低氧條件下鐵調(diào)節(jié)蛋白1在維持SH-SY5Y細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)中的作用

郁敏燕，王 丹，朱 俐

（1.南通大學(xué)附屬醫(yī)院生殖醫(yī)學(xué)中心，江蘇南通226001；2.南通大學(xué)航海醫(yī)學(xué)研究所，江蘇南通226001）

低氧條件下鐵調(diào)節(jié)蛋白1在維持SH-SY5Y細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)中的作用

郁敏燕1，2，王 丹2，朱 俐2

（1.南通大學(xué)附屬醫(yī)院生殖醫(yī)學(xué)中心，江蘇南通226001；2.南通大學(xué)航海醫(yī)學(xué)研究所，江蘇南通226001）

目的：研究低氧條件下鐵調(diào)節(jié)蛋白1（iron regu1atory protein 1，IRP1）對人神經(jīng)母細(xì)胞瘤SH-SY5Y細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)的影響。方法：1％O2處理SH-SY5Y細(xì)胞0，1，2，4，6 h，蛋白質(zhì)印跡法檢測鐵蛋白輕鏈（ferritin 1ight chain，F(xiàn)t-L）以及膜鐵輸出蛋白（ferroportin，F(xiàn)pn）的表達(dá)；Ca1cein-AM法檢測SH-SY5Y細(xì)胞對Fe2+的吸收以及細(xì)胞可變鐵池（1abi1e iron poo1，LIP）；采用硫氰酸鹽分光光度法測定細(xì)胞總含鐵量；特異性siRNA下調(diào)IRP1后檢測SH-SY5Y細(xì)胞低氧2 h鐵穩(wěn)態(tài)的變化。結(jié)果：低氧0～6 h，SH-SY5Y細(xì)胞Ft-L和Fpn表達(dá)增加，F(xiàn)e2+攝入和LIP增加，但細(xì)胞總鐵水平不變。siRNA下調(diào)IRP1表達(dá)后再低氧2 h，F(xiàn)t-L蛋白表達(dá)和LIP明顯增加，F(xiàn)pn表達(dá)和Fe2+攝入沒有明顯變化，細(xì)胞總鐵水平增加。結(jié)論：低氧條件下，IRP1是SH-SY5Y細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)的重要調(diào)節(jié)者。

低氧；鐵調(diào)節(jié)蛋白1；鐵穩(wěn)態(tài)；SH-SY5Y細(xì)胞；細(xì)胞可變鐵池

鐵為生命活動(dòng)所必需，其缺乏會(huì)引起細(xì)胞生長停止和死亡，超載可誘發(fā)大量自由基的產(chǎn)生，引起神經(jīng)退行性病變和多種與老年相關(guān)的疾病。游離鐵通過Haber-Weiss或Fenton反應(yīng)與過氧化氫或脂質(zhì)過氧化物反應(yīng)促進(jìn)活性氧簇的產(chǎn)生，導(dǎo)致脂質(zhì)、蛋白質(zhì)和DNA的損傷［1］。細(xì)胞通過鐵調(diào)節(jié)蛋白（iron regu1atory proteins，IRPs，包括IRP1和IRP2）轉(zhuǎn)錄后調(diào)節(jié)機(jī)制，即與多種編碼鐵存儲(chǔ)、攝取、轉(zhuǎn)運(yùn)和輸出的蛋白mRNA非翻譯區(qū)（untrans1ated regions，UTRs）的鐵反應(yīng)元件（iron responsive e1ements，IREs）結(jié)合，調(diào)節(jié)細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)［2-4］。

