 1α,25 (OH)2D3;④誘導(dǎo)組,10 ng/m l TNF-α,5 ng/m l OSM,0 nmol/L 1α,25(OH)2D3;⑤誘導(dǎo)后低劑量組,10 ng/m l TNF-α,5ng/m lOSM,10nmol/L 1α,25(OH)2D3;⑥誘導(dǎo)后高劑量組,10ng/m l TNF-α,5 ng/m lOSM,100nmol/L 1α,25(OH)2D3。每組3個復(fù)孔。5%CO2,37℃孵育。24h后收取細胞上清。檢測以上不同濃度的1α,25(OH)2D3作用24 h后各組軟骨細胞培養(yǎng)上清中CTX-Ⅱ的濃度。
1.6 11,,2525(OH)(OH)22D D33對體外關(guān)節(jié)軟骨組織塊的降解作用
新鮮完整牛膝關(guān)節(jié)軟骨無菌條件下取材,每組10個軟骨塊,重量為(14±2)mg。放入含有雙抗的PBS中反復(fù)漂洗3次。然后置于96孔板中,每孔加入200μl低糖-DMEM培養(yǎng)基,具體干預(yù)方式及分組如下:①對照組,0 nmol/L 1α,25(OH)2D3;②無誘導(dǎo)低劑量組,10 nmol/L 1α,25(OH)2D3;③無誘導(dǎo)中劑量組,100 nmol/L 1α,25(OH)2D3;④無誘導(dǎo)高劑量組,1000 nmol/L 1α,25(OH)2D3;⑤ 誘導(dǎo)組,20 ng/m l TNF-α,10ng/m lOSM,0 nmol/L 1α,25(OH)2D3;⑥誘導(dǎo)后低劑量組,20ng/m l TNF-α,10 ng/m lOSM,10nmol/L 1α,25(OH)2D3;⑦誘導(dǎo)后中劑量組,20 ng/m l TNF-α,10 ng/m lOSM,100 nmol/L 1α,25(OH)2D3;⑧誘導(dǎo)后高劑量組,20 ng/m l TNF-α,10 ng/m lOSM,1000 nmol/L 1α,25(OH)2D3。組織塊在以上無血清培養(yǎng)基中培養(yǎng)14 d,每7 d更換培養(yǎng)液。收集培養(yǎng)液-80°C凍存。采用酶聯(lián)免疫吸附法測定各實驗條件下從組織塊釋放的CTX-Ⅱ的水平。本法靈敏度為1 pg/m l。
1.7 統(tǒng)計學(xué)分析
采用SPSS 19.0軟件進行統(tǒng)計分析,定量資料采用均數(shù)±標準差表示,組間比較采用One-way Anova檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 關(guān)節(jié)軟骨細胞鑒定
細胞在光鏡下呈梭形或者三角形,鏡下呈鋪路石樣表現(xiàn)(圖1A)。甲苯胺藍染色細胞后呈藍色,提示該細胞表達蛋白聚糖(圖1B)。細胞Ⅱ型膠原免疫熒光染色顯示所有細胞表達Ⅱ型膠原(圖1C),可以確認該細胞為軟骨細胞。
2.2 11α,,2525(OH)(OH)22D D33對關(guān)節(jié)軟骨細胞活性的調(diào)節(jié)作用
與非OSM和TNF-α誘導(dǎo)的軟骨細胞(對照組)相比,OSM和TNF-α誘導(dǎo)后的軟骨細胞(誘導(dǎo)組)活性有所下降,但兩組之間并無顯著統(tǒng)計學(xué)差異(P>0.05,圖2A)。1α,25(OH)2D3干預(yù)對非OSM和TNF-α誘導(dǎo)的軟骨細胞活性具有一定的促進作用,但沒有劑量依賴性(圖2B)。對于OSM和TNF-α誘導(dǎo)的軟骨細胞,10 nmol/L(誘導(dǎo)后低劑量組)和100 nmol/L(誘導(dǎo)后高劑量組)的1α,25(OH)2D3均可提高軟骨細胞的活性(圖2C)。
2.3 11α,,2525(OH)(OH)22D D33對體外培養(yǎng)關(guān)節(jié)軟骨細胞Ⅱ型膠原的代謝作用
與對照組相比,OSM和TNF-α誘導(dǎo)顯著增加了軟骨細胞細胞Ⅱ型膠原的降解。細胞上清中CTX-Ⅱ水平顯著增高(P<0.05,圖3A)。在未經(jīng)OSM和TNF-α誘導(dǎo)的正常軟骨細胞中,不同劑量1α,25(OH)2D3并未增加其CTX-Ⅱ水平(圖3B)。然而在OSM和TNF-α誘導(dǎo)的軟骨細胞,10 nmol/L和100 nmol/L的1α, 25(OH)2D3均降低了軟骨細胞Ⅱ型膠原的降解(圖3C)。
