楊 婷,祝 霞,李 潁,韓舜愈,楊學(xué)山(1.甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅蘭州7300700;2.甘肅省葡萄與葡萄酒工程學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,甘肅蘭州730070;3.甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院,甘肅蘭州730070)
葡萄酒泥酵母β-葡聚糖提取工藝條件優(yōu)化
楊婷1,2,祝霞1,2,李潁1,2,韓舜愈1,2,楊學(xué)山2,3,*
(1.甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅蘭州7300700;2.甘肅省葡萄與葡萄酒工程學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,甘肅蘭州730070;3.甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院,甘肅蘭州730070)
以誘導(dǎo)自溶的葡萄酒泥酵母細(xì)胞壁為試材,在料液比、堿液濃度、浸提時(shí)間和浸提溫度等單因素實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)上,采用正交實(shí)驗(yàn)優(yōu)化β-葡聚糖提取最優(yōu)工藝條件。結(jié)果表明,葡萄酒泥酵母β-葡聚糖提取優(yōu)化的最佳工藝條件為:料液比1∶40(g/mL),NaOH濃度3%,浸提溫度80℃,浸提時(shí)間1.5 h,在此條件下β-葡聚糖提取率為19.38%。此方法提取率較高且簡(jiǎn)單易行、成本較低。
葡萄酒泥酵母,β-葡聚糖,堿法,提取
酵母β-葡聚糖位于細(xì)胞壁內(nèi)層,占細(xì)胞壁干物質(zhì)量的40%~60%左右[1-2]。β-葡聚糖具有抗癌、抗腫瘤、抗病毒、降低膽固醇和血脂、增強(qiáng)免疫力等生理活性,是一種良好的生物效應(yīng)調(diào)節(jié)劑[3-5];同時(shí)由于其具有高粘性、高持水性和熱穩(wěn)定性等特點(diǎn)[6],可廣泛應(yīng)用于醫(yī)藥、食品、化妝品、建筑材料等領(lǐng)域[7]。在制備酵母β-葡聚糖過(guò)程中,需要大批量發(fā)酵培養(yǎng)酵母細(xì)胞,既提高了生產(chǎn)成本而且會(huì)產(chǎn)生大量廢棄物。葡萄酒泥是葡萄酒釀造過(guò)程中最主要的副產(chǎn)物,含有大量的酵母細(xì)胞[8]。據(jù)統(tǒng)計(jì)我國(guó)每年都會(huì)產(chǎn)生約4萬(wàn)噸葡萄酒泥酵母[9],實(shí)際生產(chǎn)中大多作為廉價(jià)粗飼料出售或直接排放,不僅浪費(fèi)了生物資源,同時(shí)對(duì)環(huán)境也造成了很大污染[10]。因此開展葡萄酒泥酵母資源化利用研究,既可降低酵母β-葡聚糖生產(chǎn)原料成本,又能實(shí)現(xiàn)較高的經(jīng)濟(jì)效益和社會(huì)效益[11]。
目前國(guó)內(nèi)外主要利用酵母細(xì)胞以酸法、堿法和生物酶法提取酵母β-葡聚糖[12]。由于酵母細(xì)胞壁質(zhì)地堅(jiān)硬,完全破壁困難導(dǎo)致生物酶法提取率較低,生產(chǎn)成本較高。酸法、堿法盡管得率較高,但產(chǎn)品中雜質(zhì)過(guò)多,純度不高[13-14]。利用誘導(dǎo)自溶后去除細(xì)胞內(nèi)容物的酵母細(xì)胞壁提取β-葡聚糖,可通過(guò)純化原料提高產(chǎn)物純度[15]。本實(shí)驗(yàn)利用誘導(dǎo)自溶后的葡萄酒泥細(xì)胞壁為原料,分析料液比、堿液濃度、浸提時(shí)間和溫度對(duì)β-葡聚糖提取的影響,并對(duì)其工藝技術(shù)進(jìn)行優(yōu)化,以期為葡萄酒泥酵母β-葡聚糖開發(fā)利用提供技術(shù)支持。
1.1材料與儀器
