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    大鼠血漿中枸杞多糖熒光標記物定量分析方法的建立

    2015-12-10 06:00:46唐華麗王少康楊立剛孫桂菊
    食品科學 2015年2期
    關(guān)鍵詞:藥代多糖血漿

    陳 忱,唐華麗,馬 月,王少康,楊立剛,彭 景,孫桂菊,*

    (1.東南大學公共衛(wèi)生學院營養(yǎng)與食品衛(wèi)生學系,教育部環(huán)境醫(yī)學工程重點實驗室,江蘇 南京 210009;2.無錫工藝職業(yè)技術(shù)學院,江蘇 無錫 214200;3.重慶三峽學院 生命科學與工程學院,重慶 404000;4.揚州大學旅游烹飪學院,江蘇 揚州 225000)

    大鼠血漿中枸杞多糖熒光標記物定量分析方法的建立

    陳 忱1,2,唐華麗1,3,馬 月1,王少康1,楊立剛1,彭 景4,孫桂菊1,*

    (1.東南大學公共衛(wèi)生學院營養(yǎng)與食品衛(wèi)生學系,教育部環(huán)境醫(yī)學工程重點實驗室,江蘇 南京 210009;2.無錫工藝職業(yè)技術(shù)學院,江蘇 無錫 214200;3.重慶三峽學院 生命科學與工程學院,重慶 404000;4.揚州大學旅游烹飪學院,江蘇 揚州 225000)

    建立大鼠血漿中異硫氰酸熒光素標記的枸杞多糖(fluorescein isothiocyanate labeled Lycium barbarum polysaccharides,LBP-FITC)的熒光定量分析方法,線性方程為y=1 378.7x—14.98(R2=0.998 9),血漿中LBP-FITC質(zhì)量濃度在0.05~10 μg/mL范圍內(nèi)與熒光強度呈良好的線性關(guān)系。方法的精密度、回收率以及穩(wěn)定性考察分析證明該方法符合生物樣品體內(nèi)定量分析的要求。單次灌胃給予大鼠LBP-FITC后,以藥代動力學WinNonlin軟件采用非房室模型擬合大鼠單次口服LBP-FITC的經(jīng)時血藥質(zhì)量濃度數(shù)據(jù),計算主要的藥代動力學參數(shù)為最大峰質(zhì)量濃度(Cmax)(2.39±0.71) μg/mL、達峰時間(tmax)(1.17±0. 41) h;藥時曲線下面積AUC0-t為(45.85±7.12)(μg?h)/mL,AUC0-∞為(127.31±39.00)(μg?h)/mL;半衰期(t1/2)為(80.32±32.70) h;清除率為(1 693.96±492.47)mL/kg;平均滯留時間為(20.64±1.36) h。

    異硫氰酸熒光素標記的枸杞多糖;藥代動力學;穩(wěn)定性;回收率

    藥物代謝動力學的研究是生物活性物質(zhì)研究的一項重要內(nèi)容,其運用數(shù)學原理和方法闡述藥物在機體內(nèi)的動態(tài)規(guī)律,主要研究被測對象在生物體內(nèi)的過程,包括吸收、分布、代謝和排泄[1]。枸杞多糖(Lycium barbarum polysaccharides,LBP)是枸杞發(fā)揮功效的重要成分,體內(nèi)外實驗證實LBP具有多種功效,例如抗氧化、調(diào)節(jié)免疫、抗衰老、降血糖、降血脂、抗動脈粥樣硬化等[2-6]。但作用機理目前研究并不深入,尤其是與功效學研究相比,LBP的代謝動力學研究鮮見報道。LBP是一種蛋白多糖,易溶于水,但是其沒有光吸收基團和發(fā)色基團,不能采用光譜法或色譜法進行直接檢測。本實驗組通過異硫氰酸熒光素(fl uorescein isothiocyanate,F(xiàn)ITC)與LBP的共價偶聯(lián),實現(xiàn)對枸杞多糖的熒光標記,成功制備得到熒光探針LBP-FITC,并且標記產(chǎn)物具有良好的體外穩(wěn)定性,因此可通過測定其熒光強度對其進行定量分析,從而克服了LBP難以進行高靈敏度檢測的困難[7]。有研究發(fā)現(xiàn)該標記方法對多糖生物活性影響較小,對細胞不產(chǎn)生毒性[8-9]。