2.4 11α,,2525(OH)(OH)22D D33對體外培養(yǎng)關(guān)節(jié)軟骨組織塊的降解作用
圖1 光鏡下及染色后的細胞形態(tài)觀察
圖2 軟骨細胞活性檢測
與對照組比較,OSM和TNF-α誘導(dǎo)顯著促進了體外培養(yǎng)關(guān)節(jié)軟骨組織塊的降解,細胞上清中CTX-Ⅱ水平顯著增高(P<0.05,圖4A)。對于未經(jīng)OSM和TNF-α誘導(dǎo)的正常軟骨細胞,無誘導(dǎo)低劑量組1α, 25(OH)2D3干預(yù)對細胞上清中CTX-Ⅱ水平?jīng)]有顯著影響。中劑量組和高劑量組1α,25(OH)2D3干預(yù)顯著增加了細胞上清中CTX-Ⅱ水平(圖4B)。對于OSM和TNF-α誘導(dǎo)的軟骨細胞,10、100、1000 nmol/L的1α,25(OH)2D3均降低了軟骨細胞Ⅱ型膠原的降解,CTX-Ⅱ水平顯著降低(圖4C)。
本研究探討了維生素D在關(guān)節(jié)炎軟骨代謝中可能發(fā)揮的作用。實驗結(jié)果顯示無論在炎癥因子刺激的軟骨細胞,還是未經(jīng)刺激的正常軟骨細胞中,維生素D均能改善軟骨細胞的活性,這提示維生素D能夠促進軟骨細胞的生長和增殖。實驗中使用的OSM和TNF-α是兩種在關(guān)節(jié)炎發(fā)生和進展中起著重要作用的細胞因子,二者聯(lián)合應(yīng)用能夠顯著促進軟骨組織的分解代謝[21,22]。本實驗通過細胞因子OSM和TNF-α處理關(guān)節(jié)軟骨,誘導(dǎo)關(guān)節(jié)軟骨降解。CTX-Ⅱ是軟骨組織Ⅱ型膠原降解的產(chǎn)物,能夠有效地反應(yīng)關(guān)節(jié)炎軟骨的狀況[23,24],我們使用1α,25(OH)2D3干預(yù)軟骨細胞并通過檢測CTX-Ⅱ評估軟骨降解情況。
細胞培養(yǎng)研究和軟骨組織塊培養(yǎng)研究均顯示OSM和TNF-α可導(dǎo)致關(guān)節(jié)軟骨CTX-Ⅱ的水平顯著上升,提示炎癥性的細胞因子能夠增加關(guān)節(jié)軟骨細胞Ⅱ型膠原的降解作用;并且1α,25(OH)2D3干預(yù)可以顯著抑制OSM和TNF-α所導(dǎo)致的CTX-Ⅱ水平上升。這說明1α,25(OH)2D3能夠抑制關(guān)節(jié)炎性的軟骨細胞高分解代謝狀況,緩解關(guān)節(jié)炎軟骨細胞外基質(zhì)的降解。有意思的是,對于未經(jīng)OSM和TNF-α誘導(dǎo)的正常軟骨細胞,1α,25(OH)2D3的干預(yù)可以使細胞上清中CTX-Ⅱ水平升高。這說明軟骨細胞對維生素D的反應(yīng)性因自身狀態(tài)的改變而改變,關(guān)節(jié)炎軟骨細胞和正常軟骨細胞可能對維生素D的反應(yīng)并不一致。這種現(xiàn)象可能提示,正常生理狀態(tài)下1α,25(OH)2D3可以少量增加軟骨細胞Ⅱ型膠原的降解,其機制不
明,可能這種作用尚處于軟骨基質(zhì)正常的降解、重建、修復(fù)的穩(wěn)態(tài)之中,不足以減少關(guān)節(jié)軟骨量,以致關(guān)節(jié)炎的發(fā)生和進展。
圖3 軟骨細胞上清CTX-Ⅱ檢測
圖4 組織塊釋放的CTX-Ⅱ的檢測
本研究顯示關(guān)節(jié)軟骨組織塊對1α,25(OH)2D3的反應(yīng)性與大鼠關(guān)節(jié)軟骨細胞基本相似,二者可以相互驗證。利用關(guān)節(jié)軟骨組織塊研究維生素D對關(guān)節(jié)軟骨作用的研究還未見報道。關(guān)節(jié)軟骨組織塊培養(yǎng),對于評價維生素D對軟骨組織的作用有其獨特優(yōu)勢。一方面,關(guān)節(jié)軟骨組織塊培養(yǎng)可以排除其他因素的影響,如軟骨下骨和滑膜的影響。維生素D是骨質(zhì)疏松治療的藥物之一,它對軟骨下骨的骨質(zhì)量也有顯著影響。軟骨下骨的力學(xué)性能和微觀結(jié)構(gòu)的改變在關(guān)節(jié)炎的發(fā)病和進展中具有重要作用。在需要排除關(guān)節(jié)下骨影響的研究中,關(guān)節(jié)軟骨組織塊培養(yǎng)是較好的選擇。