崔建東,梁龍昊,韓 叢,劉容麟(河北省發(fā)酵工程技術(shù)研究中心,生物科學(xué)與工程學(xué)院,河北科技大學(xué),河北石家莊050000)
苯丙氨酸解氨酶仿生固定化及其穩(wěn)定性研究
崔建東,梁龍昊,韓叢,劉容麟
(河北省發(fā)酵工程技術(shù)研究中心,生物科學(xué)與工程學(xué)院,河北科技大學(xué),河北石家莊050000)
利用仿生硅化技術(shù)包埋固定化苯丙氨酸解氨酶(PAL),研究固定化條件對(duì)PAL固定化的影響及固定化PAL的穩(wěn)定性。優(yōu)化的固定化酶制備條件:0.06 mL濃度為6 mg/mL誘導(dǎo)劑聚乙烯亞胺(PEI),25 mmol/L磷酸鹽(pH7.0)作為固定化反應(yīng)介質(zhì)體系,2 mL濃度為1 mol/L正硅酸甲酯(TMOS)水解液和1 mL(2 U/mL)酶液添加量,所得固定化酶的酶活最大回收率是70%。與游離酶相比,固定化PAL的溫度穩(wěn)定性、pH和儲(chǔ)存穩(wěn)定性,以及變性劑耐受性都有較大提高,重復(fù)使用5次,固定化PAL仍能保持初始酶活的40%。
苯丙氨酸解氨酶,仿生硅化,氧化硅,固定化酶,聚乙烯亞胺
苯丙氨酸解氨酶(phenylalanine ammonia-lyase,PAL)是連接初級(jí)代謝和苯丙烷類代謝、催化苯丙烷類代謝第一步反應(yīng)的酶,是苯丙烷類代謝的關(guān)鍵酶和限速酶[1]。存在于各種植物和少數(shù)微生物中,PAL可催化L-苯丙氨酸脫氨生成反式肉桂酸,具有廣泛的醫(yī)藥和工業(yè)應(yīng)用價(jià)值。在醫(yī)藥方面主要被用來治療某些腫瘤,還可以診斷和治療苯丙酮尿癥[2];在生物化工領(lǐng)域被用來酶法生產(chǎn)L-苯丙氨酸。但在應(yīng)用過程中,該酶表現(xiàn)出較低的酶活和穩(wěn)定性,限制了其廣泛應(yīng)用。
仿生礦化技術(shù)是近年發(fā)展起來的一種新的固定化酶方法。該技術(shù)是人們通過模擬自然界某些生物體能夠在常溫下精確控制體內(nèi)礦物的形成而發(fā)展起來的一種技術(shù)。與傳統(tǒng)固定化酶方法相比,該技術(shù)避免了固定化過程中酸堿催化劑、高速攪拌以及高溫等對(duì)酶分子天然活性構(gòu)象的破壞,有利于酶活保留。且反應(yīng)條件溫和、快速,目前已經(jīng)被成功應(yīng)用在氨基酸氧化酶[3]、脂肪酶[4]、碳酸酐酶[5]等多種酶的固定化中。但關(guān)于仿生硅化過程用于PAL固定化方面尚未見報(bào)道。
本研究以聚乙烯亞胺為誘導(dǎo)劑,通過模擬仿生硅化過程,將仿生硅化用于PAL的固定化,優(yōu)化了固定化制備條件,并考察了固定化PAL的催化穩(wěn)定性。
1.1材料與儀器
粘紅酵母(Rhodotorula gluinis)中國工業(yè)微生物菌種保藏管理中心(CICC32913);聚乙烯亞胺(PEI) 阿拉丁試劑(上海)有限公司;正硅酸甲酯(TMOS)阿拉丁試劑(上海)有限公司;反式肉桂酸阿拉丁試劑(上海)有限公司;其他試劑均為市售分析純。
S-4800-Ⅰ型場(chǎng)發(fā)射掃描電子顯微鏡日本HITACHI;752型紫外分光光度計(jì)上海光譜儀器有限公司;TGL-16C型離心機(jī)上海安亭科學(xué)儀器廠;HC-3018型高速離心機(jī)安徽中科中佳科學(xué)儀器有限公司;85-1B磁力攪拌器鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;FD-27真空冷凍干燥機(jī)北京德天佑科技發(fā)展有限公司。
1.2實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1PAL的提取將粘紅酵母接于培養(yǎng)基(葡萄糖5 g/L,蛋白胨10 g/L,NaCl 5 g/L,KH2PO40.5 g/L,(NH4)2HPO41 g/L,L-苯丙氨酸0.5 g/L,pH5.5)中,在28℃,150 r/min條件下發(fā)酵培養(yǎng)21 h,培養(yǎng)后的粘紅酵母利用微珠渦流法進(jìn)行細(xì)胞破碎提取PAL粗酶液[6]。
