SDS/正辛醇/異辛烷反膠束體系萃取葵花籽粕蛋白工藝研究

趙 萍，佐 玲，郭求實(shí)，王 雅

（蘭州理工大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院，甘肅蘭州730050）

SDS/正辛醇/異辛烷反膠束體系萃取葵花籽粕蛋白工藝研究

趙 萍，佐 玲，郭求實(shí)，王 雅*

（蘭州理工大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院，甘肅蘭州730050）

利用SDS（十二烷基磺酸鈉）/正辛醇/異辛烷反膠束體系對(duì)葵花籽粕蛋白進(jìn)行萃取，探討在超聲輔助萃取下，W0、緩沖液pH、緩沖液濃度、料液比（g/mL）、溫度、時(shí)間以及表面活性劑濃度等對(duì)蛋白質(zhì)前萃取率以及后萃取率的影響。結(jié)果表明：前萃取工藝的最佳條件SDS濃度為0.07g/mL，料液比為1∶25，鹽濃度為0.07mol/L，pH為6.5，W0=27，萃取時(shí)間為35min，溫度為40℃；后萃取最佳工藝條件為：鹽濃度為0.9mol/L、緩沖液pH為7.5、萃取時(shí)間為45min、萃取溫度為35℃，在此條件下，蛋白質(zhì)的前萃率為89.93%，后萃率為65.01%，蛋白質(zhì)提取率為58.46%。

反膠束，葵花蛋白，前萃取，后萃取

葵花籽粕，也稱(chēng)為葵花粕，是葵花籽經(jīng)預(yù)壓榨或直接浸出法榨取油脂后的一種副產(chǎn)品，含有豐富的優(yōu)質(zhì)蛋白（29%～43%），其中球蛋白占55%～60%，清蛋白占17%～23%，谷蛋白占11%～17%，醇溶谷蛋白占1%～4%，是植物蛋白的重要來(lái)源之一［1］?？ㄗ训鞍字邪被岬慕M成，除賴氨酸的含量較低外，其余必需氨基酸均達(dá)到或高于聯(lián)合國(guó)糧農(nóng)組織推薦的標(biāo)準(zhǔn)［2］。但目前這些高營(yíng)養(yǎng)價(jià)值的葵花籽粕利用率不高，通常主要用作牛的飼料以及其他家禽等的飼料，產(chǎn)品增值太低。反膠束是表面活性劑分散于連續(xù)有機(jī)相中而自發(fā)形成的納米尺度的聚集體，源于20世紀(jì)70年代的液液萃取技術(shù)。在反膠束溶液中，表面活性劑的非極性基團(tuán)在外，而極性基團(tuán)則排列在內(nèi)形成一個(gè)極性核，此極性核吸收水后形成“水池”，以W0表示其大?。?］。當(dāng)反膠束溶液與含有蛋白質(zhì)等組分的水溶液接觸后，蛋白質(zhì)及其他親水性物質(zhì)能夠進(jìn)入“水池”內(nèi)（稱(chēng)為“前萃”），而與其他不能進(jìn)入反膠束極性核的物質(zhì)分離開(kāi)來(lái)［4］。由于周?chē)畬有纬傻乃ず挽o電斥力的作用，保證了蛋白質(zhì)的天然構(gòu)象不被破壞。再將含有蛋白質(zhì)的反膠束溶液與反萃取緩沖溶液混合，蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移到緩沖溶液中，然后將反膠束分離，最終從緩沖液中得到蛋白質(zhì)（稱(chēng)為“后萃”）。反膠束萃取技術(shù)因其萃取率高，污染小，所用溶劑可以回收重復(fù)利用等優(yōu)點(diǎn)日益受到廣大學(xué)者的關(guān)注。目前，已有學(xué)者利用反膠束萃取技術(shù)進(jìn)行大豆蛋白［5］、玉米胚芽蛋白［6］、花生蛋白［7］、杏仁蛋白［8］等植物蛋白提取的研究，但多集中于前萃取過(guò)程，后萃取過(guò)程鮮有研究。

因此，本文利用SDS（十二烷基磺酸鈉）/正辛醇/異辛烷反膠束體系對(duì)葵花粕蛋白進(jìn)行萃取研究，討論了在超聲輔助萃取下，W0、緩沖液pH、鹽濃度、料液比、溫度、時(shí)間以及表面活性劑濃度等因素對(duì)前萃取率以及后萃取率的影響，實(shí)現(xiàn)了葵花粕中蛋白質(zhì)的萃取，并試圖找到其最佳提取工藝，從而為葵花粕的深加工提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