葡萄酒酵母泥甘肅祁連葡萄酒業(yè)有限公司;葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品Sigma公司;冰乙酸、異丙醇、無(wú)水乙醇、氫氧化鉀、氫氧化鈉、氯化鈉、乙酸鈉、蒽酮等均為國(guó)產(chǎn)分析純。
HH-1數(shù)顯恒溫水浴鍋上海梅香儀器有限公司;LDZX-50KBS立式壓力蒸汽滅菌器上海申安醫(yī)療器械廠;TU-1810紫外可見分光光度計(jì)北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;NSKY-100B恒溫培養(yǎng)振蕩器上海蘇坤實(shí)業(yè)有限公司;AL204電子天平梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;PHS-3C pH計(jì)上海雷磁;電熱鼓風(fēng)干燥箱上海一恒科學(xué)儀器有限公司;L550臺(tái)式低速離心機(jī)長(zhǎng)沙湘儀離心機(jī)儀器有限公司。
1.2實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1提取工藝流程葡萄酒泥→誘導(dǎo)自溶→離心取沉淀(4000 r/min,15 min)→除甘露聚糖→離心取沉淀(4000 r/min,15 min)→堿提→離心取沉淀(4000 r/min,15 min)→有機(jī)溶劑處理除脂類→離心取沉淀(4000 r/min,15 min)→干燥(37℃,12 h)→β-葡聚糖含量測(cè)定
1.2.2操作要點(diǎn)
1.2.2.1酵母自溶參照本實(shí)驗(yàn)室已建立的方法,準(zhǔn)確稱取4 g葡萄酒泥酵母,加入2%NaCl后溶于pH4.5的醋酸-醋酸鈉緩沖液,47.5℃誘導(dǎo)自溶33 h,85℃水浴滅酶15 min,4000 r/min離心15 min,取沉淀。
1.2.2.2除甘露聚糖稱取自溶后的酵母細(xì)胞壁2.5 g,以料液比為1∶12.5混懸,加入3%的KOH溶液,90℃水浴2 h,冷卻至室溫,用20%的冰乙酸溶液中和至pH7,攪拌10 min,4000 r/min離心15 min,取沉淀。
1.2.2.3β-葡聚糖堿提取按一定的料液比加入NaOH溶液,水浴保溫一定時(shí)間,4000 r/min離心15 min,取沉淀[16]。
1.2.2.4有機(jī)溶劑處理除脂類將沉淀用蒸餾水洗滌2次,加入4%的冰乙酸溶液3 mL,室溫下放置2 h,4000 r/min離心15 min,取沉淀,蒸餾水洗滌2次,以料液比為1∶2加入異丙醇,4℃靜置12 h,4000 r/min離心15 min,取沉淀。
1.2.3β-葡聚糖含量測(cè)定
1.2.3.1標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制參照文獻(xiàn)[17]的方法,準(zhǔn)確配制葡萄糖質(zhì)量濃度分別為0、20、40、60、80、100 μg/mL,加入4 mL 0.2%蒽酮試劑,混合均勻后迅速冷卻,待各試管加樣完成后一起浸于沸水中,加蓋,自煮沸起10 min取出,迅速冷卻,室溫放置10 min。于620 nm波長(zhǎng)下比色,記錄吸光值,并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.2.3.2樣品制備準(zhǔn)確稱取20.0 mg固體樣品放入水解管中,加入1.5 mL 72%的濃H2SO4,室溫下靜置3 h,加入蒸餾水使H2SO4的最終濃度為2 mol/L,置于100℃水浴中水解4 h,冷卻至室溫,調(diào)pH至中性。水解液轉(zhuǎn)入100 mL容量瓶定容備用。
1.2.3.3樣品測(cè)定準(zhǔn)確吸取樣品溶液1 mL,加入蒽酮試劑4 mL,在620 nm下測(cè)吸光值,以標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算β-葡聚糖含量。
1.2.3.4β-葡聚糖得率的計(jì)算
