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    蚊蟲(chóng)RNAi顯微注射方法的建立*

    2015-11-12 01:32:14李春曉廖承紅趙彤言
    關(guān)鍵詞:庫(kù)蚊基因功能培養(yǎng)皿

    吳 群 李春曉 廖承紅 韓 謙** 趙彤言**

    (1.海南大學(xué)農(nóng)學(xué)院,???570228;2.軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院微生物流行病研究所,病原微生物生物安全國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100071)

    隨著生物技術(shù)的快速發(fā)展,已有越來(lái)越多生物技術(shù)應(yīng)用到昆蟲(chóng)基因功能研究中,其中RNAi技術(shù)已成為研究蚊蟲(chóng)基因功能主要生物技術(shù)之一(Zhuetal.,2013; Lietal.,2014)。RNA干擾是指外源性或內(nèi)源性的dsRNA(Double-stranded RNA,dsRNA)特異性地引發(fā)基因表達(dá)沉默的現(xiàn)象(王翔,2013)。如何有效將外源性dsRNA導(dǎo)入蚊蟲(chóng)體內(nèi)是實(shí)現(xiàn)RNA干擾成功的關(guān)鍵步驟。將線蟲(chóng)浸泡在dsRNA溶液中,或者喂食線蟲(chóng)表達(dá)dsRNA的細(xì)菌以及向線蟲(chóng)體腔注射dsRNA都能引起RNAi效應(yīng)(Burandetal.,2013),而對(duì)于昆蟲(chóng)RNAi主要通過(guò)微量注射將外源dsRNA導(dǎo)入昆蟲(chóng)血淋巴中或者喂食表達(dá)dsRNA細(xì)菌,其中微量注射法已經(jīng)越來(lái)越多應(yīng)用到完全變態(tài)昆蟲(chóng)的所有生命階段(Scottetal.,2013)。Drake(2015)和Li(2014)等利用RNAi研究埃及伊蚊通道蛋白基因和致倦庫(kù)蚊Culexpipiensquinquefasciatus抗藥性相關(guān)G蛋白偶聯(lián)受體基因功能時(shí)都是通過(guò)微量注射法將dsRNA導(dǎo)入蚊蟲(chóng)體內(nèi)。然而在大量應(yīng)用RNAi技術(shù)的文獻(xiàn)中并未對(duì)蚊蟲(chóng)微量注射進(jìn)行詳細(xì)闡述,在Garver(2007)和Luna(2007)公布的岡比亞按蚊和埃及伊蚊微量注射視頻中也只能看到大致構(gòu)建步驟。此外,對(duì)于致倦庫(kù)蚊微量注射詳細(xì)構(gòu)建步驟報(bào)道甚少。如能詳細(xì)闡述構(gòu)建蚊蟲(chóng)微量注射方法,將更有利于研究者構(gòu)建微量注射體系,更好地利用RNAi等生物技術(shù)開(kāi)展基因功能研究。本文以致倦庫(kù)蚊為注射對(duì)象來(lái)構(gòu)建蚊蟲(chóng)微量注射最佳方案,為后續(xù)研究致倦庫(kù)蚊基因功能提供技術(shù)支持和理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)材料

    供試蚊種:致倦庫(kù)蚊敏感株來(lái)源于軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院微生物流行病研究所媒介生物學(xué)和防治研究室,蚊蟲(chóng)養(yǎng)殖條件為:溫度(26±1)℃、相對(duì)濕度60%±5%、光照:黑暗=14 h:10 h,成蚊喂食8%糖水,羽化3~5 d的蚊蟲(chóng)用于實(shí)驗(yàn)。

    蚊蟲(chóng)圖像采集:體視顯微鏡(型號(hào):M165C,Leica公司),數(shù)碼圖像采集儀及軟件(型號(hào):Automontage-pro,SYNCROS 公司)