葵花粕 甘肅敬業(yè)科技有限公司提供；SDS（十二烷基磺酸鈉）、異辛烷、正辛醇、氯化鉀、磷酸二氫鉀、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、卡爾費(fèi)休試劑、硫酸銅（CuSO4·5H2O）、硼酸、氫氧化鈉、濃硫酸、甲基紅指示劑、溴甲酚綠指示劑、無(wú)水乙醇 均為分析純。

JY99-IIDN超聲波細(xì)胞破碎儀 寧波新芝生物科技股份有限公司；RE52-86A旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 上海亞榮生化儀器廠；CJJ78-1磁力攪拌器 上海梅香儀器有限公司；HH-4數(shù)顯恒溫水浴鍋 國(guó)華電器有限公司；TC16-WS高速離心機(jī) 長(zhǎng)沙相依離心機(jī)有限公司；PHB-5型便攜式酸度計(jì) 中國(guó)杭州雷磁分析儀器廠；KLS-411型微量水份分析儀 上海精密科學(xué)儀器有限公司；FA2004電子天平 上海良平儀器儀表有限公司；101-2A電熱鼓風(fēng)干燥箱 北京科偉永興儀器有限公司；CHA-S/SH 2-82氣浴恒溫振蕩培養(yǎng)器 常州國(guó)華電器有限公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 原料中蛋白質(zhì)和水分含量測(cè)定 水分測(cè)定：GB 5009.6-2010；粗蛋白測(cè)定：GB 5009.5-2010。

1.2.2 反膠束溶液的配制 稱(chēng)取一定量的表面活性劑SDS，置于250m L燒杯中，同時(shí)加入有機(jī)溶劑正辛醇/異辛烷（體積比為1∶4），并加入含有一定濃度KCl的KH2PO4-Na2HPO4（可配制成不同pH）磷酸鹽緩沖溶液，磁力攪拌至SDS完全溶解，室溫靜置至溶液澄清透明即為反膠束溶液［9］。

1.2.3 反膠束溶液中含水量測(cè)定 采用卡爾費(fèi)休法測(cè)定含水量（W0），W0=反膠束溶液中水的摩爾濃度/反膠束溶液中表面活性劑的摩爾濃度。

1.2.4 蛋白質(zhì)前萃實(shí)驗(yàn) 分別稱(chēng)取不同質(zhì)量SDS（4、6、7、8、9、10g），置于250m L燒杯中，同時(shí)加入有機(jī)溶劑正辛醇/異辛烷（體積比為1∶4）100m L，并加入不同濃度（0.04、0.05、0.06、0.08、0.10、0.12mol/L）不同pH的含KCl的KH2PO4-Na2HPO4緩沖溶液（pH=6、6.5、7、7.5、8、8.5）以控制含水量W0（22、23、24、25、26、27），增溶水后取上述配制的SDS/正辛醇/異辛烷反膠束溶液按不同料液比（1∶5、1∶10、1∶15、1∶20、1∶25、1∶30）加入葵花粕（精確到0.0001g），超聲（300W）輔助萃取10m in后轉(zhuǎn)移至恒溫水浴鍋中以不同溫度（25、30、35、40、45、50℃）繼續(xù)萃取不同時(shí)間（20、30、40、50、60、70m in），然后以4000r/m in離心分離10m in，萃取體系分為兩層，凱氏定氮法測(cè)定上層溶液萃取的蛋白含量，計(jì)算蛋白質(zhì)的前萃取率［10］。

蛋白質(zhì)前萃率（R，%）=（上層溶液蛋白質(zhì)的含量/原料中蛋白質(zhì)含量）×100

每次單因素實(shí)驗(yàn)時(shí)依次僅改變一個(gè)變量，依次改變反膠團(tuán)含水量W0、表面活性劑濃度、料液比、溫度、緩沖液pH、鹽濃度、時(shí)間進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn)。并根據(jù)單因素結(jié)果選取4因素3水平進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn)，因素水平表如表1所示。

表1 前萃取因素水平表Table 1 Factors and levels of forward extraction orthogonal test

1.2.5 蛋白質(zhì)后萃實(shí)驗(yàn) 將20m L前萃液加入等體積的不同濃度（0.6、0.8、1.0、1.2、1.4mol/L）的KCl的緩沖溶液（NaH2PO4-Na2HPO4配制）（pH=6.5、7、7.5、8、8.5、9.0），在恒溫振蕩培養(yǎng)器中以不同溫度（25、30、35、40、45、50℃）相同速度振蕩不同時(shí)間（30、40、50、60、70、80min）。然后將上述溶液置于離心機(jī)中，在4000r/m in下離心10m in，分液漏斗分層后取下層水相凱氏定氮法測(cè)定蛋白質(zhì)含量［11］。