式中:m0-β-葡聚糖質(zhì)量(g);c-根據(jù)線性回歸方程計(jì)算得到的樣品溶液濃度(μg/mL);v-樣品溶液體積(mL);m1-樣品溶液中β-葡聚糖的質(zhì)量(g);m2-粗多糖提取物的質(zhì)量(g)。
式中:m0-β-葡聚糖質(zhì)量(g);m3-酵母細(xì)胞壁干重(g)。
1.2.4單因素實(shí)驗(yàn)
1.2.4.1料液比對(duì)β-葡聚糖提取的影響分別稱取5份酵母細(xì)胞壁各2.5 g,去除甘露聚糖后,分別以1∶10、1∶20、1∶30、1∶40、1∶50(g/mL)的料液比加入4%的NaOH溶液,置于80℃水浴鍋中處理2.5 h,冷卻至室溫后離心取沉淀,蒸餾水洗滌2次,加入4%的冰乙酸溶液3 mL,室溫下處理2 h,離心取沉淀,蒸餾水洗滌2次。向沉淀中加入2倍體積異丙醇,4℃靜置12 h,離心取沉淀,加入3 mL無(wú)水乙醇溶液洗滌2次。將沉淀置于平皿中,37℃干燥12 h,得粗多糖提取物。計(jì)算β-葡聚糖得率,重復(fù)3次。
1.2.4.2NaOH濃度對(duì)β-葡聚糖提取的影響分別稱取5份酵母細(xì)胞壁各2.5 g,去除甘露聚糖后,以1∶40(g/mL)的料液比分別加入2%、3%、4%、5%、6%的NaOH溶液,置于80℃水浴鍋中處理2.5 h,其余步驟同1.2.4.1。計(jì)算β-葡聚糖得率,重復(fù)3次。
1.2.4.3浸提溫度對(duì)β-葡聚糖提取的影響分別稱取5份酵母細(xì)胞壁各2.5 g,去除甘露聚糖后,以1∶40(g/mL)的料液比加入4%的NaOH溶液,分別置于60、70、80、90、100℃水浴鍋中處理2.5 h,其余步驟同1.2.4.1。計(jì)算β-葡聚糖得率,重復(fù)3次。
1.2.4.4浸提時(shí)間對(duì)β-葡聚糖提取的影響分別稱取5份酵母細(xì)胞壁各2.5 g,去除甘露聚糖后,以1∶40(g/mL)的料液比加入4%的NaOH溶液,置于80℃水浴鍋中分別處理1.5、2、2.5、3、3.5 h,其余步驟同1.2.4.1。計(jì)算β-葡聚糖得率,重復(fù)3次。
1.2.5正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,確定葡萄酒泥酵母中提取β-葡聚糖的正交實(shí)驗(yàn)因素和水平,采用L9(34)正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì),因素水平如表1所示。對(duì)所選最優(yōu)組合實(shí)驗(yàn)條件提取β-葡聚糖進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),確定堿法提取β-葡聚糖的最優(yōu)工藝。
表1 L9(34)正交實(shí)驗(yàn)因素水平表Table 1 Factors and levels in L9(34)orthogonal test
1.3統(tǒng)計(jì)分析
采用SPSS 18.0軟件進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn)并對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行方差分析。
2.1標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備
通過(guò)蒽酮-硫酸法,以β-葡聚糖質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),吸光度值為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖1)。線性回歸方程為:y=0.0072x+0.0019(R2=0.9993),符合測(cè)定要求。
圖1 葡萄糖含量標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 The standard curve of various concentration of the glucose
2.2單因素結(jié)果與分析