    本實驗建立了大鼠血漿中LBP-FITC的定量分析方法,應(yīng)用已建立的定量分析方法對LBP-FITC 單次口服給藥的大鼠代謝動力學進行研究,以期為多糖的功效機制研究提供良好的依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料、實驗動物與試劑

    枸杞購自寧夏銀川市場。

    清潔級SD雄性大鼠(體質(zhì)量200~250 g,動物許可證號:SCXK(滬)2012-0006) 上海杰思捷實驗動物有限公司。

    FITC 美國Sigma公司;單糖標準品為分析純。

    1.2 儀器與設(shè)備

    L-550離心機 湖南離心機儀器有限公司;電子分析天平 瑞士Mettler Toledo公司;Mithras LB 940多功能酶標儀 德國Berthold公司。

    1.3 方法

    1.3.1 枸杞多糖的提取與熒光標記

    本研究的LBP采用膜分離技術(shù)提取,Sevag法脫蛋白[10],純化得到的多糖。紫外和紅外光譜分析證明LBP是一種與蛋白結(jié)合的復(fù)合多糖,存在β-D型吡喃糖和α-異構(gòu)體吡喃糖。離子色譜分析發(fā)現(xiàn)LBP中單糖含量最高的是葡萄糖,其次是阿拉伯糖和半乳糖。LBP熒光標記參照文獻[11]報道,主要過程為將制備的LBP溶于水中,0.5 mol/mL NaHCO3溶液調(diào)節(jié)pH值至8.0,加入FITC,室溫避光攪拌反應(yīng)24 h。反應(yīng)結(jié)束后,將反應(yīng)液采用中速定性濾紙過濾,向濾液中加入無水乙醇至乙醇終體積分數(shù)為80%,沉淀析出,離心棄去上清液。沉淀加水復(fù)溶,無水乙醇再沉淀,反復(fù)3 次。再將沉淀用無水乙醇反復(fù)洗滌,直至上清液無熒光吸收后,凍干沉淀得LBP-FITC。

    1.3.2 實驗動物

    體質(zhì)量200~250 g SD雄性大鼠飼養(yǎng)于東南大學公共衛(wèi)生學院動物實驗室,期間提供標準動物飼料,自由飲水進食。符合衛(wèi)生部頒布的《衛(wèi)生部醫(yī)學實驗動物管理實施細則》和《實驗動物管理條例》的規(guī)定。

    1.3.3 實驗設(shè)計

    1.3.3.1 LBP-FITC在大鼠血漿中的定量分析方法研究

    參考其他方法[12-13]對血漿中LBP-FITC進行定量分析。

    LBP-FITC標準貯備液的配制:精確稱取LBP-FITC樣品100 mg,置于100 mL容量瓶中,加入磷酸鹽緩沖溶液稀釋至刻度,配制成1 mg/mL的LBP-FITC標準貯備液,于4 ℃條件下保存。

    LBP-FITC標準系列溶液的配制:臨用時精密量取貯備液適量,用磷酸鹽緩沖溶液配制成質(zhì)量濃度0.25、0.5、1、2.5、5、10、25、50 μg/mL的LBP-FITC標準系列溶液。

    1.3.3.2 實驗動物處理

    實驗前大鼠自由攝食和飲水,在適應(yīng)環(huán)境3 d后進行實驗。通過股動脈取血,血樣放入EDTA處理過的管中,在4 ℃、3 000 r/min離心10 min,取上清液獲得空白血漿,置于EP管中可立即使用或置于—70 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.3.3.3 樣品測定LBP-FITC的測定