1.2.2仿生硅化固定化苯丙氨酸解氨酶取0.152 g TMOS與1 mmol/L鹽酸溶液混合,振蕩10 min,制得濃度為1 mol/L TMOS水解液。取一定量的PAL酶(溶解在25 mmol/L磷酸鹽,pH7.0)與一定量的PEI充分混勻后,加入濃度為1 mol/L TMOS水解液,混合5 min后,混合物經(jīng)10000×g離心5 min,得到的沉淀物用去離子水洗滌3次,即得固定化PAL。
1.2.3單因素實(shí)驗(yàn)優(yōu)化固定化PAL制備條件在粗酶液量1 mg/mL、PEI濃度是6 mg/mL條件下,考察TMOS水解液濃度(0.5、0.8、1、1.2、1.5 mmol/L)對(duì)固定化PAL酶活回收率的影響;在粗酶液量1 mg/mL、TMOS濃度是1 mmol/L條件下,考察不同PEI濃度(2、4、6、8、10 mg/mL)對(duì)固定化PAL酶活回收率的影響;在TMOS濃度是1 mmol/L、PEI濃度是6 mg/mL條件下,考察粗酶液量(0.2、0.5、0.8、1、1.2 mg/mL)對(duì)固定化PAL酶活回收率的影響;在粗酶液量1 mg/mL、TMOS濃度是1 mmol/L、PEI濃度是6 mg/mL條件下,考察不同緩沖液體系(25 mmol/L Tris-HCl,pH7.0,25 mmol/L磷酸鹽,pH7.0或去離子水)對(duì)固定化PAL酶活回收率的影響。
1.2.4固定化PAL的形態(tài)觀察固定化PAL樣品經(jīng)真空冷凍干燥后,在真空條件下噴鉑金后利用電子掃描顯微鏡(電子發(fā)射電壓60~100 kV)檢測(cè)。
1.2.5酶活測(cè)定方法以紫外分光光度法測(cè)定PAL的酶活[7]。酶促反應(yīng)液包括0.1 g的酶樣品,2.5 mL 50 mmol/L L-苯丙氨酸和2 mL 25 mmol/L Tris-HCl,pH8.8,在30℃振蕩保溫10 min,然后加入0.2 mL 6 mol/L鹽酸終止反應(yīng)。10000×g離心5 min,取上清在278 nm下測(cè)吸光值。根據(jù)反式肉桂酸標(biāo)準(zhǔn)曲線方程:Y= 14.083X-0.5621,R2=0.9999,計(jì)算酶活。一個(gè)酶活力單位定義為每分鐘催化L-苯丙氨酸生成1 μmol反式肉桂酸的酶量。
1.2.6酶活回收率
1.2.7固定化PAL的穩(wěn)定性考察對(duì)于溫度穩(wěn)定性,將游離酶和固定化PAL分別置于60℃下處理15、30、45、60 min后,分別檢測(cè)酶活。對(duì)于pH穩(wěn)定性,將游離酶和固定化PAL分別置于pH為3、5、7、8和11的緩沖液中處理30 min后,檢測(cè)酶活。對(duì)于變性劑穩(wěn)定性,將游離酶和固定化PAL分別置于2%SDS、20%乙醇和6 mol/L尿素中處理15 min,檢測(cè)酶活。對(duì)于儲(chǔ)存穩(wěn)定性,將游離酶和固定化PAL分別保存在25 mmol/L磷酸鹽(pH7.0)中,于25℃放置1、5、15、25 d,并在相對(duì)應(yīng)的儲(chǔ)存時(shí)間檢測(cè)酶活。
1.2.8固定化PAL的重復(fù)使用穩(wěn)定性考察轉(zhuǎn)化液的配制[8]:740 mg反式肉桂酸溶解到45 mL氨水(0.28 mol/L)中,用硫酸調(diào)pH為10,去離子水定容到100 mL。
重復(fù)使用穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn):將固定化PAL與轉(zhuǎn)化液按照1∶4(v/v)在30℃條件下進(jìn)行第一輪轉(zhuǎn)化反應(yīng),轉(zhuǎn)化1 h后,10000×g離心5 min分離出固定化酶,用Tris-HCl(pH8.8)緩沖液洗滌后,在固定化酶中加入新的轉(zhuǎn)化液進(jìn)行第二輪轉(zhuǎn)化,依此分批轉(zhuǎn)化,每次轉(zhuǎn)化后分別檢測(cè)固定化酶剩余的酶活。直到檢測(cè)不到酶活為止。
1.2.9統(tǒng)計(jì)分析所有實(shí)驗(yàn)重復(fù)進(jìn)行3次,利用SAS軟件(v8.0)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。