2.2.1料液比對(duì)β-葡聚糖提取的影響由圖2可知,隨著料液比的增加,β-葡聚糖得率逐漸增高,當(dāng)料液比為1∶40(g/mL)時(shí),β-葡聚糖得率最大,為17.85%。所以選擇1∶40(g/mL)料液比為提取β-葡聚糖的較佳料液比。當(dāng)料液比小于或大于1∶40(g/mL)時(shí),都會(huì)使β-葡聚糖提取率下降。出現(xiàn)這一結(jié)果的原因是起始原料濃度過(guò)高不利于酵母細(xì)胞壁分散,與提取液接觸不充分影響β-葡聚糖的浸出,造成提取率較低;當(dāng)料液比大于1∶40(g/mL)時(shí),過(guò)量的NaOH會(huì)破壞β-葡聚糖結(jié)構(gòu),導(dǎo)致得率下降[3]。
圖2 料液比對(duì)β-葡聚糖提取的影響Fig.2 Effect of solid-liquid ratio on the extraction rate of β-glucan
2.2.2NaOH濃度對(duì)β-葡聚糖提取的影響由圖3可知,NaOH濃度不同時(shí),β-葡聚糖得率不同。當(dāng)NaOH濃度為4%時(shí),β-葡聚糖得率最大,為17.73%,所以選擇4%NaOH濃度為提取β-葡聚糖的較佳NaOH濃度。當(dāng)NaOH濃度小于4%時(shí),隨著堿濃度的增加,β-葡聚糖提取率增加,這是由于β-葡聚糖本身具有一定堿溶性,堿濃度的增加有利于其從細(xì)胞壁中溶出[18];當(dāng)NaOH大于4%時(shí),得率反而降低,這是由于堿濃度過(guò)高,破壞β-葡聚糖的結(jié)構(gòu),導(dǎo)致β-葡聚糖損失。
圖3 NaOH濃度對(duì)β-葡聚糖提取的影響Fig.3 Effect of NaOH concentration on the extraction rate of β-glucan
2.2.3浸提溫度對(duì)β-葡聚糖提取的影響由圖4可知,浸提溫度為80℃時(shí),β-葡聚糖得率最大,為17.68%,所以選擇80℃為提取β-葡聚糖的較佳溫度。當(dāng)溫度為60、70℃時(shí),β-葡聚糖提取率比80℃時(shí)小,可能是由于堿溶性物質(zhì)在較低溫度下未能充分溶解,致使β-葡聚糖得率較低;當(dāng)提取溫度為90、100℃時(shí)β-葡聚糖得率反而隨溫度的升高降低,可能是由于在高溫作用下,部分β-葡聚糖降解為低聚糖,以至β-葡聚糖得率下降。
圖4 浸提溫度對(duì)β-葡聚糖提取的影響Fig.4 Effect of temperature on the extraction rate of β-glucan
圖5 浸提時(shí)間對(duì)β-葡聚糖提取的影響Fig.5 Effect of time on the extraction rate of β-glucan
2.2.4浸提時(shí)間對(duì)β-葡聚糖提取的影響由圖5可知,不同浸提時(shí)間下,β-葡聚糖得率也有所差異。當(dāng)浸提時(shí)間為2 h時(shí),β-葡聚糖得率最大,為18.10%,所以選擇2 h為提取β-葡聚糖的較佳時(shí)間。當(dāng)浸提時(shí)間小于2 h時(shí),堿溶性物質(zhì)不能完全溶于堿液中,反應(yīng)不充分,致使β-葡聚糖得率較??;時(shí)間過(guò)長(zhǎng)時(shí),會(huì)使β-葡聚糖降解,雜質(zhì)相應(yīng)的也被提取出來(lái)導(dǎo)致β-葡聚糖得率減小[19]。
2.3正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析
根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,以β-葡聚糖得率為指標(biāo),按L9(34)正交表進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn),結(jié)果見表2。由表2實(shí)驗(yàn)結(jié)果可以得出,影響堿法提取葡萄酒泥酵母β-葡聚糖因素的主次順序?yàn)椋篘aOH濃度>浸提時(shí)間>料液比>浸提溫度。提取葡萄酒泥酵母β-葡聚糖的最優(yōu)組合是A2B1C2D1,即料液比1∶40(g/mL),NaOH濃度3%,浸提溫度80℃,浸提時(shí)間1.5 h。由表3方差分析可知,NaOH濃度、浸提時(shí)間對(duì)β-葡聚糖得率影響顯著(p<0.05)。