    采用多功能酶標儀,在熒光激發(fā)波長495 nm、發(fā)射波長520 nm條件下測定其熒光強度。取大鼠血漿150 μL至黑色酶標板中測定熒光強度。

    1.3.3.4 標準曲線的繪制

    取大鼠空白血漿120 μL,精密加入30 μL不同質(zhì)量濃度的LBP-FITC標準系列溶液,配制成相當于質(zhì)量濃度分別為0.05、0.1、0.2、0.5、1、2、5、10 μg/mL的血漿樣品,同時制備同體積的磷酸緩沖液代替LBP-FITC標準溶液用以測定空白血漿樣品,之后按照1.3.3.3節(jié)操作。以血漿中待測樣品LBP-FITC的質(zhì)量濃度為橫坐標,測定的熒光強度扣除空白血漿的熒光強度為縱坐標,用加權(quán)最小二乘法進行回歸運算,所得的直線回歸方程即為標準曲線。

    1.3.3.5 方法的精密度考察

    取大鼠空白血漿120 μL,精密加入不同質(zhì)量濃度LBP-FITC標準溶液,分別制備低(0.1 μg/mL)、中(1 μg/mL)、高(10 μg/mL)3 個質(zhì)量濃度的質(zhì)量控制(quality control,QC)樣品,每一質(zhì)量濃度進行5 樣本分析。按照1.3.3.3節(jié)操作,將扣除空白血漿熒光強度后的值代入當天相應(yīng)的標準曲線,分別計算QC樣品測得的質(zhì)量濃度,與配制的質(zhì)量濃度進行對照求得方法的精密度。在同一天內(nèi)重復(fù)測定5 次,連續(xù)測定5 d,以計算日內(nèi)和日間相對標準偏差(relative standard deviation,RSD)。

    1.3.3.6 方法的回收率考察

    取大鼠空白血漿120 μL,精密加入不同質(zhì)量濃度LBP-FITC標準溶液,分別制備低(0.1 μg/mL)、中(1 μg/mL)、高(10 μg/mL)3 個質(zhì)量濃度的QC樣品,每一質(zhì)量濃度進行5 樣本分析。按照1.3.3.3節(jié)操作,每個樣品測定5 次,將扣除空白血漿熒光強度后的值代入當天相應(yīng)的標準曲線,分別計算QC樣品測得的質(zhì)量濃度,與配制的質(zhì)量濃度對照求得方法的回收率。相對回收率的計算見以下公式:

    1.3.3.7 方法的穩(wěn)定性考察

    取大鼠空白血漿120 μL,精密加入不同質(zhì)量濃度LBP-FITC標準溶液,分別制備低(0.1 μg/mL)、中(1 μg/mL)、高(10 μg/mL)3 個質(zhì)量濃度的QC樣品,反復(fù)凍融3 次(—20~25 ℃),每一質(zhì)量濃度進行5 樣本分析,按照1.3.3.3節(jié)操作,每個樣品測定5 次,將扣除空白血漿熒光強度后的值代入當天相應(yīng)的標準曲線,分別計算QC樣品測得的質(zhì)量濃度,計算RSD,考察樣品在反復(fù)凍融3 次后的穩(wěn)定性。

    另取大鼠空白血漿120 μL,精密加入不同質(zhì)量濃度LBP-FITC標準溶液,分別制備低(0.1 μg/mL)、中(1 μg/mL)、高(10 μg/mL)3 個質(zhì)量濃度的QC樣品,每一質(zhì)量濃度進行5 樣本分析,于室溫(25 ℃)條件下放置24 h,按照1.3.3.3節(jié)操作,每個樣品測定5 次,將扣除空白血漿熒光強度后的值代入當天相應(yīng)的標準曲線,分別計算QC樣品測得的質(zhì)量濃度,計算RSD,考察樣品在室溫(25 ℃)情況下放置24 h后的穩(wěn)定性。

    取大鼠空白血漿120 μL,精密加入不同質(zhì)量濃度LBP-FITC標準溶液,分別制備低(0.1 μg/mL)、中(1 μg/mL)、高(10 μg/mL)3 個質(zhì)量濃度的QC樣品,每一質(zhì)量濃度進行5 樣本分析,于—20 ℃條件下貯存15 d后取樣,迅速融化,按照1.3.3.3節(jié)操作,每個樣品測定5 次,將扣除空白血漿熒光強度后的值代入當天相應(yīng)的標準曲線,分別計算QC樣品測得的質(zhì)量濃度,計算RSD,考察樣品在—20 ℃冷凍條件下貯存半個月后的穩(wěn)定性。