蛋白質(zhì)后萃率（R，%）=（水相中蛋白質(zhì)含量/反膠束溶液中蛋白質(zhì)含量）×100

蛋白質(zhì)總提取率（%）=（前萃率×后萃率）×100

每次單因素實(shí)驗(yàn)時(shí)依次僅改變一個(gè)變量，實(shí)驗(yàn)時(shí)依次改變鹽濃度、緩沖液pH、時(shí)間、溫度進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn)。并根據(jù)單因素結(jié)果選取4因素3水平進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn)，因素水平表如表2所示。

表2 后萃取因素水平表Table 2 Factors and levels of backward extraction orthogonal test

1.3 數(shù)據(jù)分析

數(shù)據(jù)分析采用SPSS 17.0軟件進(jìn)行分析。

2 結(jié)果與討論

經(jīng)測(cè)定，葵花粕原料中蛋白質(zhì)和水分含量分別為42.67%、3.84%。

2.1 葵花蛋白前萃實(shí)驗(yàn)

2.1.1 W0對(duì)蛋白質(zhì)前萃率的影響 由圖1可以看出，隨著W0的增大，蛋白質(zhì)的前萃率呈現(xiàn)先增大后減小的趨勢(shì)，當(dāng)W0達(dá)到26時(shí)，前萃率達(dá)到最大值。W0的增大意味著反膠團(tuán)直徑的增大，當(dāng)反膠團(tuán)直徑與蛋白質(zhì)大小近似時(shí)，蛋白質(zhì)才可以增溶到反膠團(tuán)中，實(shí)現(xiàn)蛋白質(zhì)的萃?。?2］。因此，本實(shí)驗(yàn)選取W0=26進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

圖1 W0對(duì)前萃率的影響Fig.1 The effect ofW0on forward extraction rate

2.1.2 SDS濃度對(duì)蛋白質(zhì)前萃率的影響 如圖2所示，隨著SDS濃度的增加，蛋白質(zhì)的萃取率也隨之增加，當(dāng)達(dá)到0.08g/m L時(shí)達(dá)到最大值。這是因?yàn)樵诜菢O性溶劑中單位體積內(nèi)表面活性劑所形成的反膠團(tuán)數(shù)量越多，就可以萃取更多的蛋白質(zhì)，并且SDS濃度的增加會(huì)使整個(gè)體系極性增加，致使反膠團(tuán)與蛋白質(zhì)分子間作用力增強(qiáng)，利于蛋白質(zhì)的吸附。由圖2可以看出，當(dāng)SDS濃度為0.08g/m L時(shí)，蛋白質(zhì)萃取率達(dá)到最大值。故選取SDS濃度為0.08g/m L。

圖2 SDS濃度對(duì)前萃率的影響Fig.2 The effect of SDS concentration on forward extraction rate

2.1.3 料液比對(duì)蛋白質(zhì)前萃率的影響 圖3所示為料液比對(duì)蛋白質(zhì)前萃率的影響，隨著料液比從1∶5變化到1∶25，蛋白質(zhì)萃取率呈增長(zhǎng)趨勢(shì)，1∶25時(shí)達(dá)到最大值而后又呈現(xiàn)減小趨勢(shì)。其原因可能是：當(dāng)一定體積的反膠束溶液萃取蛋白質(zhì)達(dá)到飽和后，剩余溶液中的蛋白質(zhì)會(huì)破壞已穩(wěn)定的反膠團(tuán)-蛋白質(zhì)體系，導(dǎo)致萃取率下降。由此也可以看出一定體積的反膠束溶液可萃取的蛋白質(zhì)是有限的。故選取料液比1∶25為宜，這與郭曉歌、趙俊廷等研究結(jié)果相符合［3-4］。

圖3 料液比對(duì)前萃率的影響Fig.3 The effect of solid-liquid ratio on forward extraction rate