另一方面,關(guān)節(jié)軟骨組織塊培養(yǎng)可以有效地保留了細胞外基質(zhì)。軟骨組織具有細胞數(shù)目少,細胞外基質(zhì)成分多的特點。在骨關(guān)節(jié)炎病理過程中,軟骨組織細胞外基質(zhì)降解是關(guān)節(jié)炎的重要病理特征之一,細胞外基質(zhì)有其重要生理作用。軟骨組織塊培養(yǎng)是一種探討藥物對軟骨直接作用的良好工具。因此我們選用細胞體外培養(yǎng)和組織塊體外培養(yǎng)的方法探討維生素D對軟骨代謝的直接作用。
目前對骨關(guān)節(jié)炎的病因及發(fā)病機制仍缺乏足夠的了解,尚未形成一種特效的治療方法。由于骨關(guān)節(jié)炎病程長,需要長期使用病情改善性藥物,因此對藥物的安全性要求很高。理想的骨關(guān)節(jié)炎藥物應(yīng)該具有以下特征:經(jīng)濟安全,依從性好,能夠改善關(guān)節(jié)炎病情。維生素D容易獲得,經(jīng)濟,安全性好,患者依從性良好,能夠改善軟骨下骨的骨質(zhì)疏松,同時具有直接調(diào)控軟骨代謝的作用。因此,維生素D是具有很大的潛力及良好應(yīng)用前景的關(guān)節(jié)炎治療藥物。
[1]van Meurs JB,van LentPL,Holthuysen AE,etal.Kinetics of aggrecanase-andmetalloproteinase-induced neoepitopes in various stages of cartilage destruction inmurine arthritis. A rthritis Rheum,1999,42(6):1128-1139.
[2]Behrens F,Kraft EL,Oegema TR Jr.Biochem ical changes in articular cartilage after joint immobilization by casting or external fixation.JOrthop Res,1989,7(3):335-343.
[3]周新華,王敏,姬顏輝,等.m iRNA-140在早期骨關(guān)節(jié)炎軟骨細胞中的表達規(guī)律及功能.第二軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報,2014, 35(6):610-615.
[4]Bouillon R,CarmelietG,Verlinden L,etal.Vitamin D and human health:lessons from vitamin D receptor nullmice. Endocr Rev,2008,29(6):726-776.
[5]Bikle DD.Vitam in D and immune function:understanding common pathways.Curr Osteoporos Rep,2009,7(2):58-63.
[6]Stoffels K,Overbergh L,Giulietti A,et al.Immune regulation of 25-hydroxyvitam in-D3-1alpha-hydroxy lase in humanmonocytes.JBoneMiner Res,2006,21(1):37-47.
[7]Bartley J.Vitam in D:emerging roles in infection and immunity.ExpertRev Anti Infect Ther,2010,8(12):1359-1369.
[8]Lee JH,O'Keefe JH,BellD,etal.Vitamin D deficiency an important,common,and easily treatable cardiovascular risk factor?JAm CollCardiol,2008,52(24):1949-1956.
[9]Holick MF.Vitam in D deficiency.N Engl JMed,2007,357 (3):266-281.