    1.3.3.8 單次口服LBP-FITC的大鼠代謝動力學研究

    健康雄性SD大鼠(200~250 g)6 只,在適應(yīng)環(huán)境3 d后進行實驗。給藥前禁食12 h,自由飲水,經(jīng)口服灌胃給予LBP-FITC,給藥劑量200 mg/kg(以體質(zhì)量計),給藥容量1 mL/100 g。分別于灌胃給藥前及給藥后0.5、1、2、3、4、6、8、12、24、48 h尾靜脈取血0.5 mL。將血樣采集到抗凝離心管中,3 000 r/min離心10 min,取上清液得到血漿,按1.3.3.3節(jié)條件測定熒光強度。

    1.4 數(shù)據(jù)處理

    利用藥代動力學WinNonlin軟件,采用非房室模型擬合大鼠單次口服LBP-FITC的經(jīng)時血藥質(zhì)量濃度數(shù)據(jù),最大峰質(zhì)量濃度(Cmax)及達峰時間(tmax)為實測值;藥時曲線下面積(area under the curve,AUC)、半衰期(t1/2)、總清除率(clearance,CL)、表觀分布容積(Vd)、平均滯留時間(mean residence time,MRT)等用統(tǒng)計矩參數(shù)。AUC反映藥物進入血循環(huán)的總量;t1/2表示藥物在體內(nèi)分布達到平衡后,血漿藥物質(zhì)量濃度消除一半所需的時間,是表達藥物在體內(nèi)消除快慢的重要參數(shù);CL表示單位時間內(nèi)有多少分布容積中的藥物被清除,是估算藥物從體內(nèi)消除速度的參數(shù);MRT是指藥物分子滯留在體內(nèi)的平均時間;Vd值表征藥物在體內(nèi)被組織攝取的能力,表觀容積大的藥物體內(nèi)存留時間較長。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 血藥質(zhì)量濃度標準曲線

    所得線性回歸方程為y=1 378.7x—14.98(R2=0.998 9),血漿中LBP-FITC質(zhì)量濃度在0.05~10 μg/mL范圍內(nèi)與熒光強度線性關(guān)系良好,線性方程滿足代謝動力學的研究要求。

    2.2 血漿精密度

    表 1 大鼠血漿中LBP-FITC測定方法的日內(nèi)精密度(n=5)Table 1 Inter-day precision of LBP-FITC in blank rat plasma ( n= 5)

    表 2 大鼠血漿中LBP-FITC測定方法的日間精密度(n=5)Table 2 Intra-day precision of LBP-FITC in blank rat plasma (n= 5)

    由表1、2可知,大鼠血漿中LBP-FITC質(zhì)量濃度為0.1 μg/mL的5 個樣品日內(nèi)RSD分別為5.28%、6.90%、3.17%、4.68%、4.90%,日間RSD為4.15%;質(zhì)量濃度為1 μg/mL的日內(nèi)RSD分別為6.41%、5.01%、4.91%、2.67%、5.39%;日間RSD為3.13%;質(zhì)量濃度為10 μg/mL的日內(nèi)RSD分別為3.86%、2.24%、3.28%、 2.48%、1.97%,日間RSD為2.62%。組內(nèi)和組間的RSD都較小,證明該方法具有較好的精密度。

    2.3 血漿回收率

    表 3 大鼠血漿中LBP-FITC測定方法的回收率(n=5)Table 3 Recovery of LBP-FITC in rat plasma (n=5)

    由表3可知,回收率在93.37%~95.72%之間,RSD分別為3.44%~4.62%,表明該方法具有良好回收率。

    2.4 血漿穩(wěn)定性

    樣品在室溫放置24 h、反復(fù)凍融3 次和凍存15 d后的穩(wěn)定性測定結(jié)果見表4,顯示RSD均較小,不大于5%,故含藥血漿在室溫條件下存放24 h、反復(fù)凍融3 次以及—20 ℃條件下貯存15 d的穩(wěn)定性均良好。