在原核生物和真核生物中，鐵蛋白（ferritin，F(xiàn)t）是細(xì)胞內(nèi)主要的鐵存儲(chǔ)蛋白［5］。鐵蛋白通常由重鏈（Ft-H）和輕鏈（Ft-L）的24個(gè)亞基組成，F(xiàn)t-L促進(jìn)Fe2+沉積并穩(wěn)定鐵蛋白結(jié)構(gòu)［6］。IRPs通過與鐵蛋白mRNA 5′-UTRs的IREs結(jié)合抑制鐵蛋白翻譯，下調(diào)其表達(dá)，增加細(xì)胞可變鐵池（1abi1e iron poo1，LIP）的Fe2+以供細(xì)胞代謝［7］。膜鐵輸出蛋白（ferroportin，F(xiàn)pn）是目前已知的唯一的細(xì)胞膜鐵輸出蛋白，在細(xì)胞（巨噬細(xì)胞、肝細(xì)胞和胎盤細(xì)胞）表面具有很強(qiáng)的鐵輸出能力，呈高表達(dá)［8］。Fpn的表達(dá)和功能可通過低氧誘導(dǎo)因子（hypoxia-inducib1e factor，HIF）受低氧調(diào)控，也可能受IRPs調(diào)控。

機(jī)體鐵穩(wěn)態(tài)的維持除了需要多種蛋白的協(xié)調(diào)作用外，還有賴于適當(dāng)?shù)难豕┙o。研究表明，低氧應(yīng)激會(huì)引起機(jī)體產(chǎn)生一系列基因表達(dá)的變化，以適應(yīng)一定程度的低氧［9-10］，減少其危害。HIF-1是低氧誘導(dǎo)基因表達(dá)的主要調(diào)節(jié)因子，對低氧適應(yīng)起關(guān)鍵性作用［11］。HIF-1是一個(gè)異源二聚體，包含兩個(gè)螺旋-環(huán)-螺旋蛋白，HIF-1a為調(diào)節(jié)亞基，是氧敏感元件；HIF-1β是已知的芳烴受體核轉(zhuǎn)位分子，呈組成型表達(dá)。常氧下，HIF-1通過泛素蛋白酶途徑降解。低氧時(shí)，HIF-1a亞基在胞質(zhì)中集聚，通過核孔進(jìn)入胞核與HIF-1β亞基組裝成HIF-1，與靶基因的低氧反應(yīng)元件（hypoxia responsive e1ement，HRE）結(jié)合。我們前期研究發(fā)現(xiàn)，在人肝癌HepG2細(xì)胞中，低氧通過HIF/HRE系統(tǒng)下調(diào)IRP1表達(dá)，證明IRP1存在HRE［12］，但低氧下IRP1自身的調(diào)控作用尚不清楚。

研究顯示，阿爾茨海默病、帕金森病、亨廷頓舞蹈病的基底神經(jīng)節(jié)等多個(gè)腦區(qū)鐵含量和鐵代謝相關(guān)蛋白明顯提高，提示神經(jīng)細(xì)胞的鐵含量增高和鐵沉積與神經(jīng)退行性疾病高度相關(guān)［13-14］，腦鐵調(diào)節(jié)的失衡很可能是神經(jīng)退行性疾病的發(fā)病原因之一［15-16］。但是對鐵代謝相關(guān)蛋白在神經(jīng)細(xì)胞的表達(dá)調(diào)控了解不多，尤其對神經(jīng)細(xì)胞應(yīng)對低氧缺血的表達(dá)調(diào)控知之甚少。為此，本研究擬通過人神經(jīng)母細(xì)胞瘤SHSY5Y細(xì)胞探討低氧對神經(jīng)細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)的影響以及該過程中IRP1的作用，以了解低氧應(yīng)激對神經(jīng)細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)的影響以及神經(jīng)細(xì)胞在適應(yīng)內(nèi)環(huán)境低氧時(shí)對自身鐵穩(wěn)態(tài)的調(diào)節(jié)過程。

1 材料與方法

1.1 細(xì)胞培養(yǎng)和低氧誘導(dǎo)

人神經(jīng)母細(xì)胞瘤SH-SY5Y細(xì)胞（購自中國科學(xué)院細(xì)胞庫）用含10％胎牛血清的DMEM（Gibco公司），在37℃，5％CO2條件下培養(yǎng)。低氧處理之前把含10％胎牛血清的DMEM換成無血清的培養(yǎng)基，置于InvivO2200低氧工作站（英國Ruskinn Techno1ogies公司），在37℃，5％CO2，1％O2條件下培養(yǎng)。