[10]Ding C,Cicuttini F,Paramesw aran V,et al.Serum levels of vitam in D,sunlightexposure,and knee cartilage loss in old-
er adults:the Tasmanian older adult cohort study.Arthritis Rheum,2009,60(5):1381-1389.
[11]Muraki S,Dennison E,Jameson K,etal.Association of vitamin D statusw ith knee pain and radiographic knee osteoarthritis.OsteoarthritisCartilage,2011,19(11):1301-1306.
[12]Lane NE,Gore LR,Cumm ings SR,etal.Serum vitam in D levels and incident changes of radiographic hip osteoarthritis:a longitudinal study.Study of Osteoporotic Fractures Research Group.A rthritis Rheum,1999,42(5):854-860.
[13]Felson DT,Niu J,Clancy M,etal.Low levelsof vitamin D and worsening of knee osteoarthritis:results of two longitudinal studies.A rthritis Rheum,2007,56(1):129-136.
[14]Hunter DJ,Hart D,Snieder H,et al.Evidence of altered bone turnover,vitamin D and calcium regulation w ith knee osteoarthritis in female tw ins.Rheumatology(Ox ford), 2003,42(11):1311-1316.
[15]Tetlow LC,Woolley DE.Expression of vitamin D receptors and matrix metalloproteinases in osteoarthritic cartilage and human articular chondrocytes in vitro.Osteoarthritis Cartilage,2001,9(5):423-431.
[16]Shen M,Luo Y,Niu Y,etal.1,25(OH)2D3deficiency induces temporomandibular joint osteoarthritis via secretion of senescence-associated inflammatory cytokines.Bone, 2013,55(2):400-409.
[17]David DD,Boyan BD,Schw artz Z,et al.Effect of 1alpha, 25-dihydroxyvitamin D3 and 24R,25-dihydroxyvitamin D3 onmetalloproteinase activity and cellmaturation in grow th plate cartilage in vivo.Endocrine,2001,14(3):311-323.
[18]Castillo EC,Hernandez-Cueto MA,Vega-Lopez MA,etal. Effects of vitam in D supplementation during the induction and progression of osteoarthritis in a ratmodel.Evid Based ComplementAlternatMed,2012,2012:156563.
[19]Cantorna MT.1,25-dihydroxycholecalciferol inhibits the progression of arthritis in murinemodels of human arthritis.JNutr,1998,128(1):68-72.
[20]韋宋譜,張曉鋼,丁道芳,等.一種獲取具有旺盛增殖力的大鼠軟骨細胞培養(yǎng)方法.上海中醫(yī)藥雜志,2012,18(7):8-12.
[21]Oestergaard S,Sondergaard BC,Hoegh-Andersen P,et al. Effects of ovariectomy and estrogen therapy on type IIcollagen degradation and structural integrity of articular cartilage in rats:im plications of the time of initiation.A rthritis Rheum,2006,54(8):2441-2451.
[22]Richette P,Dumontier MF,Fran?ois M,et al.Dual effects of 17beta-oestradiolon interleukin 1beta-induced proteoglycan degradation in chondrocytes.Ann Rheum Dis,2004,63 (2):191-199.
[23]Park YM,Kim SJ,Lee KJ,etal.Detection of CTX-IIin serum and urine to diagnose osteoarthritis by using a fluorom icrobeads guiding chip.Biosens Bioelectron,2015,67: 192-199.
[24]Rousseau JC,Garnero P.Biologicalmarkers in osteoarthritis.Bone,2012,51(2):265-277.
11α,,2525(OH)(OH)22D D33 regulatesdegradation of type f typeⅡcollagen in articular cartilage*
LISiwei,NIUGuodong,LIU Zhongjun,SONGChunli,ZHANG Ke**,LENGHuijie**
(Departmentof Orthopedics,Peking University Third Hospital,Beijing 100191,China)
ords:Vitamin D;Osteoarthritis;Chondrocytes;Cartilageexplants culture;C-telopeptide fragmentsof typeⅡcollagen
2095-9958(2015)04-0 161-06
10.3969/j.issn.2095-9958.2015.02-014
國家自然科學(xué)基金(項目編號:11472017,1002004)
**通信作者:冷慧杰,Email:lenghj@bjmu.edu.cn;張克,Email:zhangke60@medmail.com.cn