2.1.4 溫度對(duì)蛋白質(zhì)前萃率的影響 由圖4所示，隨著溫度的升高，蛋白質(zhì)萃取率逐漸增大，直到40℃后逐漸減小。伴隨著溫度的升高，分子運(yùn)動(dòng)加快，蛋白質(zhì)的萃取速率也加快，但過(guò)高的溫度，會(huì)導(dǎo)致反膠束-蛋白質(zhì)體系的破壞。另一種解釋為，隨著溫度的升高，反膠團(tuán)內(nèi)增溶的水含量變多，反膠團(tuán)增溶水能力的增加將會(huì)導(dǎo)致蛋白質(zhì)溶解于反膠團(tuán)能力的增加，因?yàn)榈鞍踪|(zhì)進(jìn)入反膠團(tuán)的過(guò)程是伴隨著水包圍在蛋白質(zhì)外層［13］，因此溫度選取為40℃。

圖4 溫度對(duì)前萃率的影響Fig.4 The effect of temperature on forward extraction rate

2.1.5 緩沖液pH對(duì)蛋白質(zhì)前萃率的影響 圖5所示為緩沖液pH對(duì)前萃率的影響，隨著緩沖液pH的增加，蛋白質(zhì)的萃取率呈現(xiàn)先增加后減小的趨勢(shì)，當(dāng)pH=6.5時(shí)，前萃率最大。緩沖溶液的pH影響蛋白進(jìn)入反膠團(tuán)主要因?yàn)樗淖兞说鞍踪|(zhì)分子表面的電荷分配?？ǖ鞍譸 I=4.0，當(dāng)體系pH大于葵花蛋白質(zhì)等電點(diǎn)時(shí)，蛋白質(zhì)帶負(fù)電，此時(shí)靜電作用不足以使蛋白質(zhì)進(jìn)入到反膠團(tuán)中［14］，則可能是離子交換機(jī)理和蛋白質(zhì)的疏水性起主導(dǎo)作用。因此pH逐漸增大，蛋白質(zhì)萃取率逐漸減小，所以pH=6.5較適宜。

圖5 緩沖液pH對(duì)前萃率的影響Fig.5 The effect of buffer pH on forward extraction rate

2.1.6 鹽濃度對(duì)蛋白質(zhì)前萃率的影響 如圖6所示，蛋白質(zhì)的前萃率隨著鹽濃度的增加而增加，直到鹽濃度達(dá)到0.08mol/L達(dá)到最大值，隨后逐漸減小。鹽濃度影響了蛋白質(zhì)進(jìn)入反膠束的傳質(zhì)過(guò)程，因?yàn)榫彌_液中鹽的濃度影響反膠團(tuán)的尺寸同時(shí)影響蛋白質(zhì)和反膠團(tuán)之間的靜電作用［15］。當(dāng)濃度超過(guò)0.08mol/L后，伴隨著鹽濃度的不斷增加，前萃率減小這是因?yàn)楫a(chǎn)生了“屏蔽效應(yīng)”而使靜電相互作用減弱，從而抑制了蛋白質(zhì)和水的的增溶［13］，因此鹽濃度選取0.08mol/L較好。

圖6 鹽濃度對(duì)前萃率的影響Fig.6 The effect of buffer concentration on forward extraction rate

2.1.7 時(shí)間對(duì)蛋白質(zhì)前萃率的影響 圖7為萃取時(shí)間對(duì)前萃率的影響曲線，30m in時(shí)萃取率最大，這說(shuō)明SDS/正辛醇/異辛烷體系萃取葵花蛋白達(dá)到最大萃取效果的時(shí)間較短。萃取時(shí)間從30～80m in時(shí)，隨著萃取時(shí)間的增加，萃取率有所下降，這可能是因?yàn)殡S著萃取的進(jìn)行，增溶到反膠團(tuán)中的蛋白質(zhì)達(dá)到飽和，隨著時(shí)間的繼續(xù)增加，反膠團(tuán)由于離子強(qiáng)度等因素影響而發(fā)生了滲濾現(xiàn)象，使反膠團(tuán)結(jié)構(gòu)破壞，導(dǎo)致提取率下降，故選取萃取時(shí)間為30m in。

圖7 萃取時(shí)間對(duì)前萃率的影響Fig.7 The effect of extraction time on forward extraction rate

2.1.8 前萃正交實(shí)驗(yàn) 根據(jù)前萃單因素實(shí)驗(yàn)分析結(jié)果，選取4個(gè)主要因素進(jìn)行4因素3水平正交實(shí)驗(yàn)，結(jié)果見(jiàn)表3。