1.2 蛋白質(zhì)印跡法檢測

提取常氧組（低氧0 h）和低氧不同時(shí)間（1，2，4，6 h）組SH-SY5Y細(xì)胞總蛋白，BCA試劑盒（Pierce公司）行蛋白定量，上樣30 μg，行10％SDS-PAGE，轉(zhuǎn)至PVDF膜（Mi11ipore公司）。用含5％脫脂奶粉的TBST室溫封閉2 h，一抗HIF-1（1∶250，Novus Bio1ogica1s公司）、IRP1（1∶250，Santa Cruz公司）、Ft-L（1∶1 000，Abcam公司）、Fpn（1∶300，A1pha Diagnostic公司）、β-肌動(dòng)蛋白（1∶10 000，Sigma公司）孵育，4℃過夜，TBST洗3遍，然后二抗（1∶10 000，Jackson公司）室溫孵育2 h，TBST洗3遍。ECL（Pierce公司）化學(xué)發(fā)光顯色，X光片顯影、定影。膠片拍照，攝取圖像（美國UVP公司EC3 Imaging System），Quantity One分析軟件（Bio-Rad公司）對條帶行定量分析。

1.3 siRNA干擾實(shí)驗(yàn)

消化收集SH-SY5Y細(xì)胞，重懸浮于電轉(zhuǎn)液中，密度為2.5×107個(gè)/mL。將人IRP1 4個(gè)特異性siRNA序列加到200 μL電轉(zhuǎn)液中，含5×106個(gè)細(xì)胞，電穿孔轉(zhuǎn)染干擾片段。室溫靜置5 min，將電轉(zhuǎn)細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移至含10％胎牛血清的DMEM中繼續(xù)培養(yǎng)48 h，檢測低氧2 h未干擾組（對照組）與干擾IRP1組（siIRP1組）Ft-L和Fpn，IRP1蛋白表達(dá)。

siRNA序列如下。siRNA 1正義鏈：5′-UUUCACAACAUGCGGAUUAdtdt-3′，反義鏈：5′-UAAUCCGCAUGUUGUGAAAdtdt-3′；siRNA 2正義鏈：5′-AAAGAUAUCUGGCCGACUAdtdt-3′，反義鏈：5′-UAGUCGGCCAGAUAUCUUUdtdt-3′；siRNA 3正義鏈：5′-GGGCAAAUUUGUCGAGUUCdtdt-3′，反義鏈：5′-GAACUCGACAAAUUUGCCCdtdt-3′；siRNA 4正義鏈：5′-GGCCUAACUCCAUGAGAAUdtdt-3′，反義鏈：5′-AUUCUCGUGGAGUUAGGCCdtdt-3′。

1.4 Fe2+吸收以及細(xì)胞LIP的測定

常氧（低氧0 h）與低氧處理不同時(shí)間（2，4，6 h）以及低氧2 h條件下未干擾IRP1（對照組）與干擾IRP1（siIRP1組）的細(xì)胞分別用PBS洗3遍，收集（1～3）×106個(gè)細(xì)胞，懸于1 mL HBSS。將熒光劑Ca1cein-AM（終濃度為0.125 μmo1/L）與細(xì)胞懸液于37℃共孵育10 min。用PBS洗去胞外探針，用2 mL不含Ca1cein-AM的HBSS重懸細(xì)胞，輕輕吹勻，細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)入帶有微型磁力攪拌子的比色皿中，用熒光分光光度計(jì)（Shimadzu公司）檢測Ca1cein-AM的熒光（激發(fā)波長：488 nm，發(fā)射波長：518 nm），記錄熒光基線值［17］。測定細(xì)胞對Fe2+的吸收時(shí)，當(dāng)基線走平后，加入終濃度為40 μmo1/L硫酸亞鐵銨，淬滅熒光，每隔5 min檢測1個(gè)熒光值并記錄，共30 min。測細(xì)胞LIP量時(shí)，當(dāng)基線走平后，加入終濃度為500 μmo1/L去鐵酮，連續(xù)記錄熒光值1 000 s［18］。