2.1固定化PAL制備條件優(yōu)化
2.1.1TMOS水解液濃度對(duì)固定化酶的影響從圖1可以得出,TMOS水解液濃度對(duì)固定化PAL酶活有顯著影響(p<0.05),隨著TMOS水解液濃度的增加,固定化酶的酶活回收率增加;在TMOS水解液濃度為1 mol/L時(shí),酶活回收率最高;但隨著TMOS水解液濃度的進(jìn)一步增加,酶活回收率開始下降。這可能是由于反應(yīng)體系中PEI的濃度一定,PEI只能催化聚合一定量的TMOS形成氧化硅,對(duì)游離酶進(jìn)行包埋,但當(dāng)TMOS濃度過大時(shí),剩余的TMOS不能被PEI催化聚合形成氧化硅,導(dǎo)致對(duì)PAL的包埋率下降,使酶活回收率降低[4]。
圖1 TMOS水解液濃度對(duì)酶活的影響Fig.1 Effect of TMOS concentration on activity
2.1.2PEI濃度對(duì)固定化酶的影響由圖2可以看出,隨著PEI濃度增加,固定化酶的酶活也在增加,當(dāng)PEI濃度達(dá)到6 mg/mL時(shí),酶活回收率達(dá)到最高,而隨著PEI濃度的繼續(xù)增加,酶活開始下降。這可能是由于TMOS硅前體的量一定,PEI只能沉淀一定量的硅膠對(duì)酶進(jìn)行包埋,而過剩的PEI對(duì)酶形成靜電屏障,使酶無法與硅前驅(qū)體相互吸引,導(dǎo)致包埋效率降低[4],從而使酶活回收率下降。
圖2 PEI濃度對(duì)酶活的影響Fig.2 Effect of PEI concentration on on activity
2.1.3酶量對(duì)固定化酶的影響從圖3可知,當(dāng)PAL酶量小于1 mg/mL時(shí),隨著酶濃度的增加,固定化酶的酶活回收率增加,當(dāng)酶濃度達(dá)到1 mg/mL時(shí),酶活回收率達(dá)到最高,達(dá)到70%以上。但當(dāng)酶濃度高于1 mg/mL時(shí),固定化酶的酶活回收率并沒有繼續(xù)顯著增加(p>0.05),反而有所降低。這是由于當(dāng)酶濃度過高時(shí),多余的酶分子不能被包埋在硅膠中,且酶濃度過高也會(huì)使納米級(jí)氧化硅載體包埋過量的酶分子,使被包埋的酶分子無法正常伸展形成正確的空間構(gòu)象[9],導(dǎo)致固定化酶酶活有所下降。
圖3 酶量對(duì)固定化酶酶活的影響Fig.3 Effect of PAL concentration on activity
2.1.4不同緩沖液體系對(duì)固定化酶的影響研究表明,仿生硅化過程中,反應(yīng)介質(zhì)對(duì)誘導(dǎo)形成的仿生氧化硅的形態(tài)有較大影響[10],而氧化硅載體形態(tài)又會(huì)直接影響固定化酶的最終酶活。結(jié)果見圖4,當(dāng)用磷酸鹽作為反應(yīng)介質(zhì)時(shí),固定化酶的酶活回收率最高,而水作為反應(yīng)介質(zhì)時(shí)固定化酶的酶活回收率最低,可能是由于緩沖液中的陰離子充當(dāng)了離子交聯(lián)劑,促進(jìn)帶正電的PEI與酶分子通過分子間或分子內(nèi)靜電作用自組裝形成聚合體,進(jìn)而為硅前體的縮聚提供模板[10],使酶分子更多的包埋在硅膠中。
圖4 不同緩沖液對(duì)固定化酶酶活的影響Fig.4 Effect of buffer on activity
2.2固定化PAL掃描電鏡形態(tài)觀察
圖5是掃描電鏡觀察的固定化PAL的圖片。從圖5中可以看出,在同樣的標(biāo)尺下(500 nm),當(dāng)沒有包埋酶分子時(shí),PEI誘導(dǎo)TMOS硅前體所形成的氧化硅顆粒非常小,大致呈微球型,顆粒與顆粒之間團(tuán)聚的非常致密(圖5A)。而包埋有PAL的固定化酶氧化硅顆粒明顯增加,呈現(xiàn)出較大的球形顆粒,且顆粒之間出現(xiàn)較多空隙(圖5B)。說明在固定化過程中,酶的加入有助于阻止硅前體縮合形成的顆粒進(jìn)一步相互連接團(tuán)聚。這種較疏松的結(jié)構(gòu)有利于酶促反應(yīng)過程中底物和產(chǎn)物的傳遞。
圖5 固定化酶的電鏡圖片(105×)Fig.5 SEM images(105×)
2.3固定化PAL催化穩(wěn)定性