    表 4 大鼠血漿中LBP-FITC測定方法的穩(wěn)定性結(jié)果(n=5)Table 4 Stability of LBP-FITC in rat plasma (n = 5)

    2.5 大鼠單次口服LBP-FITC血藥質(zhì)量濃度-時間曲線

    圖 1 大鼠單次口服LBP-FITC的血藥質(zhì)量濃度-時間曲線Fig.1 Plasma concentration-time profi le of LBP-FITC after oral administration

    大鼠單次灌胃給予200 mg/kg LBP-FITC后,以測定的血漿藥物質(zhì)量濃度對所對應(yīng)的采血點作圖,獲得血藥質(zhì)量濃度-時間曲線圖,見圖1。結(jié)果發(fā)現(xiàn)在灌胃后0.5 h就可在大鼠血漿中檢測出一定的熒光強度,表明0.5 h時LBP已吸收進入血液,1~2 h達到吸收高峰,之后隨著時間的延長血藥質(zhì)量濃度逐漸減少,且速率逐漸減緩,直至48 h時仍能在血漿中測到熒光強度。

    2.6 大鼠單次口服LBP-FITC的血漿藥代動力學參數(shù)

    利用藥代動力學WinNonlin軟件,采用非房室模型擬合大鼠單次口服LBP-FITC的經(jīng)時血藥質(zhì)量濃度數(shù)據(jù),計算得到主要藥代動力學參數(shù)見表5。

    表 5 大鼠單次口服LBP-FITC的主要藥代動力學參數(shù)Table 5 Non-compartmental pharmacokinetic parameters of LBP-FITC after oral administration

    如表5 所示,6 只動物的最大血藥質(zhì)量濃度Cmax為(2.39±0.71) μg/mL;最大峰時間tmax為(1.17±0.41)h;AUC0-t為(45.85±7.12)(μg·h)/mL;AUC0-∞為(127.31±39.00)(μg·h)/mL;t1/2為(80.32±32. 70) h;CL為(1693.96±492.47) mL/kg;MRT為(20.64±1.36)h。

    本研究中Cmax和t1/2值可說明LBP-FITC在大鼠體內(nèi)的吸收迅速,但是消除緩慢,這可能與其高分子的性質(zhì)有關(guān)。

    3 討 論

    近年來,天然多糖的研究越來越受到人們的重視,但是多糖在體內(nèi)的代謝過程一直是人們所面臨的困惑。研究表明多糖可以以大分子形式吸收,但吸收率不高,有學者推測在大腸可能有部分多糖的代謝物-寡糖類被吸收,發(fā)揮吸收作用,產(chǎn)生類似與多糖的藥理作用,而剩余部分經(jīng)大腸排泄[14]。但是多糖吸收后以何種方式存在,又是以什么形式發(fā)揮多重功效的,尚未有文章報道。代謝動力學研究可以揭示多糖在生物體內(nèi)的吸收、分布、代謝及排泄的規(guī)律,并且也是闡明多糖及其代謝產(chǎn)物的藥理和毒理作用的物質(zhì)基礎(chǔ)[15]。隨著科學技術(shù)的不斷發(fā)展,研究者也開始嘗試將同位素標記方法運用到多糖類物質(zhì)的代謝動力學研究當中。謝炳華等[16]采用氚離子束標記茯苓聚糖,并口服灌胃小鼠以研究其在體內(nèi)的藥代動力學。結(jié)果發(fā)現(xiàn),藥物質(zhì)量濃度-時間曲線屬于動力學雙室模型,消除半衰期較長(104 h),這可能是由于其高分子的性質(zhì)所決定的。O′har[17]采用同位素標記法制備3H-香菇多糖,研究其在大鼠、小鼠和狗體內(nèi)的藥代動力學。結(jié)果顯示,3H-香菇多糖在大鼠、小鼠和狗體內(nèi)的分布沒有明顯區(qū)別,單次靜脈注射后血漿中的放射性強度逐漸減少,尿液和糞便中均能檢測出放射性;在肝臟和脾臟中也能檢測出放射性物質(zhì),但另一方面,腎臟和肺中的放射性強度迅速下降。陳群等[18]利用天青A與硫酸化多糖產(chǎn)生變色反應(yīng)的特性,建立了大鼠血漿中茯苓多糖硫酸酯(pachyman sulfate,PS)的光譜檢測方法,同時測定了大鼠尾靜脈注射和腹腔注射PS后的血藥質(zhì)量濃度,計算主要藥代動力學參數(shù)。結(jié)果發(fā)現(xiàn)PS的藥代動力學復(fù)合一房室、一級消除的開放模型,生物利用度為69.12%。