1.5 硫氰酸鹽分光光度法測定細(xì)胞總鐵含量

消化、計(jì)數(shù)、收集常氧（低氧0 h）與低氧處理不同時(shí)間（2，4，6 h）以及低氧2 h條件下未干擾IRP1（對照組）與干擾IRP1（siIRP1組）的細(xì)胞，60℃烘干。加200 μL濃鹽酸60℃消化2 h，再加800 μL H2O2于60℃消化2 h。然后取75 μL樣品消化液至96孔板中，每孔加入75 μL染色液（0.08％K2S2O8，8％KSCN和3.6％HC1），室溫反應(yīng)10～15 min，于490 nm波長下測定D值［19］。

1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

應(yīng)用Sigma Stata 2.0統(tǒng)計(jì)軟件，實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)均以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差（±s）表示，每組取3次獨(dú)立實(shí)驗(yàn)結(jié)果統(tǒng)計(jì)。采用單因素方差分析對實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析，以P＜0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 短時(shí)程低氧條件下鐵穩(wěn)態(tài)的維持

蛋白質(zhì)印跡結(jié)果顯示，與常氧（低氧0 h）相比，低氧處理1，2，4，6 h后，F(xiàn)t-L和Fpn表達(dá)均呈時(shí)間依賴性增加（圖1）。

*：P＜0.05，與常氧組（低氧0 h）相比圖1 低氧對SH-SY5Y細(xì)胞Ft-L和Fpn蛋白表達(dá)的影響

SH-SY5Y細(xì)胞低氧不同時(shí)間（2，4，6 h）后，細(xì)胞Fe2+攝入均較常氧增加，低氧2 h Fe2+攝入即達(dá)峰值，隨后逐漸減少（圖2A）；與常氧（即低氧0 h）相比，低氧2 h LIP增加達(dá)最高峰，而后逐漸減少（圖2B）；然而SH-SY5Y細(xì)胞總鐵水平基本不受短時(shí)程低氧的影響（圖3）。

*：P＜0.05，與常氧比較圖2 低氧對SH-SY5Y細(xì)胞Fe2+攝入和LIP的影響

2.2 低氧條件下HIF-1和IRP1表達(dá)成相反趨勢

結(jié)果如圖4顯示，不同低氧時(shí)間處理（1，2，4，6 h）后，SH-SY5Y細(xì)胞內(nèi)HIF-1蛋白表達(dá)量均明顯高于常氧組（低氧0 h），低氧2 h HIF-1表達(dá)達(dá)最高峰，約比常氧組高50％。

IRP1蛋白表達(dá)先降后升，低氧2 h表達(dá)最低，約降低30％，隨著低氧時(shí)間的延長（4 h和6 h），IRP1蛋白表達(dá)逐漸上升。低氧6 h以內(nèi)，HIF-1蛋白表達(dá)和IRP1蛋白表達(dá)呈相反趨勢，尤其低氧2 h，HIF-1蛋白表達(dá)最高而IRP1蛋白表達(dá)最低；由此表明，低氧2 h可能是細(xì)胞內(nèi)部分蛋白表達(dá)改變的一個(gè)重要拐點(diǎn)。

2.3 下調(diào)IRP1表達(dá)影響低氧條件下細(xì)胞的鐵平衡RNA干擾組IRP1的蛋白表達(dá)較對照組降低約55％，表明siRNA能夠下調(diào)IRP1的表達(dá)。同時(shí)，我們還發(fā)現(xiàn)在低氧2 h的條件下，SH-SY5Y細(xì)胞干擾IRP1蛋白表達(dá)后，F(xiàn)t-L蛋白表達(dá)明顯增加了20％（P＜0.05），而Fpn表達(dá)沒有明顯變化（P＞0.05）。見圖5。

圖3 低氧對SH-SY5Y細(xì)胞總鐵水平的影響

*：P＜0.05，與常氧組（低氧0 h）相比圖4 低氧下SH-SY5Y細(xì)胞HIF-1和IRP1的蛋白表達(dá)