    1.2 方法

    1.2.1蚊蟲(chóng)的麻醉:用吸蚊器吸取羽化3~5 d并中斷糖水4 h的致倦庫(kù)蚊,吸5次,每個(gè)吸蚊器收集盒吸取蚊蟲(chóng)數(shù)量控制在300只左右,將吸蚊器收集盒放入-30℃冰箱中,冰凍時(shí)間分別為3、4、5、7和10 min;將每個(gè)收集盒內(nèi)蚊蟲(chóng)平均倒入放置于冰上的3個(gè)培養(yǎng)皿中,冰上放置1 h后將培養(yǎng)皿中蚊蟲(chóng)放置蚊籠中回暖(養(yǎng)蟲(chóng)室條件:溫度(26±1)℃、相對(duì)濕度60%±5%)并喂食8%糖水,統(tǒng)計(jì)冰凍不同時(shí)間造成的死亡率。

    用吸蚊器吸取羽化3~5 d并中斷糖水4 h的致倦庫(kù)蚊,吸5次,每個(gè)吸蚊器收集盒吸取蚊蟲(chóng)數(shù)量控制在300只左右,向吸蚊器收集盒充CO2氣體,分別持續(xù)時(shí)間為0.5、1.0、2.0、4.0和10.0 min;將每個(gè)收集盒內(nèi)蚊蟲(chóng)倒入放冰上的3個(gè)培養(yǎng)皿中,培養(yǎng)皿放置于冰上,1 h后將培養(yǎng)皿中蚊蟲(chóng)放置蚊籠中回暖(養(yǎng)蟲(chóng)室條件同上)并喂食8%糖水,統(tǒng)計(jì)CO2充氣不同時(shí)長(zhǎng)蚊蟲(chóng)的死亡率。

    1.2.2蚊蟲(chóng)液體注射劑量及注射部位的選?。罕狙芯坎捎糜蛪菏绞謩?dòng)微量注射儀(CellTram oil,Eppendorf 公司)對(duì)蚊蟲(chóng)進(jìn)行注射;利用最佳麻醉方式對(duì)蚊蟲(chóng)進(jìn)行麻醉,從蚊蟲(chóng)正對(duì)胸部腹面和胸部側(cè)面進(jìn)行注射,通過(guò)轉(zhuǎn)動(dòng)助推器旋鈕格數(shù)引起蚊蟲(chóng)腹部變化情況來(lái)確定注射劑量,統(tǒng)計(jì)蚊蟲(chóng)成活率。

    1.3 數(shù)據(jù)處理

    用SPSS 13.0 進(jìn)行顯著性分析,比較不同處理間的差異性,顯著水平α=0.05。

    2 結(jié)果

    2.1 蚊蟲(chóng)不同麻醉方式效果

    對(duì)蚊蟲(chóng)進(jìn)行微量注射時(shí),一般對(duì)于活動(dòng)性強(qiáng)的蚊蟲(chóng),進(jìn)行適當(dāng)?shù)穆樽砗?采用乙醚、CO2或冰)再注射,可以避免由于蟲(chóng)體扭動(dòng)而使注射的dsRNA流出體外(田宏剛等,2013)。本實(shí)驗(yàn)選取冰凍和CO2來(lái)進(jìn)行麻醉,實(shí)驗(yàn)過(guò)程中當(dāng)冰凍時(shí)間為3.0 min時(shí),蚊蟲(chóng)并不能全部達(dá)到麻醉狀態(tài),4.0 min時(shí)可以明顯看出蚊蟲(chóng)處于麻醉狀態(tài),放置冰上1 h后,成活率達(dá)98.97%,由圖1中A可以看出隨著冰凍時(shí)間的增加對(duì)蚊蟲(chóng)造成的傷害越來(lái)越大,成活率成逐漸下降趨勢(shì)。