    多糖結(jié)構(gòu)復(fù)雜,缺少可見光、紫外光和熒光等光譜特征,體外檢測多是采用連接熒光檢測器或者蒸發(fā)光散射檢測器的高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)方法。但是由于體液成分較為復(fù)雜,使用HPLC方法時需要先進行去蛋白處理,易破壞多糖的結(jié)構(gòu),影響檢測效果,并且操作要求高,設(shè)備價格昂貴,因此同位素標記法進行多糖代謝研究結(jié)果有片面性和困難性[19]。有學者開始嘗試熒光標記多糖用于多糖代謝研究中。胡錦珍等[20]采用FITC對殼聚糖進行熒光標記得到產(chǎn)物為FITC-CIS,采用熒光分光光度計測定和HPLC分析相結(jié)合的方法發(fā)現(xiàn)小鼠口服FITC-CIS后主要分布在腎臟中,并以原型形式經(jīng)糞便排出,部分分解的殼聚糖則從尿液排出,但是血清中的FITC-CIS質(zhì)量濃度非常低,可能是具有較高分子質(zhì)量的殼聚糖很難被吸收進入血液的緣故。謝華通等[21-22]同樣采用FITC標記麥冬多糖MDG-1得到F-MDG-1,采用熒光凝膠色譜法觀察多糖在大鼠胃腸道內(nèi)的含量變化以及排泄變化。結(jié)果顯示,給予相同劑量的F-MDG-1,隨著在胃內(nèi)停留時間的延長,其質(zhì)量分數(shù)由99.65%下降到42.45%;給予不同劑量后,1 h的測得質(zhì)量分數(shù)占給藥量的百分比隨著給藥劑量的增加而增加,考慮到胃酸的酸性pH值影響熒光響應(yīng)值,將pH值調(diào)至7.2后含量并未變化,提示F-MDG-1在胃內(nèi)不受環(huán)境以及蛋白酶的影響,在胃內(nèi)不被分解。4 h后大腸和小腸中的測得量均有減少,數(shù)據(jù)結(jié)果表明MDG-1在腸道內(nèi)分解,主要代謝部位在大腸。尿液和糞便中測定均在12 h時達到最大值,隨后逐漸減少。

    本實驗采用熒光酶標儀測定血漿中的LBP-FITC的熒光強度以計算其中的藥物質(zhì)量濃度。相比較于熒光分光光度計,熒光酶標儀檢測方法對生物樣品需求量少,僅需100~200 μL即可進行測定,節(jié)省生物樣品,且可同時測定多個樣品,操作方便。

    目前對于方法學的考察確證主要包括對方法的選擇性、線性及范圍、精密度、回收率和樣品穩(wěn)定性等方面的考察,要求測定5~8 個系列質(zhì)量濃度的生物樣品來繪制標準曲線,并且標準曲線要覆蓋待測樣品的質(zhì)量濃度范圍。另外樣品從采集到分析這一過程需經(jīng)過很多步驟,保證樣品的穩(wěn)定性是定量分析可靠的一個必要條件,因此在分析方法的建立過程中應(yīng)充分了解樣品在分析操作過程中的穩(wěn)定性。文獻[23]認為應(yīng)首先考慮被測物在儲存條件下的可穩(wěn)定性時間,其次考慮被測物在生物樣品中的穩(wěn)定性,包括在室溫、冷凍貯存和反復(fù)凍融條件下的穩(wěn)定性。故本研究對所建立的方法進行了線性、精密度、回收率及穩(wěn)定性的考察,結(jié)果表明該檢測方法線性范圍較寬、靈敏度高、重復(fù)性好,生物樣品中的內(nèi)源性雜質(zhì)對測定不產(chǎn)生干擾,符合藥代動力學研究的指導(dǎo)原則以及生物樣品分析國際規(guī)范的相關(guān)要求,為進一步的多糖代謝動力學研究提供良好的檢測方法。