2.3.1固定化PAL溫度穩(wěn)定性圖6是固定化PAL的溫度穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)結(jié)果。圖6表明,與游離酶相比,固定化酶具有更高的耐受高溫的能力。在60℃下處理30 min時(shí),游離酶損失了初始酶活的50%以上,而固定化酶僅損失了20%左右的酶活;當(dāng)處理1 h后,游離酶幾乎喪失了所有酶活,而固定化酶卻還能保留40%以上的酶活。說明當(dāng)酶分子被包埋在仿生氧化硅中后,酶分子的天然空間構(gòu)象得以保持[11],特別是由于有氧化硅的外層保護(hù),溫度的傳遞速度減緩,使高的溫度不能直接作用于酶分子,從而降低了酶的失活率。
圖6 固定化PAL的溫度穩(wěn)定性Fig.6 Thermostability of encapsulated PAL
2.3.2固定化酶pH穩(wěn)定性圖7是固定化酶的pH穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)結(jié)果。圖7表明,固定化酶耐受極端pH的能力明顯高于游離酶;游離酶在pH3~8時(shí)均有一定的酶活保留率,但固定化酶的酶活保留率要高于游離酶;當(dāng)趨向于強(qiáng)堿條件時(shí),游離酶酶活損失較大,而固定化酶卻能保留較高的酶活;在pH11的條件下處理30 min,游離酶僅能保留47%的酶活,而固定化酶基本不失活。這可能是由于PAL被包埋在氧化硅載體中后,防止了極端pH條件下大量OH-和H+對(duì)酶分子的攻擊,使酶活性中心的結(jié)構(gòu)保持下來,保護(hù)酶不失活[12]。
圖7 固定化PAL的pH穩(wěn)定性Fig.7 pH-stability of encapsulated PAL
2.3.3固定化酶變性劑穩(wěn)定性圖8是固定化酶對(duì)變性劑的穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)結(jié)果。圖8表明,在變性劑作用下,游離酶和固定化酶都有不同程度的失活,但固定化酶表現(xiàn)出對(duì)變性劑更高的耐受性。特別是當(dāng)用2% SDS處理30 min后,游離酶基本失活,只能殘留12%的酶活,但固定化酶還能保留47%的酶活。固定化酶對(duì)變性劑的耐受可能是由于游離的酶分子被包埋在仿生氧化硅載體中,氧化硅載體阻礙了變性劑與酶分子的直接接觸,使酶分子的活性結(jié)構(gòu)得以保持,導(dǎo)致酶活被保留下來[4,13]。
圖8 固定化PAL的變性劑穩(wěn)定性Fig.8 Encapsulated PAL against denaturants
2.3.4固定化酶儲(chǔ)存穩(wěn)定性固定化酶的儲(chǔ)存穩(wěn)定性是評(píng)價(jià)固定化酶應(yīng)用價(jià)值的重要指標(biāo)[13]。圖9是固定化PAL儲(chǔ)存穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)結(jié)果,在儲(chǔ)存過程中,游離酶和固定化酶酶活都有所下降,但固定化酶儲(chǔ)存穩(wěn)定性顯著優(yōu)于游離酶(p<0.05),在儲(chǔ)存到第25 d時(shí),游離酶已經(jīng)完全失活,但固定化酶還能保留24%的酶活。說明PAL經(jīng)過仿生硅化固定化后儲(chǔ)存穩(wěn)定性有顯著改善,這個(gè)結(jié)果和張羽飛[14]的研究結(jié)果一致。
圖9 固定化PAL的儲(chǔ)存穩(wěn)定性Fig.9 Storage stability of encapsulated PAL
2.4固定化PAL重復(fù)使用性
圖10是固定化酶的重復(fù)使用穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)結(jié)果。圖10表明,經(jīng)過仿生硅化包埋的PAL具有一定的重復(fù)使用穩(wěn)定性,連續(xù)重復(fù)使用5次后固定化酶仍然能保留近40%的酶活。但是,使用到第7次后,固定化酶基本檢測(cè)不到酶活。這可能是由于仿生硅化包埋的PAL的顆粒是納米級(jí)的,顆粒較小,在反復(fù)離心回收過程中,部分顆粒太小的固定化酶難以回收,導(dǎo)致?lián)p失,同時(shí)高速離心產(chǎn)生的剪切力也會(huì)使固定化酶顆粒被打碎,使酶泄漏,導(dǎo)致酶活損失。