表2 L9(34)正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 2 Results of L9(34)orthogonal experiments
表3 正交實(shí)驗(yàn)方差分析表Table 3 Analysis results of variance
2.4驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)結(jié)果
因正交實(shí)驗(yàn)所得最優(yōu)組合在L9(34)正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)中未出現(xiàn),需要對(duì)所得最優(yōu)組合進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)。在料液比1∶40(g/mL),NaOH濃度3%,提取溫度80℃,提取時(shí)間1.5 h條件下提取β-葡聚糖,重復(fù)3次取平均值,測(cè)得β-葡聚糖得率為19.38%。該得率高于正交實(shí)驗(yàn)中各組合得率。因此確定該組合為葡萄酒泥酵母β-葡聚糖提取的最佳工藝參數(shù)。
利用誘導(dǎo)自溶后的葡萄酒泥酵母細(xì)胞壁提取β-葡聚糖,研究了堿法提取β-葡聚糖的最佳關(guān)鍵工藝參數(shù)。在單因素實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)上利用L9(34)正交實(shí)驗(yàn)對(duì)葡萄酒泥酵母β-葡聚糖提取最佳工藝條件進(jìn)行了優(yōu)化。確定的最佳工藝參數(shù)為料液比為1∶40(g/mL),NaOH濃度為3%,提取溫度為80℃,提取時(shí)間為1.5 h,在此條件下所得β-葡聚糖的平均得率達(dá)到19.38%。與龔炎杰等[4]利用堿法提取酵母細(xì)胞壁β-葡聚糖所得得率10%相比,提高了大約2倍;與黃丹等[20]使用質(zhì)量濃度6%的NaOH,β-葡聚糖得率8.73%相比,堿用量降低了3%,提取率提高了2.2倍。由此可見,該工藝條件的建立可為利用葡萄酒泥酵母開發(fā)β-葡聚糖奠定基礎(chǔ)。
[1]朱益波,翟麗君,朱明,等.啤酒廢酵母中β-D-葡聚糖非降解提取工藝[J].食品科學(xué),2011,32(20):121-125.
[2]BORHANI C,F(xiàn)ONTEYN F,JAMIN G,et al.Enzymatic process for the fractionation of baker’s yeast cell wall(Saccharomyces cerevisiae)[J].Food Chemistry,2014,163:108-113.
[3]張朝,任文彬,劉穎.從破壁酵母中提取β-1,3-D-葡聚糖的研究[J].農(nóng)產(chǎn)品加工,2010(11):60-62.
[4]龔炎杰,郭祀遠(yuǎn),魏東,等.從釀酒酵母細(xì)胞提取β-1,3-D-葡聚糖的研究[J].中國(guó)食品添加劑,2006,1(2):57-59.
[5]LIMBERGER-BAYER V M,DE FRANCISCO A,CHAN A,et al.Barley β-glucans extraction and partial characterization[J]. Food chemistry,2014,154:84-89.
[6]黃國(guó)宏.酵母β-1,3-D-葡聚糖提取酶解工藝的研究[J].食品工業(yè)科技,2007,28(5):200-203.
[7]張民,白鑫,邊東哲,等.燕麥多糖的提取工藝及分子量分布研究[J].食品工業(yè)科技,2010,31(2):218-219.
[8]杜娜,楊學(xué)山,韓舜愈,等.葡萄酒泥酵母超氧化物歧化酶分離提取工藝條件優(yōu)化[J].食品工業(yè)科技,2013,34(15):242-245.