    對(duì)蚊蟲(chóng)充CO2氣體來(lái)進(jìn)行麻醉時(shí),可以看出當(dāng)充氣時(shí)間為0.5 min時(shí)蚊蟲(chóng)就能達(dá)到麻醉狀態(tài),并且通氣持續(xù)時(shí)間達(dá)到1.0、2.0、4.0 min后,蚊蟲(chóng)成活率均為100%,隨著時(shí)間增加到10 min時(shí),CO2對(duì)蚊蟲(chóng)造成嚴(yán)重傷害其成活率降為36.50%。

    圖1 不同麻醉方式處理后蚊蟲(chóng)成活率Fig.1 The survival rate of mosquitoes treated with different methodsA.冰凍;B.CO2處理. 標(biāo)有不同字母表示具有顯著性差異(P<0.05)A. The survival rate of mosquitoes freezed with different durations;B. The survival rate of mosquitoes treated with CO2 with different durations.The survival rates with different letters are significantly different (P<0.05).

    2.2 注射劑量及部位

    蚊蟲(chóng)注射量的大小主要參照Luna等(2007)公布的視頻(圖2 A-B為視頻截圖)。當(dāng)轉(zhuǎn)動(dòng)微量注射儀旋轉(zhuǎn)扭格約0.75格即注射量為0.7~0.8 μL時(shí)可以明顯觀察到蚊蟲(chóng)腹部由圖2中 C漲大到D,并在肉眼下也能明顯觀察到蚊蟲(chóng)腹部脹大。

    選擇從蚊蟲(chóng)的胸部進(jìn)行注射,分別從蚊蟲(chóng)胸部腹面與側(cè)面注射兩組。從表1中可以看出正對(duì)蚊蟲(chóng)胸部腹面注射成活率僅為67.81%,明顯低于從胸部側(cè)面注射成活率(93.85%),由此可見(jiàn)對(duì)胸部腹面注射對(duì)蚊蟲(chóng)造成傷害明顯要比從側(cè)面進(jìn)行注射大。

    圖2 注射前后蚊蟲(chóng)腹部變化情況Fig.2 Changes of mosquito abdomen before and after injectionA-B.Luna等(2007)公布的蚊蟲(chóng)注射視頻截圖,A: 注射前; B: 注射dsRNA后. C-D.本實(shí)驗(yàn)注射前后; C: 注射前; D: 注射0.7~0.8 μL dsRNA后。A-B:Published video screenshots with microinjected mosquito from Luna et al.(2007)and Garver(2007). A: The mosquito before injecting; B: The mosquito after injected dsRNA;C-D: Before and after injection in our experiment; C: The mosquito before injecting; D: The mosquito after injected 0.7~0.8 μL dsRNA.

    表1 不同部位注射后蚊蟲(chóng)成活率Tab.1 Survival rate of mosquitoes at different mode of the injection

    3 討論

    本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)利用CO2麻醉效果要比冰凍麻醉效果更佳,用CO2處理0.5~4.0 min,然后置于冰上1 h后蚊蟲(chóng)能夠全部復(fù)蘇,不會(huì)對(duì)蚊蟲(chóng)造成傷害;而在冰凍麻醉蚊蟲(chóng)時(shí),從冰凍5 min后開(kāi)始蚊蟲(chóng)回暖,將引起蚊蟲(chóng)死亡,死亡率達(dá)10.37%。當(dāng)冰凍時(shí)間為4 min且放置于冰上持續(xù)1 h后死亡率較低(1.03%)能達(dá)到通CO2氣體0.5~4 min的麻醉效果,隨著冷凍時(shí)間的增加蚊蟲(chóng)死亡率也逐漸增加,這與以往研究結(jié)果不同。梁國(guó)棟(1991)等發(fā)現(xiàn)將蚊蟲(chóng)置冰箱冷凍室5 min左右,使其凍麻倒入一玻璃平皿,平皿下部放一冰盤(pán)以維持蚊蟲(chóng)的凍麻狀態(tài)。室溫下以冰塊維持凍麻2 h的蚊蟲(chóng)回暖后,可全部正常活動(dòng),不會(huì)因長(zhǎng)時(shí)間凍麻而死亡。我們推測(cè)因選取的蚊蟲(chóng)不同造成的差異。本研究實(shí)驗(yàn)對(duì)象致倦庫(kù)蚊主要分布在北緯32~34℃以南的地區(qū)(邢丹,2013),耐寒能力比較弱,從中可以看出利用冰凍麻醉蚊蟲(chóng)時(shí)可以根據(jù)蚊蟲(chóng)種類的不同適當(dāng)增加或減少冰凍時(shí)間。