*：P＜0.05，與對照組相比圖5 低氧2 h干擾IRP1對SH-SY5Y細(xì)胞Ft-L和Fpn蛋白表達(dá)的影響

此外，下調(diào)IRP1表達(dá)，低氧2 h對SH-SY5Y細(xì)胞Fe2+的攝入沒有影響，LIP明顯減少50％左右，見圖6；siIRP-1組細(xì)胞總鐵水平較對照組增加了20％（P＜0.05，圖7）。

3 討論

研究證實(shí)，在低氧6 h條件下，HepG2細(xì)胞總鐵和Fe2+水平較常氧條件下明顯增加［20］。本研究結(jié)果顯示，在低氧條件下，F(xiàn)t-L和Fpn水平呈時(shí)間依賴性增加。在組織缺氧和細(xì)胞低氧模型中，鐵蛋白的表達(dá)均會(huì)發(fā)生變化。進(jìn)行性低氧能誘導(dǎo)新生大鼠和人少突膠質(zhì)細(xì)胞中鐵蛋白合成［21-23］。低氧能增加SH-SY5Y細(xì)胞Fe2+攝入和LIP，這與鐵的吸收是LIP的主要來源相一致［24］。在本研究中，我們發(fā)現(xiàn)SH-SY5Y細(xì)胞低氧2 h Fe2+攝入比低氧4 h和6 h多，可能是由于Fe2+攝入是一個(gè)持續(xù)的動(dòng)態(tài)過程，胞內(nèi)鐵的積聚也隨時(shí)間推移越來越多，因而反饋性抑制Fe2+攝入和LIP。此外，持續(xù)的Fe2+攝入可導(dǎo)致Ft-L隔離的鐵增多，故Ft-L蛋白表達(dá)隨低氧時(shí)間延長而增加。此外，本研究中細(xì)胞Fpn水平逐漸增加，表明細(xì)胞鐵輸出也呈時(shí)間依賴性增多，以維持細(xì)胞的總鐵水平。因而，短時(shí)程（6 h）低氧條件下，SH-SY5Y細(xì)胞的鐵穩(wěn)態(tài)能保持穩(wěn)定。研究報(bào)道低氧能增加人肺泡巨噬細(xì)胞和A549細(xì)胞鐵蛋白的表達(dá)但細(xì)胞鐵含量保持不變［25］，本研究結(jié)果與其類似。

哺乳動(dòng)物細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)受IRPs轉(zhuǎn)錄后調(diào)節(jié)［1］，在人大腦中主要是IRP1起作用［26］。我們前期研究表明，IRP1受低氧調(diào)節(jié)，HepG2細(xì)胞物理或化學(xué)低氧6 h IRP1表達(dá)下調(diào)［12］。研究表明IRP1對低氧和再氧合的反應(yīng)呈細(xì)胞特異性［27］。本研究結(jié)果顯示，SH-SY5Y細(xì)胞低氧處理2 h，F(xiàn)e2+攝入和LIP增加最多，HIF-1a蛋白表達(dá)達(dá)峰值，IRP1蛋白表達(dá)達(dá)最低，提示1％低氧2 h對SH-SY5Y細(xì)胞的影響最明顯。故我們以低氧2 h為關(guān)鍵點(diǎn)，研究IRP1對SH-SY5Y細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)的影響。