    一直以來,由于多糖沒有準確靈敏的檢測方法,所以與藥效學相比,LBP等多糖類的代謝動力學研究鮮未報道。本研究利用已建立的檢測方法對大鼠單次口服LBP-FITC后的血漿代謝動力學進行初步研究。結(jié)果發(fā)現(xiàn),在大鼠灌胃給予LBP-FITC后0.5 h就可在血漿中的檢測出一定的熒光強度,說明LBP在大鼠體內(nèi)吸收較快。1~2 h達到吸收最大峰,之后隨著時間的延長血藥質(zhì)量濃度逐漸減少,直至48 h時仍能在血漿中測到熒光強度。

    本實驗建立了一種準確、靈敏且快速簡便的測定大鼠血漿中LBP-FITC的熒光檢測法,并應(yīng)用該方法對大鼠單次口服LBP-FITC的大鼠代謝動力學展開了研究,可為以后多糖的功效機制研究提供良好的依據(jù)。

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    Establishment of A Method for Detecting Fluorescence Labeled Lycium barbarum Polysaccharide in Rat Plasma

    CHEN Chen1,2, TANG Huali1,3, MA Yue1, WANG Shaokang1, YANG Ligang1, PENG Jing4, SUN Guiju1,*
    (1. Key Laboratory of Environmental Medicine and Engineering, Ministry of Education, Department of Nutrition and Food Hygiene, School of Public Health, Southeast University, Nanjing 210009, China; 2. Wuxi Institute of Arts and Technology, Wuxi 214200, China; 3. College of Life Science and Engineering, Chongqing Three Gorges University, Chongqing 404000, China; 4. Tourism Institute, Yangzhou University, Yangzhou 225000, China)

    A rapid and sensitive fl uorescent method was developed to determine fl uorescein isothiocyanate-labeled Lycium barbarum polysaccharides (LBP-FITC) in rat plasma. The linear calibration curve was obtained in the range from 0.05 to 10 μg/mL in rat plasma and the linear equation was y = 1 378.7x-14.98 (R2= 0.998 9). The inter-day coefficients of variation (CVs) at 0.1, 1.0 and 10 μg/mL of LBP-FITC were between 1.97% and 6.90%, and the intraday CVs at the three concentrations were between 2.62% and 4.15%. The recovery rates of LBP-FITC in rat plasma wer e between 93.37% and 95.72%. LBP-FITC was stable in rat plasma. The established method is suitable for LBP-FITC pharmacokinetic study. After oral administration of LBP-FITC to rats, the non-compartmental model was used to calculate the main pharmacokinetic parameters by WinNonlin software. The results of pharmacokinetic parameters indicated that the peak concentration (Cmax) was (2.39 ± 0.71) μg/mL, the time to reach the peak value (tmax) was (1.17 ± 0.41) h, the area under the curve (AUC0-t) was (45.85 ± 7.12) (μg·h)/mL, the AUC0-∞was (127.31 ± 39.00) (μg·h)/mL, the t1/2was (80.32 ± 32.70) h, the clearance (CL) was (1 693.96 ± 492.47) mL/kg, and the mean retention time (MRT) was (20.64 ± 1.36) h.

    fl uorescein isothiocyanate-labeled Lycium barbarum polysaccharides (LBP-FITC); pharmacokinetics; stability; recovery rate

    R151.3

    A

    1002-6630(2015)02-0090-06

    10.7506/spkx1002-6630-201502017

    2014-06-20

    國家自然科學基金面上項目(81273069);國家大學生創(chuàng)新性實驗計劃項目(1310286097);

    江蘇省高等學校大學生實踐創(chuàng)新訓練計劃項目(S2014116)

    陳忱(1989—),女,助教,碩士研究生,研究方向為植物化學物與食品功效。E-mail:chen_chen0214@163.com

    *通信作者:孫桂菊(1963—),女,教授,博士,研究方向為植物化學物與食品功效。E-mail:gjsun@seu.edu.cn

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