圖10 固定化酶重復(fù)使用穩(wěn)定性Fig.10 Recycling stability of encapsulated PAL
本研究首次將溫和的仿生硅化過程用于PAL酶的固定化,固定化的最佳條件是:0.06 mL濃度為6 mg/mL聚乙烯亞胺作為誘導(dǎo)劑,25 mmol/L磷酸鹽(pH7.0)作為固定化的反應(yīng)介質(zhì)體系,2 mL濃度為1 mol/L正硅酸甲酯水解液和酶液添加量1 mg/mL(2 U/mL),所得固定化酶的酶活最大回收率是70%。與游離酶相比,固定化酶表現(xiàn)出優(yōu)越的溫度、pH、變性劑和儲(chǔ)存穩(wěn)定性,此外,固定化酶還具有一定的重復(fù)使用穩(wěn)定性,在連續(xù)重復(fù)使用5批次后,固定化酶還能保持初始酶活的近40%。上述結(jié)果表明這種固參考文獻(xiàn)
定化酶方法在工業(yè)應(yīng)用中具有較好的實(shí)用前景。
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Immobilization of phenylalanine ammonia lyase by biomimetic silica and its stability
CUI Jian-dong,LIANG Long-hao,HAN Cong,LIU Rong-lin
(Research Center for Fermentation Engineering of Hebei,College of Bioscience and Bioengineering,Hebei University of Science and Technology,Shijiazhuang 050000,China)
In this study,phenylalanine ammonia lyase(PAL)was encapsulated by in polyallylamine-mediated biomimetic silica.The conditions for the preparation of encapsulated PAL were optimized.Moreover,stability of the encapsulated PAL was examined.The optimal activity recovery(70%)of PAL were achieved when 0.06 mL polyallylamine(PEI)of 6 mg/mL,2 mL tetramethoxysilane(TMOS)of 1 mol/L and 1 mL PAL(2 U/mL)in 25 mmol/L phosphate buffer(pH7.0)were used.Compared with free PAL,the encapsulated PAL showed better properties in pH,thermal and storage stabilities,as well as the tolerance abilities against denaturants.In additional,the encapsulated PAL still retained 40%of its initial activity after consecutive 5 cycles.
phenylalanine ammonia lyase;biomimetic silica;monox;Immobilization enzyme;polyethyleneimine
TS202.3
A
1002-0306(2015)18-0193-05
10.13386/j.issn1002-0306.2015.18.030
2015-01-20
崔建東(1974-),男,博士,教授,研究方向:生物催化與微生物資源開發(fā),E-mail:cjd007cn@163.com。
國家自然科學(xué)基金(21072041);河北省自然科學(xué)基金(B2014208054)。