圖6 低氧2h，干擾IRP1對SH-SY5Y細(xì)胞Fe2+攝入和LIP的影響

*：P＜0.05，與對照組相比圖7 低氧2h干擾IRP1對SH-SY5Y細(xì)胞總鐵水平的影響

雖然短時(shí)程（＜6 h）低氧對SH-SY5Y細(xì)胞的總鐵水平?jīng)]有明顯影響，但改變了鐵的攝入、輸出和存儲(chǔ)，由此推測正是通過IRP1對這些鐵代謝相關(guān)蛋白的調(diào)控，參與了短時(shí)程低氧下SH-SY5Y細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)的維持。下調(diào)SH-SY5Y細(xì)胞中IRP1表達(dá)后，低氧2 h條件下，F(xiàn)t-L表達(dá)增加，LIP明顯減少，推測細(xì)胞LIP因被鐵蛋白隔離的鐵增多而減少；Fe2+攝入沒有明顯變化，F(xiàn)pn表達(dá)也沒有變化即鐵外流沒有變化，但持續(xù)的Fe2+攝入可增加細(xì)胞總鐵含量，故細(xì)胞總鐵水平有明顯增加。提示低氧條件下，如果沒有足夠IRP1蛋白的參與，細(xì)胞鐵攝入、輸出和存儲(chǔ)的方式均會(huì)發(fā)生改變，從而影響細(xì)胞的鐵穩(wěn)態(tài)。但我們只用siRNA的方法研究了低氧條件下IRP1在維持細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)過程中的作用，IRP1對細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)的影響及機(jī)制仍需作深入研究。低氧條件下細(xì)胞Fe2+攝入的增多提示可能有鐵吸收蛋白表達(dá)的增加。二價(jià)金屬離子轉(zhuǎn)運(yùn)體（DMT1）和轉(zhuǎn)鐵蛋白受體（TfR1）是兩種重要的鐵吸收蛋白，二者在低氧條件下都受HIF-1的轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)［20］，對鐵濃度改變的反應(yīng)也均受IRP1轉(zhuǎn)錄后調(diào)節(jié)［28］。在低氧條件下如何通過HIF-1/HRE和IRP1/IRE體系協(xié)同調(diào)節(jié)DMT1/ TfR1來影響鐵的吸收有待進(jìn)一步研究。

細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)受IRP1和IRP2轉(zhuǎn)錄后調(diào)控。當(dāng)氧含量豐富時(shí)，IRP1與鐵代謝相關(guān)蛋白mRNAs的UTRs的IREs結(jié)合，調(diào)節(jié)鐵穩(wěn)態(tài)，而IRP2經(jīng)蛋白酶體途徑被快速降解［29］。而低氧時(shí)，IRP2是與IREs結(jié)合的主要蛋白，結(jié)構(gòu)穩(wěn)定［30］。低氧條件下，IRP1表達(dá)下調(diào)對SH-SY5Y細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)的影響可能是由于IRP2的代償性作用。由于IRP2也是主要的鐵調(diào)節(jié)蛋白，低氧條件下IRP2在維持細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)過程中的作用值得進(jìn)一步研究。

綜上所述，短時(shí)程低氧（＜6 h，1％O2）條件下，SH-SY5Y細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)保持穩(wěn)定。低氧2 h，當(dāng)IRP1下調(diào)后，由于細(xì)胞總鐵含量增加，SH-SY5Y細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)發(fā)生改變。故低氧條件下，IRP1在SH-SY5Y細(xì)胞鐵穩(wěn)態(tài)的調(diào)節(jié)過程中起重要作用。

［1］ Ha11iwe11 B，Gutteridge JM.Ro1e of free radica1s and cata1ytic meta1 ions in human disease：an overview［J］. Methods Enzymo1，1990，186：1-85.

［2］ Hentze MW，Kühn LC.Mo1ecu1ar contro1 of vertebrate iron metabo1ism：mRNA-based regu1atory circuits operated by iron，nitric oxide，and oxidative stress［J］.Proc Nat1 Acad Sci U S A，1996，93（16）：8175-8182.

［3］ Eisenstein RS.Iron regu1atory proteins and the mo1ecu-1ar contro1 of mamma1ian iron metabo1ism［J］.Annu Rev Nutr，2000，20：627-662.

［4］ Schneider BD，Leibo1d EA.Regu1ation of mamma1ian iron homeostasis［J］.Curr Opin C1in Nutr Metab Care，2000，3（4）：267-273.

［5］ MacKenzie EL，Iwasaki K，Tsuji Y.Intrace11u1ar iron transport and storage：from mo1ecu1ar mechanisms to hea1th imp1ications［J］.Antioxid Redox Signa1，2008，10（6）：997-1030.