    注射前對(duì)蚊蟲(chóng)進(jìn)行中斷糖水飼養(yǎng)4 h,使蚊蟲(chóng)處于空腹?fàn)顟B(tài),不僅有利于觀察注射后腹部變化,還能盡可能減少蚊蟲(chóng)產(chǎn)生降解dsRNA的酶類。對(duì)蚊蟲(chóng)注射量主要參照Luna等(2007)等公布的視頻,進(jìn)行注射時(shí)主要以肉眼能明顯觀察到腹部變化情況為準(zhǔn),實(shí)驗(yàn)中當(dāng)注射量為0.7~0.8 μL能明顯看到蚊蟲(chóng)腹部脹大。早在1994年就有報(bào)道平均每只白紋伊蚊一次吸血量為1.3750~1.4820 mg,其吸血量大約為體重的59.6%~67.5%(張?jiān)浦牵?994),說(shuō)明蚊蟲(chóng)腹部可以容納0.7~0.8 μL液體。

    田宏剛等(2013)提出對(duì)昆蟲(chóng)進(jìn)行微量注射選擇從昆蟲(chóng)頭部向尾部方向注射,因?yàn)槔ハx(chóng)的血液流動(dòng)在背血管以外是從頭向尾,這樣可以最大程度的避免dsRNA由于體液的流動(dòng)而被排出體外。從閆亮珍等(2011)公布的致倦庫(kù)蚊胸部切片可以看出,致倦庫(kù)蚊胸部主要分布有大量的肌肉組織,適合進(jìn)行注射。胸部側(cè)面的氣孔肉眼下無(wú)法觀察到,從側(cè)面注射會(huì)不會(huì)影響蚊蟲(chóng)成活率,為此我們進(jìn)行了蚊蟲(chóng)胸部腹面與側(cè)面注射實(shí)驗(yàn),結(jié)果正對(duì)胸部腹面成活率明顯低于側(cè)面,側(cè)面注射可能對(duì)蚊蟲(chóng)的傷害要更小。我們推測(cè)正對(duì)胸部進(jìn)行注射會(huì)對(duì)分布在上面胸神經(jīng)節(jié)造成傷害(閆亮珍等,2011),從而增加蚊蟲(chóng)死亡率。

    本實(shí)驗(yàn)構(gòu)建的顯微注射技術(shù)主要用于后續(xù)蚊蟲(chóng)氣味受體基因功能研究,而有研究證明黑腹果蠅的受體Gr21a和Gr63a,共同表達(dá)時(shí)能對(duì)CO2表現(xiàn)出敏感性,在岡比亞按蚊中與之同源的受體GPRGR22 和GPRGR24也分布在感知CO2的下顎須中(Jones,2007),為了不不影響對(duì)氣味受體研究結(jié)果的準(zhǔn)確性,后續(xù)實(shí)驗(yàn)中主要采用與CO2麻醉效果一樣的冰凍4 min來(lái)對(duì)蚊蟲(chóng)進(jìn)行麻醉。本研究成功構(gòu)建蚊蟲(chóng)顯微注射方法,為后續(xù)蚊蟲(chóng)基因功能研究提供技術(shù)支持及理論依據(jù)。

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