[9]李瑩,蘇婷婷,王戰(zhàn)勇.葡萄加工副產(chǎn)品的綜合利用研究[J].食品科學(xué),2012,28(4):106-108.
[10]王淮,唐治玉,熊善柏.廢啤酒酵母中β-1,3-D-葡聚糖的提取及成分分析[J].華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2006,24(6):626-629.
[11]王靜,戴軍,陳尚衛(wèi),等.提取酵母細(xì)胞壁中β-D-葡聚糖的新方法[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2011,37(1):189-193.
[12]FREIMUND S,SAUTER M,KAPPELI O,et al.A new nondegrading isolation process for 1,3-β-D-glucan of high purity from baker’s yeast Saccharomyces cerevisiae[J].Carbohydrate Polymers,2003,54(2):159-171.
[13]LIU X Y,WANG Q,CUI S W,et al.A new isolation method of β-D-glucans from spent yeast Saccharomyces cerevisiae[J]. Food Hydrocolloids,2008,22(2):239-247.
[14]馮文娟,徐澤平,周傳兵,等.酵母β-1,3-D-葡聚糖提取及結(jié)構(gòu)鑒定[J].食品與機(jī)械,2013,29(5):151-153.
[15]李楊,包清彬,孔凌,等.酵母抽提物自溶工藝優(yōu)化[J].食[16]VALAQUES JUNIOR G L,DE LIMA F O,BOFFO E F,et al. Extraction optimization and antinociceptive activity of(1,3)-β-D-glucanfromRhodotorulamucilaginosa[J].Carbohydrate polymers,2014,105:293-299.
品工業(yè),2011(5):62-65.
[17]祁業(yè)明.酵母葡聚糖的研制[D].天津:天津科技大學(xué),2008.
[18]董興葉,孫楚,劉瑤,等.超聲波法對(duì)燕麥β-葡聚糖提取及性質(zhì)的影響[J].食品工業(yè)科技,2014,35(16):294-297.
[19]馬國(guó)剛,王建中.超聲波輔助提取青稞β-葡聚糖的工藝條件優(yōu)化[J].食品科技,2009(11):168-174.
[20]黃丹,劉達(dá)玉.釀酒酵母中活性多糖的提取工藝研究[J].食品工業(yè),2004(4):27-29.
Optimization of extracting processing condition of β-Glucan from wine yeast
YANG Ting1,2,ZHU Xia1,2,LI Ying1,2,HAN Shun-yu1,2,YANG Xue-shan2,3,*
(1.College of Food Science and Engineering,Gansu Agricultural University,Lanzhou 730070,China;2.Gansu Key Lab of Viticulture and Enology,Lanzhou 730070,China;3.College of Life Science&Technology,Gansu Agricultural University,Lanzhou 730070,China)
The induced autolytic wine yeast cell wall was used as raw materials to extract β-glucan.On the basis of single factor test including solid-liquid ratio,alkali concentration,extraction time and extraction temperature,the orthogonal test was applied to determine the optimal extraction conditions.The results showed that the optimum conditions of β-glucan were as following:solid-liquid ratio 1∶40(g/mL),the concentration of NaOH 3%,extraction temperature 80℃and extraction time 1.5 h.Under these conditions,the yield of β-glucan was 19.38%.The process was simple and inexpensive and had higher extraction rate.
wine yeast;β-glucan;alkaline process;extraction
TS209
B
1002-0306(2015)18-0286-05
10.13386/j.issn1002-0306.2015.18.049
2015-01-22
楊婷(1991-),女,碩士研究生,研究方向:葡萄及葡萄酒研究,E-mail:lalating2009@163.com。
楊學(xué)山(1977-),男,副教授,研究方向:生物化學(xué)與生物產(chǎn)品研發(fā),E-mail:yangxs@gsau.edu.cn。
甘肅省農(nóng)業(yè)生物技術(shù)研究與應(yīng)用開發(fā)項(xiàng)目(GNSW-2013-21)。