［6］ Arosio P，Ingrassia R，Cavadini P.Ferritins：a fami1y of mo1ecu1es for iron storage，antioxidation and more［J］.Biochim Biophys Acta，2009，1790（7）：589-599.

［7］ A1berghini A，Reca1cati S，Tacchini L，et a1.Loss of the von Hippe1 Lindau tumor suppressor disrupts iron homeostasis in rena1 carcinoma ce11s［J］.J Bio1 Chem，2005，280（34）：30120-30128.

［8］ Anderson GJ，Vu1pe CD.Mamma1ian iron transport［J］.Ce11 Mo1 Life Sci，2009，66（20）：3241-3261.

［9］ Thomas JD，Johannes GJ.Identification of mRNAs that continue to associate with po1ysomes during hypoxia［J］.RNA，2007，13（7）：1116-1131.

［10］ Martens LK，Kirschner KM，Warnecke C，et a1.Hypoxia-inducib1e factor-1（HIF-1）is a transcriptiona1 activator of the TrkB neurotrophin receptor gene［J］.J Bio1 Chem，2007，282（19）：14379-14388.

［11］ Ke Q，Costa M.Hypoxia-inducib1e factor-1（HIF-1）［J］.Mo1 Pharmaco1，2006，70（5）：1469-1480.

［12］ Luo QQ，Wang D，Yu MY，et a1.Effect of hypoxia on the expression of iron regu1atory proteins 1 and the mechanisms invo1ved［J］.IUBMB Life，2011，63（2）：120-128.

［13］ Bartzokis G，Tish1er TA，Shin IS，et a1.Brain ferritin iron as a risk factor for age at onset in neurodegenerative diseases［J］.Ann N Y Acad Sci，2004，1012：224-236.

［14］ Bartzokis G，Tish1er TA，Lu PH，et a1.Brain ferritin iron may inf1uence age-and gender-re1ated risks of Neurodegeneration［J］.Neurobio1 Aging，2007，28（3）：414-423.

［15］ Qian ZM，Shen X.Brain iron transport and neurodegeneration［J］.Trends Mo1 Med，2001，7（3）：103-108.

［16］ Lee DW，Andersen JK，Kaur D.Iron dysregu1ation and neurodegeneration：the mo1ecu1ar connection［J］.Mo1 Interv，2006，6（2）：89-97.

［17］ Breuer W，Epsztejn S，Cabantchik ZI.Iron acquired from transferrin by K562 ce11s is de1ivered into a cytop1asmic poo1 of che1atab1e iron（Ⅱ）［J］.J Bio1 Chem，1995，270（41）：24209-24215.

［18］ Barnabé N，Zastre JA，Venkataram S，et a1.Deferiprone protects against doxorubicin-induced myocyte cytotoxicity［J］.Free Radic Bio1 Med，2002，33（2）：266-275.

［19］ Liu YX，Chen ZP，Wang JK.Systematic eva1uation of biocompatibi1ity of magnetic Fe3O4nanopartic1es with six different mamma1ian ce11 1ines［J］.J Nanopart Res，2011，13：199-212.

［20］ Wang D，Wang LH，Zhao Y，et a1.Hypoxia regu1ates the ferrous iron uptake and reactive oxygen species 1eve1 via diva1ent meta1 transporter 1（DMT1）exon1B by hypoxia-inducib1e factor-1［J］.IUBMB Life，2010，62（8）：629-636.

［21］ Qi Y，Dawson G.Hypoxia induces synthesis of a nove1 22-kDa protein in neonata1 rat o1igodendrocytes［J］.J Neurochem，1992，59（5）：1709-1716.

［22］ Qi Y，Dawson G.Hypoxia specifica11y and reversib1y induces the synthesis of ferritin in o1igodendrocytes and human o1igodendrog1iomas［J］.J Neurochem，1994，63（4）：1485-1490.