根據(jù)表3對(duì)所得數(shù)據(jù)進(jìn)行直觀極差分析，由R值的大小我們可以看出，對(duì)前萃率影響由大到小的因素為：B＞D＞C＞A，即影響因素從主到次為：緩沖液濃度＞萃取時(shí)間＞W(wǎng)0＞SDS濃度，由k值可以得出最佳提取條件為：A1B1C3D3，即SDS濃度為0.07g/m L、鹽濃度為0.07mol/L、W0=27、萃取時(shí)間為35m in的條件為最佳提取條件。在此最佳條件下，進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)，蛋白質(zhì)的前萃率為89.93%，高于表中其他組合的前萃率。由表4可以看出，當(dāng)用離均差平方和最小項(xiàng)W0作為誤差來(lái)檢驗(yàn)其他因素對(duì)前萃取率作用的顯著性時(shí)，SDS濃度、萃取時(shí)間對(duì)前萃取率影響均顯著。

表3 正交試驗(yàn)表Table 3 Orthogonal experiment table

表4 前萃正交試驗(yàn)方差分析Table 4 Significant analysis on forward extraction orthogonal test

2.2 葵花蛋白后萃實(shí)驗(yàn)

2.2.1 鹽濃度對(duì)蛋白質(zhì)后萃率的影響 由圖8可以看出，隨著鹽濃度的增大，蛋白質(zhì)的后萃率在鹽濃度為0.8mol/L時(shí)達(dá)到最大值，隨后先增大后減小。這是因?yàn)殡S著鹽濃度的增加，反膠團(tuán)增容量逐漸減小，蛋白質(zhì)隨著反膠團(tuán)增容量的減小而逐漸溶出。同時(shí)，由于蛋白質(zhì)不斷溶出到后萃水相體系中，致使反膠束“水池”中與水相中蛋白質(zhì)形成濃度差，不斷促進(jìn)蛋白質(zhì)反萃取到水相中，因此在鹽濃度未達(dá)到0.8mol/L時(shí)，蛋白質(zhì)后萃率逐漸增大。但當(dāng)濃度過(guò)高時(shí)，蛋白質(zhì)會(huì)由于鹽析作用致使后萃率趨于減?。?6］。因此本實(shí)驗(yàn)選取鹽濃度為0.8mol/L進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

2.2.2 緩沖液pH對(duì)蛋白質(zhì)后萃率的影響 如圖9所示，隨著緩沖液pH的增加，蛋白質(zhì)的萃取率也隨之增加，當(dāng)pH達(dá)到8時(shí)為最大值。這是由于隨著pH的不斷增加，蛋白質(zhì)表面電荷量增加，并且與反膠束表面所帶電荷同性。因此，隨著pH的增加，靜電斥力不斷增大，蛋白質(zhì)在反膠束中的增溶逐漸減小，蛋白質(zhì)的后萃率也隨之增大。故選取pH=8進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

圖8 鹽濃度對(duì)后萃率的影響Fig.8 The effect of salt concentration on backward extraction rate

圖9 緩沖液pH對(duì)后萃率的影響Fig.9 The effect of buffer pH on backward extraction rate

2.2.3 時(shí)間對(duì)蛋白質(zhì)后萃率的影響 圖10所示為時(shí)間對(duì)蛋白質(zhì)后萃率的影響，隨著時(shí)間從30m in增加到40m in，蛋白質(zhì)后萃取率呈增長(zhǎng)趨勢(shì)，40m in時(shí)達(dá)到最大值而后呈現(xiàn)減小趨勢(shì)。其原因可能是：當(dāng)體積一定時(shí)反膠束后萃溶液萃取蛋白質(zhì)的能力是有限的，因此即使時(shí)間延長(zhǎng)，蛋白質(zhì)的后萃取量也不會(huì)再增加。40m in后，蛋白質(zhì)后萃取率呈現(xiàn)略微減小后趨于平穩(wěn)的趨勢(shì)，故選取后萃取時(shí)間為40m in為宜。

圖10 時(shí)間對(duì)后萃率的影響Fig.10 The effect of time on backward extraction rate

2.2.4 溫度對(duì)蛋白質(zhì)后萃率的影響 由圖11所示，隨著溫度從25℃上升到40℃，蛋白質(zhì)后萃取率逐漸增大，直到40℃后逐漸減小。這是因?yàn)榘殡S著溫度的升高，反膠團(tuán)增溶能力逐漸減小，分子運(yùn)動(dòng)加快，蛋白質(zhì)不斷被釋放出來(lái)進(jìn)入后萃水相體系中，因此蛋白質(zhì)的后萃取率增加。因此選取溫度為40℃。