［23］ Qi Y，Jamindar TM，Dawson G.Hypoxia a1ters iron homeostasis and induces ferritin synthesis in o1igodendrocytes［J］.J Neurochem，1995，64（6）：2458-2464.

［24］ Kruszewski M.Labi1e iron poo1：the main determinant of ce11u1ar response to oxidative stress［J］.Mutat Res，2003，531（1/2）：81-92.

［25］ Smith JJ，O′Brien-Ladner AR，Kaiser CR，et a1. Effects of hypoxia and nitric oxide on ferritin content of a1veo1ar ce11s［J］.J Lab C1in Med，2003，141（5）：309-317.

［26］ Hu J，Connor JR.Demonstration and characterization of the iron regu1atory protein in human brain［J］.J Neurochem，1996，67（2）：838-844.

［27］ Irace C，Scorzie11o A，Maffettone C，et a1.Divergent modu1ation of iron regu1atory proteins and ferritin biosynthesis by hypoxia/reoxygenation in neurones and g1ia1 ce11s［J］.J Neurochem，2005，95（5）：1321-1331.

［28］ Sa1ahudeen AA，Bruick RK.Maintaining Mamma1ian iron and oxygen homeostasis：sensors，regu1ation，and cross-ta1k［J］.Ann N Y Acad Sci，2009，1177：30-38.

［29］ Rouau1t TA.The ro1e of iron regu1atory proteins in mamma1ian iron homeostasis and disease［J］.Nat Chem Bio1，2006，2（8）：406-414.

［30］ Meyron-Ho1tz EG，Ghosh MC，Rouau1t TA.Mamma1ian tissue oxygen 1eve1s modu1ate iron-regu1atory protein activities in vivo［J］.Science，2004，306（5704）：2087-2090.

Involvement of iron regulatory protein 1 in iron homeostasis under hypoxia in human neuroblastoma（SH-SY5Y）cells

YU Min-yan1，2，WANG Dan2，ZHU Li2
（1.Center for Reproductive Medicine，Affi1iated Hospita1 of Nantong University，Nantong Jiangsu 226001；2.Institute of Nautica1 Medicine，Nantong University，Nantong Jiangsu 226001，China）

Objective：To investigate the effects of iron regu1atory protein 1（IRP1）on iron homeostasis in human neurob1astoma SH-SY5Y ce11s under hypoxia.Methods：The SH-SY5Y ce11s were exposed to hypoxia for 0，1，2，4，6 h（1％O2），and then the tota1 proteins were extracted to detect the expression of ferritin 1ight chain（Ft-L）and ferroportin（Fpn）by Western b1otting.Ca1cein-AM was used to measure ferrous iron uptake and 1abi1e iron poo1（LIP）in SH-SY5Y ce11s.Spectrophotometry was used to determine the tota1 ce11u1ar iron 1eve1 with thiocyanate.The effects of IRP1 siRNA on iron homeostasis in SH-SY5Y ce11s under hypoxia were detected.Results：Iron homeostasis remained unchanged when ce11s were exposed to 1％hypoxia for 0-6 h a1though the expression of Ft-L and Fpn increased，and the 1eve1 of ferrous iron uptake and LIP e1evated.When IRP1 was knocked down using IRP1-specific siRNA，the expression of Ft-L and LIP increased，whi1e Fpn and ferrous iron uptake did not a1tered obvious1y.The iron homeostasis in SH-SY5Y ce11s a1tered under 2 h hypoxia in terms of the ce11u1ar tota1 iron content increased.Conclusion：IRP1 regu1ated iron homeostasis in SH-SY5Y ce11s under hypoxia.

hypoxia；iron regu1atory protein 1；iron homeostasis；SH-SY5Y ce11s；1abi1e iron poo1

R392.2

A

1671-7783（2015）06-0466-06

10.13312/j.issn.1671-7783.y150154

2015-07-08 ［編輯］ 劉星星

國家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目（30971197，31171143，31471141）

郁敏燕（1988—），女，研究實(shí)習(xí)員，碩士；朱俐（通訊作者），教授，博士生導(dǎo)師，E-mai1：zhu1i1i65@126.com