圖11 溫度對(duì)后萃率的影響Fig.11 The effect of temperature on backward extraction rate

2.2.5 后萃正交實(shí)驗(yàn) 根據(jù)后萃單因素實(shí)驗(yàn)分析結(jié)果，選取4個(gè)因素進(jìn)行4因素3水平正交實(shí)驗(yàn)，結(jié)果見(jiàn)表5。

表5 正交實(shí)驗(yàn)表Table 5 Orthogonal experiment table

表6 后萃正交試驗(yàn)方差分析Table 6 Significant analysis of backward extraction orthogonal test

根據(jù)表5對(duì)所得數(shù)據(jù)進(jìn)行直觀極差分析，由R值的大小我們可以看出，對(duì)葵花蛋白后萃率影響由大到小的因素為：A＞C＞B＞D，即影響因素從主到次為：鹽濃度＞萃取時(shí)間＞緩沖液pH＞萃取溫度，由k值可以得出最佳提取條件為：A3B1C3D1，即鹽濃度為0.9mol/L、緩沖液pH為7.5、萃取時(shí)間為45m in、萃取溫度為35℃的條件為最佳提取條件。在此最佳條件下，進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)，葵花蛋白的后萃率為65.01%，高于表中其他組合的后萃率。由表6可以看出，當(dāng)用離均差平方和最小項(xiàng)萃取時(shí)間作為誤差估計(jì)來(lái)檢驗(yàn)其他因素作用的顯著性時(shí)，鹽濃度、緩沖液pH、萃取溫度三個(gè)因素對(duì)后萃取率影響均極顯著。根據(jù)1.2.5中公式計(jì)算可得，蛋白質(zhì)的提取率為58.46%。

3 結(jié)論

通過(guò)對(duì)SDS（十二烷基磺酸鈉）/正辛醇/異辛烷反膠束體系對(duì)葵花粕蛋白前萃單因素及正交實(shí)驗(yàn)得到SDS濃度為0.07g/m L、料液比（g/m L）為1∶25、鹽濃度為0.07mol/L、W0=27、萃取時(shí)間為35min、萃取溫度為40℃、緩沖液pH為6.5的條件為最佳提取條件。在此最佳條件下，蛋白質(zhì)的前萃率為89.93%。通過(guò)對(duì)SDS/正辛醇/異辛烷反膠束體系對(duì)葵花粕蛋白后萃單因素及正交實(shí)驗(yàn)得到鹽濃度為0.9mol/L、緩沖液pH為7.5、萃取時(shí)間為45min、萃取溫度為35℃的條件為最佳提取條件。在此最佳條件下，蛋白質(zhì)的后萃率為65.01%，蛋白質(zhì)提取率為58.46%。

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SDS/isooctane/octanol reverse micellar extraction process of sunflower seed meal protein

ZHAO Ping，ZUO Ling，GUO Qiu-shi，WANG Ya*
（College of Life Science and Engineering，Lanzhou University of Technology，Lanzhou 730050，China）

Using reverse micelles of SDS（Sodium dodecyl sulfate）/isooctane/octanol extraction of sunflower seed protein，discussed in the ultrasound assisted extraction，study effect of W0，buffer pH，buffer concentration，solid-liquid ratio，temperature，time and surfactant concentration on the extraction rate of protein forward and backward extraction.The results showed that:the optimum conditions of forward extraction process for the concentration of SDS was 0.07g/m L，the ratio of material to liquid was 1∶25（g/m L），buffer concentration of 0.07mol/L，pH6.5，W0=27，extraction time was 35m in，temperature was 40℃ condition for.Backward extraction optimum conditions were:the salt concentration was 0.9mol/L，pH value of buffer solution was 7.5，extraction time was 45m in，the extraction tem perature was 35℃，under these conditions，the forward extraction rate of protein was 89.93%，backward extraction rate was 65.01%，the total extraction rate of protein was 58.46%.

reverse micelle；sunflower protein；forward extraction；backward extraction

TS201.1

B

1002-0306（2015）08-0262-06

10.13386/j.issn1002-0306.2015.08.046

2014－07－21

趙萍（1964-），女，碩士，教授，主要從事食品科學(xué)、農(nóng)產(chǎn)品加工與副產(chǎn)物綜合利用方面的研究。

*通訊作者：王雅（1974-），女，博士，副教授，主要從事功能食品生物工程方面的研究。

甘肅省重點(diǎn)培育學(xué)科資助。